二次回歸中心組合法優(yōu)化外源纖維素酶酶解提取香草蘭青豆莢香蘭素工藝

莫麗梅，張彥軍，谷風(fēng)林,3，徐 飛，陸敏泉,*

(1.海南大學(xué)食品學(xué)院，海南 ?？?570228；2.中國(guó)熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院香料飲料研究所，海南 萬寧 571533；3.農(nóng)業(yè)部香辛飲料作物遺傳資源利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，海南 萬寧 571533)

二次回歸中心組合法優(yōu)化外源纖維素酶酶解提取香草蘭青豆莢香蘭素工藝

莫麗梅1，張彥軍2，谷風(fēng)林2,3，徐 飛2，陸敏泉2,*

(1.海南大學(xué)食品學(xué)院，海南 海口 570228；2.中國(guó)熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院香料飲料研究所，海南 萬寧 571533；3.農(nóng)業(yè)部香辛飲料作物遺傳資源利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，海南 萬寧 571533)

為優(yōu)化纖維素酶酶解天然香草蘭青豆莢工藝，本實(shí)驗(yàn)采用二次回歸中心組合方法考察外源添加纖維素酶處理對(duì)香草蘭青豆莢香蘭素含量的影響。結(jié)果表明：最佳酶解工藝條件為香草蘭青豆莢10g、酶解溫度53℃、纖維素酶添加量26.9mg、酶解時(shí)間16h，此條件下天然香草蘭青豆莢中香蘭素含量為2.18%，相比于傳統(tǒng)發(fā)酵乙醇回流提取法的1.97%，香蘭素含量提高0.21%。

香蘭素；纖維素酶；條件優(yōu)化

香草蘭(Vanilla planifolia Andrews)又名香莢蘭、香子蘭、香果蘭，屬蘭科(Orchidaceae)香子蘭屬多年生熱帶藤本植物。天然香草蘭提取物是全世界價(jià)格最昂貴的風(fēng)味成分之一，其中60%用于食品行業(yè)，33%用于化妝品行業(yè)，7%用于芳香保健行業(yè)[1]。香草蘭是名貴的天然香料且香味獨(dú)特，素有“食品香料之王”的美稱[2]，其香味物質(zhì)主要成分是香蘭素(C8H8O3)。青豆莢僅有青草香，經(jīng)過加工后形成香草蘭特有的香氣成分，其加工過程經(jīng)過殺青、發(fā)酵、干燥、陳化生香，最終形成組分復(fù)雜的香氣，包括烷烴、醇類、醛酮類、酯類、酚類、酸類、少量苯、醚類等[2-4]。據(jù)王慶煌等[5]報(bào)道，酶促反應(yīng)在香草蘭發(fā)酵生香過程中起最重要的作用，其主要作用酶有β-葡萄糖苷酶、過氧化物酶、多酚氧化酶、果膠酶、纖維素酶。

通過預(yù)處理或外源添加酶處理天然香草蘭青豆莢對(duì)香蘭素含量的影響報(bào)道較少。Roode等[6]和Dignum[7]報(bào)道通過破壞細(xì)胞壁處理，增加β-葡萄糖苷底物與β-葡萄糖苷酶的接觸顯著提高了香草蘭中香蘭素的含量。Sreedhar[8]采用萘乙酸和乙烯利溶液預(yù)處理香草蘭青豆莢，結(jié)果表明香蘭素分別提高4倍和3.6倍。姜欣等[9]向香草蘭浸膏中加入β-葡萄糖苷酶，結(jié)果發(fā)現(xiàn)酶與香蘭素的含量呈正相關(guān)關(guān)系。Naidu等[10]研究酶法輔助提取香草蘭豆莢中的香蘭素，結(jié)果發(fā)現(xiàn)添加茶葉酶或者戊聚糖復(fù)合酶均可提高香蘭素。Ruiz-Terán等[11]使用戊聚糖復(fù)合酶和纖維素酶兩步法明顯提高香草蘭中香蘭素的含量。Gu Fenglin等[12]考察纖維素酶添加量、溫度和加熱時(shí)間對(duì)提取香草蘭中香蘭素的影響，結(jié)果表明在優(yōu)化條件下香蘭素含量明顯升高。

據(jù)Zidi等[13]報(bào)道，每年香蘭素的產(chǎn)量達(dá)到12000t，然而從天然豆莢中提取的香蘭素不足1%，大多數(shù)為化學(xué)合成。香草蘭青豆莢中葡糖香蘭素的含量在10%～15%，理論上經(jīng)酶解能夠轉(zhuǎn)化為約5%的香蘭素，但是采用傳統(tǒng)的加工方法，僅得到平均約2%的香蘭素[14]。世界香蘭素年需求增長(zhǎng)率為10%，國(guó)際市場(chǎng)對(duì)天然香蘭素的需求更為迫切[10]。因此，對(duì)香草蘭發(fā)酵生香過程中如何通過外源添加酶提高香蘭素含量的研究顯得尤為迫切。

課題組前期發(fā)現(xiàn)發(fā)酵生香后的香草蘭豆莢添加纖維素酶可以大大提高香蘭素的提取率，在此基礎(chǔ)上，本實(shí)驗(yàn)擬通過考察外源添加纖維素酶處理香草蘭青豆莢反應(yīng)條件，優(yōu)化香蘭素提取工藝，為提高天然香草蘭豆莢中香蘭素含量提供理論參考。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

香草蘭青豆莢 中國(guó)熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院香料飲料研究所；香蘭素標(biāo)準(zhǔn)品 美國(guó)Sigma公司；纖維素酶(15000U/g) 國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司；無水乙醇、冰醋酸(均為分析純) 天津天大化工實(shí)驗(yàn)廠。

1.2 儀器與設(shè)備

索氏提取器 四川蜀牛玻璃儀器公司；RT5高效多點(diǎn)加熱磁力攪拌器 德國(guó)IKA公司；1260型高效液相色譜儀 美國(guó)Agilent公司；Milli-Q超純水器 美國(guó)Millipore公司；KQ-600B型超聲波清洗器 昆山市超聲儀器有限公司。

1.3 方法

1.3.1 工藝流程及操作要點(diǎn)參照Ruiz-Terán等[11]的方法并部分修改，具體如下：

工藝流程：香草蘭勻漿→分裝→酶解→滅酶→醇提→過濾→定容→待測(cè)樣。

操作要點(diǎn)：挑選一級(jí)香草蘭青豆莢，洗凈備用。準(zhǔn)確稱取香草蘭青豆莢200.0g，按1:1(g/mL)加入水勻漿(香草蘭勻漿液pH5.4，不需要加入緩沖溶液調(diào)節(jié)pH值)，平均分成20份，每份20g，在指定溫度條件下加入纖維素酶，酶解固定時(shí)間后，于沸水浴中保溫10min滅酶。濾液冷卻后加入無水乙醇，使乙醇的體積分?jǐn)?shù)為47.5%，室溫條件下醇提30min，過濾，定容得到香蘭素浸提液，樣品待上液相檢測(cè)計(jì)算香蘭素含量。

1.3.2 水分測(cè)定

香草蘭青豆莢水分測(cè)定采用GB/T 5009.3—2003《食品中水分的測(cè)定》測(cè)定，其水分含量為86.19%。

1.3.3 香蘭素含量測(cè)定

根據(jù)Brunerie[15]的方法略作修改，色譜柱：ZORBAX XDB-C18柱(4.6mm×150mm，5μm)；流動(dòng)相：甲醇-0.5%冰乙酸溶液(20:80，V/V)；流速：1.0mL/min；柱溫：室溫(26℃)；進(jìn)樣量：3μL；檢測(cè)波長(zhǎng)：280nm；靈敏度：0.01AUFS。以色譜峰的保留時(shí)間定性，并以紫外吸收光譜圖輔助定性；以外標(biāo)法峰面積定量，本實(shí)驗(yàn)中所有香蘭素含量結(jié)果均換算為干基含量(%)。

1.3.4 單因素試驗(yàn)

分別以不同的酶解溫度、酶添加量、酶解時(shí)間為單因素進(jìn)行試驗(yàn)，考察各單因素對(duì)香蘭素含量的影響，每組試驗(yàn)重復(fù)3次。

1.3.5 二次回歸中心組合設(shè)計(jì)

在課題組前期試驗(yàn)基礎(chǔ)[12]和單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上，得出影響香蘭素含量的主要因素為：酶解溫度、酶添加量和酶解時(shí)間，采用二次回歸中心組合設(shè)計(jì)法，對(duì)這3個(gè)主要影響因子進(jìn)行最佳提取條件的選擇，各個(gè)自變量按照Xi＝(xi-x0)/Δx進(jìn)行水平編碼換算，其中xi為自變量的真實(shí)值；x0為試驗(yàn)中心點(diǎn)處自變量的真實(shí)值；Δx為自變量的變化間距。每組試驗(yàn)重復(fù)3次。各因素水平編碼見表1。

表1 因素水平編碼表Table1 Coded levels for independent variables used in response surface analysis

1.4 統(tǒng)計(jì)分析

采用Design Expert 7.0.1分析軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析處理。自變量(反應(yīng)溫度、纖維素酶添加量、反應(yīng)時(shí)間)和響應(yīng)值(香蘭素含量)的關(guān)系用二級(jí)多項(xiàng)式回歸模型表示，模型的充分性用決定系數(shù)(R2)和失擬檢驗(yàn)(lack of fit)表示。

2 結(jié)果與分析

2.1 單因素試驗(yàn)

2.1.1 酶解溫度的影響

固定酶添加量16.73mg、酶解時(shí)間12h，分別考察酶解溫度為30、40、50、60、70℃對(duì)香蘭素含量的影響，結(jié)果如圖1所示。

圖1 酶解溫度對(duì)香蘭素含量的影響Fig.1 Effect of enzymatic hydrolysis temperature on vanillin content

由圖1可知，當(dāng)溫度從30℃升高到50℃時(shí)，香蘭素含量從0.76%增加到1.44%，繼續(xù)升溫到70℃，則香蘭素含量降為0.69%。這是由于在酶解反應(yīng)中，溫度會(huì)影響酶的穩(wěn)定性進(jìn)而影響酶解反應(yīng)速率。據(jù)呂長(zhǎng)鑫等[16]報(bào)道的結(jié)果，這是由于剛開始隨著溫度逐漸升高，酶的活性增加，導(dǎo)致反應(yīng)速率加快；當(dāng)達(dá)到酶解反應(yīng)最適溫度，酶的活力最高，最利于酶解反應(yīng)的進(jìn)行；隨后，當(dāng)溫度繼續(xù)升高，會(huì)鈍化部分酶分子，降低酶活力，從而導(dǎo)致反應(yīng)速率降低；當(dāng)溫度過高時(shí)酶完全失活。

2.1.2 酶添加量的影響

固定酶解溫度和酶解時(shí)間分別為50℃和12h，分別考察酶添加量為0、10、20、30、40、50mg對(duì)香蘭素含量的影響，結(jié)果如圖2所示。

圖2 酶添加量對(duì)香蘭素含量的影響Fig.2 Effect of enzymatic addition amount on vanillin content

由圖2可知，當(dāng)酶添加量從0mg增加到20mg時(shí)，香蘭素含量呈現(xiàn)顯著增加的趨勢(shì)(0.69%增加到1.24%)；當(dāng)酶添加量達(dá)到30mg時(shí)，香蘭素含量達(dá)到1.59%；之后再增加酶量，香蘭素含量趨于平衡。據(jù)石亞中等[17]報(bào)道，酶與底物接觸反應(yīng)過程中，存在平衡點(diǎn)，當(dāng)酶添加量低于平衡點(diǎn)時(shí)，底物與酶可以充分結(jié)合；當(dāng)酶量繼續(xù)增加，底物與酶的結(jié)合程度會(huì)加大，當(dāng)反應(yīng)達(dá)到平衡后，酶活性趨于穩(wěn)定。因此，酶添加量越大并不意味著越利于酶解效果，對(duì)于底物量一定時(shí)，存在一個(gè)最佳的酶用量。

2.1.3 酶解時(shí)間的影響

固定酶解溫度50℃、酶添加量16.73mg，分別考察酶解時(shí)間為0、6、12、18、24、30h對(duì)香蘭素含量的影響，結(jié)果如圖3所示。

圖3 酶解時(shí)間對(duì)香蘭素含量的影響Fig.3 Effect of enzymatic hydrolysis time on vanillin content

由圖3可知，酶解反應(yīng)隨著反應(yīng)時(shí)間從0h增加到12h，香蘭素含量逐漸由0.34%增大到1.21%，再延長(zhǎng)酶解時(shí)間，香蘭素含量基本維持在1.61%水平。據(jù)董旭等[18]的報(bào)道，添加酶后酶與底物結(jié)合程度低，酶解效果不明顯，隨著反應(yīng)時(shí)間的延長(zhǎng)，底物與酶接觸的機(jī)會(huì)增大，酶解效果增加；當(dāng)達(dá)到最佳酶解時(shí)間，酶已經(jīng)達(dá)到與底物反應(yīng)的最大活力，如果再延長(zhǎng)酶解時(shí)間，酶解效果基本維持穩(wěn)定，這正與本實(shí)驗(yàn)結(jié)果相一致。

2.2 二次回歸中心組合模型擬合及方差分析

表2 二次回歸中心組合試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 2ble 2 Experimental design and results for response surface analysis

選取酶解溫度(X1)、酶添加量(X2)和酶解時(shí)間(X3)為自變量，以香蘭素含量(Y)為響應(yīng)值進(jìn)行響應(yīng)面分析，結(jié)果如表2所示。20個(gè)試驗(yàn)點(diǎn)的響應(yīng)值進(jìn)行回歸分析，得到回歸方程：

表3 模型各項(xiàng)回歸分析Table3 Results of regression analysis

表4 模型方差分析Table4 Results of analysis of variance

表5 回歸方程系數(shù)顯著性檢驗(yàn)表Table5 Statistical significance of each coefficient in the regression equation

對(duì)模型進(jìn)行方差分析，結(jié)果見表3～5。由表3可知，模型顯著(P＜0.0001)。由表4可知，失擬項(xiàng)不顯著(P=0.0527＞0.05)，R2=0.9059表明此模型能解釋90.59%響應(yīng)變化，回歸方程擬合程度良好，因此此模型可以真實(shí)地?cái)M合和預(yù)測(cè)實(shí)際情況，具有很好的代表性。由表5可知，一次項(xiàng)B1、B2、B3顯著，二次項(xiàng)B11顯著，B22和B33不顯著，交互項(xiàng)B12、B13和B23不顯著。因素B1、B2及B3的P值分別為0.0228、＜0.0001及0.0035，表明酶解溫度，酶添加量和酶解時(shí)間影響顯著，3個(gè)因素對(duì)香蘭素含量影響的順序?yàn)槊柑砑恿浚久附鈺r(shí)間＞酶解溫度。

2.3 回歸模型的響應(yīng)面分析

采用Design Expert 3D Surface對(duì)關(guān)于實(shí)數(shù)變方程做曲面圖以直觀反映局部參數(shù)值與整體響應(yīng)值直接的交互對(duì)應(yīng)關(guān)系[19]。

由圖4a可知，香蘭素含量隨著酶添加量的增加呈現(xiàn)增加的趨勢(shì)，而隨著反應(yīng)溫度的升高出現(xiàn)先增加后降低的趨勢(shì)。酶解時(shí)間在中心點(diǎn)，酶解溫度為50℃，酶添加量從7.93mg增加到25.53mg時(shí)，香蘭素含量從1.22%增加到1.70%，之后趨于平衡；酶解時(shí)間在中心點(diǎn)，酶添加量為16.73mg，溫度從38.11℃增加到61.89℃時(shí)，香蘭素含量先從1.31%增加到1.54%后降低為1.51%，這說明酶添加量并不是越多越好，當(dāng)酶添加量達(dá)到飽和再增加酶用量不僅不會(huì)提高香蘭素含量反而增加成本，而溫度升高則會(huì)降低酶活力導(dǎo)致香蘭素含量降低。從曲線彎曲程度可知酶添加量對(duì)響應(yīng)值(香蘭素含量)影響更顯著。

圖4 各兩因素交互作用對(duì)香蘭素含量的影響Fig.4 Response surface plots showing the interaction effects of various independent variables on vanillin content

由圖4b可知，香蘭素含量隨著酶解溫度的升高呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì)，而隨著酶解時(shí)間的延長(zhǎng)呈現(xiàn)增加的趨勢(shì)，而后趨于平緩。當(dāng)酶解時(shí)間為12h，溫度從38.11℃增加到61.89℃時(shí)，香蘭素含量先從1.31%增加到1.54%后降低為1.51%，結(jié)合單因素試驗(yàn)結(jié)果當(dāng)溫度升高為80℃時(shí)，香蘭素含量降低為1.01%；當(dāng)酶解溫度為50℃，酶解時(shí)間從8.43h延長(zhǎng)至15.57h，香蘭素含量從1.45%增加到1.73%。此外，由曲線彎曲程度可知酶解時(shí)間對(duì)香蘭素含量的影響較酶解溫度更為顯著。

由圖4c可知，香蘭素含量隨著酶添加量的增加而呈現(xiàn)增加的趨勢(shì)，當(dāng)酶解時(shí)間固定為12h，酶添加量從25.53mg增加到50mg時(shí)，香蘭素含量維持在1.60%左右；香蘭素含量隨著酶解時(shí)間的延長(zhǎng)呈現(xiàn)平穩(wěn)增長(zhǎng)的趨勢(shì)后趨于平衡，結(jié)合單因素試驗(yàn)結(jié)果，當(dāng)酶添加量為16.73mg，酶解時(shí)間從16h增加到24h時(shí)，香蘭素含量為(1.63±0.05)%。由曲面彎曲程度可知酶添加量對(duì)香蘭素的含量影響較酶解時(shí)間更為顯著。

2.4 最佳工藝條件的確定及驗(yàn)證

采用Design Expert軟件分析得到本實(shí)驗(yàn)的最佳合成工藝條件為酶解溫度53.03℃、酶添加量26.88mg、酶解時(shí)間16.02h，可以得到理論上最優(yōu)香蘭素的含量2.26%。結(jié)合實(shí)際的操作條件，得最佳反應(yīng)條件為酶解溫度53℃、酶添加量26.9mg、酶解時(shí)間16h，在此條件下做3次平行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)，結(jié)果如表6所示，最佳條件下香蘭素含量為2.18%，說明該模型用于預(yù)測(cè)香蘭素含量最高時(shí)三因素的組合方案具有可行性。

表6 驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)Table6 Results of validation experiments under the optimized hydrolysis conditions

由于試驗(yàn)的誤差存在，與預(yù)測(cè)的最高值有偏差，相對(duì)誤差為3.67%，表明由回歸方程所得的預(yù)測(cè)值與實(shí)際情況相差不大，說明回歸方程能夠比較真實(shí)地反映各因素對(duì)香蘭素含量的影響。同時(shí)由表6可知，經(jīng)過傳統(tǒng)發(fā)酵后的香草蘭豆莢經(jīng)索氏抽提后的香蘭素含量測(cè)定為1.97%，而本實(shí)驗(yàn)通過優(yōu)化后的香蘭素含量為2.18%，高于傳統(tǒng)發(fā)酵生香法，在縮短時(shí)間的基礎(chǔ)上得到高于傳統(tǒng)發(fā)酵生香香草蘭青豆莢中香蘭素含量，大大節(jié)約了成本。

3 結(jié)論與討論

在課題組前期試驗(yàn)基礎(chǔ)上，利用香草蘭青豆莢作為原料，嘗試外源添加纖維素酶提高香草蘭主要香味物質(zhì)——香蘭素，在單因素試驗(yàn)基礎(chǔ)上，采用可旋轉(zhuǎn)的二次回歸中心組合試驗(yàn)設(shè)計(jì)考察酶解溫度、酶添加量和酶解時(shí)間3個(gè)變量對(duì)香蘭素含量的影響，最終確定最佳工藝條件為香草蘭青豆莢10g、酶解溫度53℃、酶添加量26.9mg(15000U/g)、酶解時(shí)間16h。驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)表明在一定誤差范圍內(nèi)外源添加纖維素酶可以提高香蘭素含量，與傳統(tǒng)發(fā)酵后的香草蘭豆莢經(jīng)索氏提取后的香蘭素含量相比，香蘭素含量提高了0.21%。

本課題組成員Gu Fenglin等[12]前期考察經(jīng)過傳統(tǒng)發(fā)酵生香后的香草蘭豆莢通過添加外源纖維素酶處理，結(jié)果得到香蘭素提取率高達(dá)7.61mg/g；Ruiz-Terán等[11]使用戊聚糖復(fù)合酶和纖維素復(fù)合酶兩步法處理香草蘭青豆莢，結(jié)果得到香蘭素含量為3.66%；Naidu等[10]研究茶葉酶法輔助提取香草蘭青豆莢中的香蘭素，結(jié)果表明其香蘭素含量為4.2%；Waliszewski等[20]采用3種復(fù)合酶制劑預(yù)處理香草蘭切段豆莢，結(jié)果發(fā)現(xiàn)香蘭素含量增加2倍達(dá)到2.09%。與前人的結(jié)果相比，本實(shí)驗(yàn)優(yōu)化后的香蘭素含量(2.18%)低，結(jié)果歸為Gu Fenglin等[12]前期考察的是經(jīng)過發(fā)酵生香后添加纖維素酶，而本實(shí)驗(yàn)采用的原料是香草蘭青豆莢；而Ruiz-Terán等[11]和Waliszewski等[20]采用的是復(fù)合酶，據(jù)王慶煌等[5]報(bào)道香草蘭發(fā)酵生香過程中最重要的作用酶有β-葡萄糖苷酶、果膠酶、纖維素酶，且這些酶相互作用將大大提高香蘭素含量；Naidu等[10]采用的是茶葉復(fù)合酶，不同的酶之間性質(zhì)不同，如酶活力、最適溫度、pH值等。目前本實(shí)驗(yàn)只考察了纖維素酶對(duì)香草蘭青豆莢中香蘭素含量的影響，基于前面討論，主要作用酶果膠酶和β-葡萄糖苷酶分別作用和復(fù)合作用對(duì)香草蘭青豆莢中香蘭素含量的影響如何還有待于進(jìn)一步探討。

[1] PRIEFERT H, RAQBENHORST J, STEINBIICHEL A. Biotechnological production of vanillin[J]. Applied Microbiology and Biotechnology, 2001, 56(3/4): 296-314.

[2] DIGNUM M J W, KERLER J, VERPOORTE R. Vanilla curing under laboratory conditions[J]. Food Chemistry, 2002, 79(2): 165-171.

[3] KUMAR K K, ANANTHAKUMAR A A, AHMAD R, et al. Effect of gamma-radiation on major aroma compounds and vanillin glucoside of cured vanilla beans (Vanilla planifolia)[J]. Food Chemistry, 2010, 122(3): 841-845.

[4] JADHAV D, REKHA B N, GOGATE R. Extraction of vanillin from vanilla pods: a comparison study of conventional soxhlet and ultrasound assisted extraction[J]. Journal of Food Engineering, 2009, 93(4): 421-426.

[5] 王慶煌, 農(nóng)漢, 初眾, 等. 香草蘭O-β-葡萄糖苷酶底物特異性和溫度穩(wěn)定性研究[J]. 熱帶作物學(xué)報(bào), 2012, 33(1): 1-4.

[6] ROODE B M D. Perspectives for the industrial enzymatic production of glycosides[J]. Biotechnology Progress, 2008, 19(5): 1391-1402.

[7] DIGNUM M J W. Glucosylation of exogenous vanillin by plant cell cultures[J]. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 2002, 69(2): 177-182.

[8] SREEDHAR R V. Biotic elicitors enhance flavour compounds during accelerated curing of vanilla beans[J]. Food Chemistry, 2009, 112(2): 461-468.

[9] 姜欣, 彭黎旭. 香蘭素微生物發(fā)酵法研究進(jìn)展[J]. 華南熱帶農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2007, 13(4): 34-37.

[10] NAIDU M M, SUJITH KUMAR P V, SHYAMALA B N, et al. Enzyme-assisted process for production of superior quality vanilla extracts from green vanilla pods using tea leaf enzymes[J]. Food and Bioprocess Technology, 2012, 5(2): 527-532.

[11] RUIZ-TER?N F, PEREZ-AMADOR I, L?PEZ-MUNGUIA A. Enzymatic extraction and transformation of glucovanillin to vanillin from vanilla green pod[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2001, 49(11): 341-347.

[12] GU Fenglin, XU Fei, TAN Lehe, et al. Optimization of enzymatic process for vanillin extraction using response surface methodology[J]. Molecules, 2012, 17(8): 8753-8761.

[13] ZIDI C, TAYED R, BOUKHILI N, et al. A supported liquid membrane system for efficient extraction of vanillin[J]. Separation and Purification Technology, 2011, 82: 36-42.

[14] ARANA F E. Action of a β-glucosidase in the curing of vanilla[J]. Journal of Food Science, 1943, 8(4): 343-351.

[15] BRUNERIE P M. Process of the production of natural vanilla aroma extracts by enzymatic processing of green vanilla pods and extract thereby obtained: US, 5705206[P/OL]. 1998-01-06. http://www. google.com/patents/US5705205.

[16] 呂長(zhǎng)鑫, 李萌萌, 徐曉明, 等. 響應(yīng)面分析法優(yōu)化纖維素酶提取紫蘇多糖工藝[J]. 食品科學(xué), 2013, 34(2): 6-10.

[17] 石亞中, 方嬌龍, 錢時(shí)權(quán), 等. 響應(yīng)面分析法優(yōu)化纖維素酶酶解提取工藝[J]. 食品科學(xué), 2013, 34(4): 75-79.

[18] 董旭, 杜先鋒. 響應(yīng)面法優(yōu)化纖維素酶提取山核桃蒲多酚類物質(zhì)[J].食品科學(xué), 2013, 34(4): 109-113.

[19] SHIH I L, SHEN M H. Application of response surface methodology to optimize production of poly-ε-lysine by Streptomyces albulus IFO 14147[J]. Enzyme and Microbial Technology, 2006, 39(1): 15-21.

[20] WALISZEWSKI K N, OVANDO S L, PARDIO V T. Effect of hydration and enzymatic pretreatment of vanilla beans on the kinetics of vanillin extraction[J]. Journal of Food Engineering, 2007, 78(4): 1267-1273.

Quadratic Regression Central Composite Method for the Optimization of Enzymatic Extraction of Vanillin from Vanilla (Vanilla planifolia Andrews) Pods with Exogenous

MO Li-mei1，ZHANG Yan-jun2，GU Feng-lin2,3，XU Fei2，LU Min-quan2,*
(1. College of Food Science, Hainan University, Haikou 570228, China；2. Institute of Spice and Beverage Research, Chinese Academy of Tropical Agricultural Sciences, Wanning 571533, China；3. Key Laboratory of Genetic Resources Utilization of Spice and Beverage Crops, Ministry of Agriculture, Wanning 571533, China)

This study was conceived to develop an optimized procedure for enzymatic extraction of vanillin from vanilla green pods with exogenous cellulase. For this, quadratic regression central composite design combined with response surface methodology was employed to investigate the effects of enzymatic hydrolysis temperature, cellulase dosage and enzymatic hydrolysis time on vanillin content. The results showed that the optimum conditions of vanilla green pods, enzymatic hydrolysis temperature, cellulase and enzymatic hydrolysis time were 10 g, 53 ℃, 26.9 mg and 16 h, respectively. The maximum vanillin content under these conditions was 2.18% compared to 1.97% obtained with the conventional method of fermentation and subsequent ethanol reflux extraction.

vanillin；cellulase；condition optimization

Q55

A

1002-6630(2013)18-0018-05

10.7506/spkx1002-6630-201318004

2013-04-10

“十二五”國(guó)家科技支撐計(jì)劃項(xiàng)目(2012BAD36B03)；中央級(jí)公益性科研院所基本科研業(yè)務(wù)費(fèi)專項(xiàng)(1630052013006)

莫麗梅(1987—)，女，碩士研究生，研究方向?yàn)闊釒мr(nóng)產(chǎn)品加工。E-mail：molimei2007@yeah.net

*通信作者：陸敏泉(1972—)，男，副研究員，碩士，研究方向?yàn)闊釒мr(nóng)產(chǎn)品加工。E-mail：lmq663@126.com