張志遠(yuǎn) 劉凱△ 綜述 張劍 審校
MicroRNA183家族與聽力損失
張志遠(yuǎn)1劉凱1△綜述 張劍1審校
microRNA(miRNA)183家族由3個同源miRNA組成(miR-183,miR-96和miR-182),長約4 kb,在眼、鼻及內(nèi)耳的特定感覺細(xì)胞中有充分的表達(dá),對內(nèi)耳的發(fā)展過程有著重要的影響[1,2]。因此,miRNA183家族在聽覺及聽力損失中的作用開始被關(guān)注,有觀點認(rèn)為其成員特定區(qū)域的突變可能為聽力損失的重要因素之一[3],但仍存在爭議。本文擬通過對miRNA183家族成員與聽力損失之間的關(guān)系進(jìn)行綜述,期望為聽力損失的早期預(yù)防和診治開辟新的途徑提供參考。
miRNA是1993年在研究線蟲突變體時發(fā)現(xiàn)的一類長約21~25個核苷酸的小分子非編碼RNA,廣泛存在于哺乳動物基因組中,具有高度的保守性[4]。在人和大鼠,約一半miRNA基因存在于內(nèi)含子中,并與已知的蛋白編碼基因一起表達(dá)。約三分之一與其他的miRNA基因串聯(lián)在一起,顯示一種協(xié)調(diào)性的表達(dá)[5]。miRNA是一類非常重要的轉(zhuǎn)錄后調(diào)控因子,研究發(fā)現(xiàn),為數(shù)不多的miRNA可以決定約30%的蛋白編碼基因的表達(dá),同時miRNA與惡性腫瘤、心血管疾病以及正常的細(xì)胞增殖、分化、凋亡、應(yīng)激、脂肪代謝、生長發(fā)育等密切相關(guān)[6]。miR-183家族很可能是多順反子基因,在脊椎動物的單個基因座上共表達(dá)[7]。
Lagos-Quintana等[8]應(yīng)用克隆和排序的方法研究miRNA的表達(dá)發(fā)現(xiàn),在不同的細(xì)胞類型與組織中存在大量獨特的miRNA,而且許多是有區(qū)別的表達(dá)。miRNA在生物的發(fā)展過程中起著重要作用,包括脊椎動物的發(fā)展以及各種組織類型的細(xì)胞系分化過程。在脊椎動物中,miRNA以一種高組織特異性的方式表達(dá),miR-183家族成員表達(dá)在不同器官的感覺細(xì)胞中,包括斑馬魚的嗅覺上皮組織、眼、耳和神經(jīng)丘,小鼠的感覺神經(jīng)以及眼、耳的感覺細(xì)胞[9]。
Wienholds等[9]研究發(fā)現(xiàn),在斑馬魚的機械感覺器官中有一定的miRNA表達(dá),miR-183家族在斑馬魚的內(nèi)耳毛細(xì)胞以及神經(jīng)丘上表達(dá),并認(rèn)為miRNA的表達(dá)有細(xì)胞特異性,可能對脊椎動物的內(nèi)耳發(fā)育起著重要作用。Weston等[10]研究發(fā)現(xiàn),在已知的miRNA中,約三分之一在大鼠的內(nèi)耳表達(dá),而且這種表達(dá)貫穿了從出生到成熟的整個過程,miRNA在內(nèi)耳毛細(xì)胞中表達(dá)相當(dāng)穩(wěn)定,提示其在細(xì)胞發(fā)育和分化的胚胎期就已經(jīng)存在。該實驗也證實并補充了Wienholds等的研究結(jié)果,認(rèn)為miR-183家族在整個哺乳類動物的聽覺和前庭器官的毛細(xì)胞中廣泛表達(dá)。miRNA在斑馬魚和哺乳動物的機械感覺毛細(xì)胞中表達(dá)的進(jìn)化保守性,提示在不同生物體中其功能也具有同樣的保守性。正是因為這些miRNA序列的高度保守性,使得其在內(nèi)耳毛細(xì)胞等功能感覺細(xì)胞的發(fā)育過程中發(fā)揮重要作用[11]。
Sacheli等[12]應(yīng)用LNA探針詳細(xì)研究從胚胎到成熟期的小鼠內(nèi)耳中miR-183家族成員的表達(dá),發(fā)現(xiàn)在耳蝸結(jié)構(gòu)成形和分化的頂峰期,miR-183家族成員呈現(xiàn)了一種受限并動態(tài)的表達(dá),證實并補充了Weston等的研究結(jié)果,認(rèn)為miR-183家族具有感覺組織特異性。更重要的是,其不同時間與空間的表達(dá)與內(nèi)耳的功能成熟相關(guān),起初在整個上皮細(xì)胞中都有表達(dá),隨后在前庭和聽覺器官的高分化毛細(xì)胞中其表達(dá)受到限制。miRNA在多細(xì)胞生物中的表達(dá)呈現(xiàn)出時空及組織細(xì)胞特異性,其參與了組織的形態(tài)發(fā)生和細(xì)胞的分化[8]。因此,研究者認(rèn)為miR-183家族成員的表達(dá)在管理前庭和內(nèi)耳聽覺部分的細(xì)胞分化和規(guī)范方面起到了重要作用。
盡管有上百種miRNA存在于斑馬魚和其他的脊椎動物的胚胎中,但目前對個別miRNA在發(fā)育過程中所起的作用仍不甚了解。Li等[2]通過研究斑馬魚胚胎發(fā)育,證實miR-183家族成員在內(nèi)耳毛細(xì)胞和神經(jīng)元的發(fā)育過程中起到了重要的作用,認(rèn)為在排除轉(zhuǎn)錄因子(例如Atoh1)和Delta-Notch信號破壞等因素后,miRNA的錯誤表達(dá)能產(chǎn)生過多的毛細(xì)胞;而在miRNA沉默基因的過度表達(dá)時,會引起毛細(xì)胞數(shù)量明顯減少。該研究結(jié)果顯示了miRNA在確保感覺上皮細(xì)胞發(fā)育過程中,特別是對調(diào)節(jié)感覺細(xì)胞精確數(shù)量的必要性。因此,對毛細(xì)胞而言,miRNA的功能是調(diào)節(jié)靶基因的精確水平。
在斑馬魚的內(nèi)耳中有神經(jīng)細(xì)胞和毛細(xì)胞,研究發(fā)現(xiàn)[2],兩種細(xì)胞分化后表達(dá)的miR-183家族成員水平不同,神經(jīng)細(xì)胞miR-183的表達(dá)水平低于毛細(xì)胞,而且在miRNA的超表達(dá)過程中呈現(xiàn)一種消極的影響,然而毛細(xì)胞在相同處理下體現(xiàn)了積極的影響,提示miRNA的許多靶向轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物在初始的毛細(xì)胞中受抑制,但又可能是必需的。迄今為止,對于神經(jīng)源性基因(包括特定的聽平衡神經(jīng)節(jié)神經(jīng)元),在其轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物上沒有預(yù)測到miR-183家族成員的結(jié)合位點[2]。因為miRNA的功能是通過抑制其靶基因在轉(zhuǎn)錄后的水平來發(fā)揮作用,所以miRNA和靶基因是起決定性的作用。研究證實[2],miR-183家族靶基因在其基因突變體中仍表達(dá)穩(wěn)定,盡管如此,突變引起的功能喪失提示在毛細(xì)胞和神經(jīng)細(xì)胞,三種miRNA的功能有重疊,它們可能至少擁有一些共同的靶基因。這也支持過量的miR-182能夠部分緩和由miR-96基因沉默而引起的毛細(xì)胞缺失這一結(jié)果。另外,個別miR-183家族成員的超表達(dá)結(jié)果也顯示了其在增加毛細(xì)胞數(shù)量和前感覺細(xì)胞形態(tài)大小上的不同能力,同時也暗示它們各自也結(jié)合了一些獨特的靶基因[2]。Xu等[13]通過應(yīng)用生物信息學(xué)為基礎(chǔ)的靶基因預(yù)測也支持以上結(jié)論。靶基因的發(fā)現(xiàn)揭示了miR-183家族成員形態(tài)紊亂的潛在分子基礎(chǔ)。
目前關(guān)于miR-183家族成員如何影響毛細(xì)胞的命運尚不清楚,可能是通過間接刺激毛細(xì)胞基因或抑制支持細(xì)胞基因,也可能是通過下調(diào)增殖所需蛋白質(zhì)的轉(zhuǎn)錄過程等方式來起作用的[2]。哺乳動物內(nèi)耳毛細(xì)胞的再生仍是一個很大的難題,鳥類和魚的毛細(xì)胞是可以再生的[14]。盡管有研究者將Atoh1基因在體外可以成功地誘導(dǎo)生后大鼠和豚鼠的內(nèi)耳毛細(xì)胞異位發(fā)育,但是許多毛細(xì)胞仍是不成熟的或者仍有形態(tài)學(xué)的缺陷[15]。因此,一個源于潛在支持細(xì)胞的毛細(xì)胞要想完整再生需要正反兩面的細(xì)胞分化調(diào)控者,可能包括miRNA。miR-183家族在毛細(xì)胞上的大量表達(dá)與miRNA能誘導(dǎo)額外毛細(xì)胞的能力相符,同時也支持該家族在促使毛細(xì)胞再生方面潛在的治療作用。此作用可能是通過促進(jìn)毛細(xì)胞基因的表達(dá)或者抑制原始感覺和支持細(xì)胞基因來實現(xiàn)的[2]。在內(nèi)耳毛細(xì)胞的發(fā)育、分化等過程中,單個miRNA的功能和機制一旦明確必定會加速人們對其作用途徑和因子的了解,而且為miRNA參與基因治療提供了設(shè)想,例如在干細(xì)胞向毛細(xì)胞再生的過程中影響細(xì)胞特性或細(xì)胞分化[16]。
Friedman等[1]通過阻礙小鼠內(nèi)耳miRNA的功能發(fā)現(xiàn)內(nèi)耳毛細(xì)胞中的miRNA具有調(diào)節(jié)聽覺功能的作用,這些miRNA一旦出現(xiàn)異常就會導(dǎo)致耳聾,表明miRNA相當(dāng)于內(nèi)耳毛細(xì)胞正常發(fā)育、存活的調(diào)節(jié)器,任何原因引起miRNA異常都可造成漸進(jìn)性聽力損失。
單核苷酸多態(tài)性(SNP)即在基因組上單個核苷酸的變異會引起DNA序列多態(tài)性,在人類基因組中大概每1 000個堿基就有一個SNP。有研究發(fā)現(xiàn),編碼合成人類miRNA的基因及miRNA的靶基因結(jié)合序列內(nèi)也存在SNP,并通過影響miRNA的合成和成熟,導(dǎo)致新的miRNA形成以及影響靶序列識別,從而影響相關(guān)疾病的易感性[17]。Mencia等[3]發(fā)現(xiàn)miR-96種子區(qū)域SNP與家族遺傳性聽力損失密切相關(guān);在研究兩個常染色體顯性遺傳導(dǎo)致的進(jìn)行性非綜合征型聽力損失(NSHL)的西班牙家族時發(fā)現(xiàn),在miR-96種子區(qū)域有兩處突變(+ 13G>A和+14C>A)影響了脊椎動物(從魚到人)中呈完全保守性的核苷酸,同時也將突變引起的聽力損失與其他原因引起的聽力下降相區(qū)別。在He-La和NIH-3T3細(xì)胞中,通過分析這些突變對miR -96的加工及靶基因識別等的影響,顯示這兩處突變導(dǎo)致了成熟miRNA水平降低并隱藏了基因沉默的能力。Lewis等[18]在建立小鼠耳聾模型對該SNP位點進(jìn)行了功能驗證,進(jìn)一步闡明了miR-96種子區(qū)域SNP在遺傳性聾中的作用。
近期有研究發(fā)現(xiàn)了與Mencia等不同的結(jié)果,Hildebrand等[19]對150個有常染色體顯性NSHL的美國家庭進(jìn)行了重復(fù)性的研究,未發(fā)現(xiàn)miR-96種子區(qū)域的突變存在,因此認(rèn)為miRNA的突變并不是耳聾的常見原因。Soldà等[20]通過對大量意大利人群的篩選,確認(rèn)在miR-96基因中存在一個異常的可引起NSHL的突變(+57T>C),與以前所報道的突變不同的是,此突變并未影響到miR-96的種子區(qū)域,但卻改變了miR-96的同伴基因(miR -96*)的序列;而且,此研究證實該突變通過改變前體miRNA(pre-miRNA)的二級結(jié)構(gòu)來損害成熟miR-96的產(chǎn)物,同時間接影響miR-96目的基因的正常調(diào)節(jié),結(jié)果提示,miR-96的一個定量缺陷足以引起聽力下降[20]。
最近有學(xué)者在新生及成熟的動物內(nèi)耳中發(fā)現(xiàn)了毛細(xì)胞的原始細(xì)胞,即干細(xì)胞[21,22],通過促進(jìn)原始細(xì)胞向毛細(xì)胞分化將有助于恢復(fù)聽覺功能[23]。當(dāng)前學(xué)者們認(rèn)為許多感覺上皮細(xì)胞是從相同的祖細(xì)胞發(fā)展而來,祖細(xì)胞經(jīng)歷了一系列起始到成熟的過程,最后成為功能性的毛細(xì)胞。通過對候補基因的敲入敲除實驗,在起始或早期的耳基板和聽泡上發(fā)現(xiàn)了少量的分泌蛋白,例如骨形成蛋白4(BMP4)、T-box1(Tbx1)和Notch1[24]。通過在斑馬魚中抑制或超表達(dá)miR-183家族成員,Li等[2]發(fā)現(xiàn)miR-182的超表達(dá)擴大了聽平衡神經(jīng)節(jié)聽覺區(qū)域的缺陷,同時miR-96擾亂了前感覺及聽平衡神經(jīng)節(jié)的結(jié)構(gòu)。miR-183家族的成員同時沉默將引起半規(guī)管和內(nèi)耳的缺陷。Wang等[25]通過培養(yǎng)胚胎小鼠的內(nèi)耳干細(xì)胞發(fā)現(xiàn),在內(nèi)耳干細(xì)胞向毛細(xì)胞樣胞體分化過程中有miR-182的表達(dá),異位的miR-182能促使內(nèi)耳干細(xì)胞向毛細(xì)胞樣胞體分化。其功能可能與公認(rèn)的目的基因T-box1相關(guān),提示miR-182和T-box1能促使內(nèi)耳干細(xì)胞分化成毛細(xì)胞。因此,這可能是解決毛細(xì)胞缺失造成聽覺障礙的一條新途徑。
miRNA在生物發(fā)育過程中的作用已被廣泛研究,許多高保守性的miRNA在特定的細(xì)胞、器官和生物過程(包括疾?。┲械淖饔靡驳玫搅顺浞值恼J(rèn)識。miR-183家族在內(nèi)耳發(fā)育中有重要的調(diào)控作用,與聽力損失也有密切的關(guān)系,因此,miR-183家族與聽力損失的相關(guān)性將成為未來的研究熱點之一,尤其是在促使毛細(xì)胞再生領(lǐng)域及聽力提高等方面,有望探索基因治療方法。
1 Friedman LM,Dror AA,Mor E,et al.MicroRNAs ale essential for development and function of inner ear hair cells in vertebrates[J].Proc Natl Aead Sci USA,2009,106:7 915.
2 Li HQ,Kloosterman W,F(xiàn)ekete DM.MicroRNA-183 family members regulate sensorineural fates in the inner ear[J].The Journal of Neuroscience,2010,30:3 254.
3 Mencia A,Hoybjor SM,Redshaw N,et al.Mutations in the seed region of human miR-96 are responsible for non-syndromic progressive hearing loss[J].Nature Genetics,2009,41:609.
4 Ambms V.MicoRNA pathways in flies and wornls growth,death,fat,stress,and timing[J].Cell,2003,113:673.
5 Saini HK,Enright AJ,Griffiths-Jones S.Annotation of mammalian primary microRNAs[J].BMC Genomics,2008,9:564.
6 Filipowicz W,Bhattacharyya SN,Sonenberg N.Mechanisms of posttransciptional regulation by microRNAs:are the answers in sight[J]?Nature Reviews,2008,9:102. 7 Pierce ML,Weston MD,F(xiàn)ritzseh B,et al.MicroRNA-183 family conservation and ciliated neurosensory organ expressio[J].Evol Dev,2008,10:106.
8 Lagos-Quintana M,Rauhut R,Yalcin A,et al.Identification of tissue-specific microRNAs from mouse[J].Curr.Biol,2002,12,:735.
9 Wienholds E,Kloosterman WP,Miska E,et al.MicroRNA expression in zebrafish embryonic development[J].Science,2005,309:310.
10 Weston MD,Pierce ML,Roeha S,et al.MicroRNA gene expression in the mouse inner ear[J].Brain Res,2006,1111:95.
11 Soukup GA.Little but loud:Small RNAs have a resounding affect on ear development[J].Brain Res,2009,1277:104.
12 Sacheli R,Nguyen L.Expression patterns of miR-96,miR-182 and miR-183 in the developing inner ear[J].Gene Expression Patterns,2009,9:364.
13 Xu S,Witmer PD,Lumayag S,et al.MicroRNA(miRNA)transcriptome of mouse retina and identification of a sensory organ-specific miRNA cluster[J].J Biol Chem,2007,282:25 053.
14 Haddon C,Lewis J.Early ear development in the embryo of the zebrafish,Danio rerio[J].J Comp Neurol,1996,365:113.
15 Kelley MW.Regulation of cell fate in the sensory epithelia of the inner ear[J].Nat Rev Neurosci,2006,7:837.
16 Beisel K,Hansen L,Soukup G,et al.Regenerating cochlear hair cell:quo vadis stem cell[J].Cell Tissue Res,2008,333:373.
17 Duan R,Pak C,Jin P,et al.Single nucleotide polymorphism associated with mature miR-1 25a alters the processing of pd -miRNA[J].Hum Mol Genet,2007,16:1 124.
18 Lewis MA,Quint E,Glazier AM,et al.An ENU-induced mutation of miR-96 associated with progressive hearing loss in mice[J].Nature Genetics,2009,41:614.
19 Hildebrand MS,Witmer PD,Xu S,et al.miRNA mutations are not a common cause of deafness[J].Am J Med Genet A,2010,152A:646.
20 SoldàG,Robusto M,Primignani P,et al.A novel mutation within the MIR96 gene causes non-syndromic inherited hearing loss in an Italian family by altering pre-miRNA processing[J].Hum Mol Genet,2012,21:577.
21 Diensthuber M,Oshima K,Heller S.Stem/progenitor cells derived from the cochlear sensory epithelium give rise to spheres with distinct morphologies and features[J].J Assoc Res Otolaryngol,2009,10:173.
22 Li H,Liu H,Heller S.Pluripotent stem cells from the adult mouse inner ear[J].Nat Med,2003,9:1 293.
23 Edge AS,Chen ZY.Hair cell regeneration[J].Curr Opin Neurobiol,2008,18:377.
24 Kelley MW,Regulation of cell fate in the sensory epithelia of the inner ear[J].Nat Rev Neurosci,2006,7:837.
25 Wang XR,Zhang XM,Du J,et al.MicroRNA-182 regulates otocyst-derived cell differentiation and targets T-box1 gene[J].Hear Res,2012,286:55.
(2012-10-12收稿)
(本文編輯 周濤)
10.3969/j.issn.1006-7299.2013.04.031
時間:2013-5-9 13:58
R764.43
A
1006-7299(2013)04-0425-03
1 南昌大學(xué)第一附屬醫(yī)院耳鼻咽喉頭頸外科(南昌 330006)通訊作者:張劍(Email:zhangjian115123@126.com)
△ 為并列第一作者
網(wǎng)絡(luò)出版地址:http://www.cnki.net/kcms/detail/42.1391.R.20130509.1358.007.html