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    以離體肝灌流技術(shù)研究當歸對黃藥子肝毒性的保護作用

    2012-12-17 05:30:18劉海洋路瑞華李偉王加志
    中醫(yī)藥信息 2012年2期
    關(guān)鍵詞:黃嘌呤離體氧化酶

    劉海洋,路瑞華,李偉,王加志

    (1.黑龍江中醫(yī)藥大學佳木斯學院,黑龍江 佳木斯 154007;2黑龍江省中醫(yī)研究院,黑龍江 哈爾濱 150036)

    離體肝灌流技術(shù)最初由英國生理學家Trowell[1]于1942年創(chuàng)立,1951年Miller[2]改進了灌流方法。近年來,離體肝灌流(ILP)技術(shù)被廣泛用于藥理毒理學研究,在進行離體肝灌流實驗時,灌流液中的藥物未經(jīng)腸道菌群代謝、消化酶及消化道上皮細胞的影響,化合物均以原形存在于灌流液中,直接與肝細胞相接觸產(chǎn)生作用,排除體內(nèi)其他細胞因子、激素等的影響。

    1 實驗材料

    1.1 藥物與試劑

    受試藥物購于黑龍江省藥材公司,黃藥子產(chǎn)地河北,經(jīng)黑龍江省藥檢所鑒定為薯蕷科植物黃獨(Dioscorea bulbifera L)的塊莖。當歸產(chǎn)地四川,經(jīng)黑龍江省藥檢所鑒定本品為傘形科植物當歸(Angelica sinensis(Oliv.)Diels)的干燥根。

    黃嘌呤氧化酶測定試劑盒(南京建成生物工程研究所,20100929);ALT(長春匯力生物技術(shù)有限公司,2010042)。

    供試溶液的制備:黃藥子、當歸飲片,頭煎10倍量水,浸泡2h后,煎煮1h,二煎8倍量水,煎煮1h,合并煎液,濃縮為含黃藥子0.44g/ml;當歸0.88g/ml。并分別以相同條件制備黃藥子配伍當歸水煎液,1∶2配伍組1.32g/ml。

    乳酸鈉林格氏液(天津市大冢制藥有限公司,8J79C);1640(德國貝爾);醫(yī)用氧氣(純度大于99%,黑龍江佳木斯醫(yī)用氣體公司);EDTA(上海華舜生物工程有限公司);磷酸二氫鉀、硫酸鎂、碳酸氫鈉、葡萄糖(天津市凱通化學試劑有限公司,GR)。

    1.2 實驗動物

    雄性SD大鼠,50只,體質(zhì)量(250±20)g,由黑龍江中醫(yī)藥大學藥物安全評價中心(GLP)提供,動物質(zhì)量合格證書號:醫(yī)動字第01-10-2號。

    1.3 Krebs-Ringer灌流液的配制

    取市售的乳酸鈉林格氏液1000ml,加入碳酸氫鈉2100.25mg、EDTA-Na2186.12mg、葡萄糖 2199.68mg、磷酸二氫鉀163.31mg、硫酸鎂295.78mg,超聲溶解,即得,4℃保存,臨用前預熱至37℃。

    1.4 儀器

    恒流泵(河北保定蘭格恒流泵有限公司BQ50-1J,泵頭WX10);752型分光光度計(上海第二分析儀器廠);電子pH計(上海康儀儀器有限公司PHB-8型);水浴鍋(天津市泰斯特儀器有限公司,DK-98-1型,加熱功率500W加熱溫度37~100℃,波動度±5℃)。

    1.5 統(tǒng)計學處理

    2 方法與結(jié)果

    2.1 最佳灌流條件考查

    以經(jīng)氧氣飽和及加熱至37℃的灌流液非循環(huán)性灌流沖洗肝臟中的血液。分別以不同流速進行灌流,同時測定流出液pH值及ALT酶活性。見表1、表2。

    表1 不同流量下各灌流組流出液的pH值變化情況(±s)

    表1 不同流量下各灌流組流出液的pH值變化情況(±s)

    注:高流速組與中低流速組相比,*P <0.05,**P <0.01。使用中低流速灌流過程中,pH值相對穩(wěn)定,對肝組織內(nèi)部結(jié)構(gòu)基本無損傷。

    時間n最高15' 5 7.51 ±0.01 7.52 ±0.02 7.02 ±0.02 7.05 ±0.03流量低中高30' 5 7.53 ±0.01 7.49 ±0.02 6.73 ±0.02* 6.55 ±0.00460' 5 7.53 ±0.01 7.49 ±0.01 6.56 ±0.02 6.00 ±0.0390' 5 7.44 ±0.01 7.45 ±0.02 6.04 ±0.02 5.57 ±0.06**

    表2 不同灌流速度下各組流出液中ALT酶活性(U/L,±s)

    表2 不同灌流速度下各組流出液中ALT酶活性(U/L,±s)

    注:各流速組相比,*P <0.05,**P <0.01。以高流速灌流,在90分鐘內(nèi),受試肝臟產(chǎn)生明顯損害,差異有統(tǒng)計學意義。

    組別90中 5 33.55 ±5.76 35.24 ±5.36 39.14 ±5.67 44.85 ±4.57高 5 41.24 ±3.67 51.94 ±4.67*65.24 ±7.67* 69.26 ±7.97*最高 5 52.49 ±3.81**63.24 ±5.83**67.34 ±8.97** 71.41 ±12.67 n15' 30' 60' 90'低 5 34.57 ±5.18 34.36 ±4.21 38.26 ±5.17 41.29 ±3.**

    灌流90min后,中流量組肝臟外觀呈土黃色,顏色均一,質(zhì)柔軟,無腫脹且在整個灌流過程中流出液pH值保持相對恒定,最適宜肝灌流研究。

    2.2 離體肝灌流

    離體大鼠肝灌流模型建立參照丁選勝的方法[3]。

    2.3 取樣時間

    給藥前為 0,給藥后 15'、30'、60'、90'分別取樣0.5ml,立即補入相應劑量的1640灌流液。

    2.4 黃嘌呤氧化酶(XOD)測定方法按試劑盒說明

    取樣品0.1ml,加入各種試劑,混勻,置37℃水浴20min,加終止液1mL,混勻,于530nm,1cm 光徑,以蒸餾水調(diào)吸光度零點,用752分光光度計讀取各管的OD值。

    2.5 結(jié)果

    2.5.1 黃藥子單煎液對大鼠灌流肝臟XOD活性的影響

    取大鼠30只,隨機分為三組,分別為高劑量組(4.4mg/ml)、中劑量組(2.2mg/ml)、低劑量組(1.1mg/ml)。結(jié)果見表3。黃藥子單煎組不同劑量下酶活性相比較,XOD活性差異顯著,有統(tǒng)計學意義。黃藥子單煎液在低劑量時即可產(chǎn)生肝毒性,隨著作用時間的延長,損傷作用更加明顯。

    表3 黃藥子單煎液對大鼠灌流肝臟XOD活性的影響(±s)

    表3 黃藥子單煎液對大鼠灌流肝臟XOD活性的影響(±s)

    注:高、中、低各劑量組各時間點 XOD 活性比較,*P <0.05,**P <0.01。

    15' 30' 60' 90'低劑量 10 3.01 ±0.51 10.15 ±3.32 15.29 ±2.59 16.67 ±4.72 19.08 ±5.49組別n 0*中劑量 10 3.10 ±1.01 11.27 ±4.21 16.60 ±5.28 19.37 ±3.27 27.65 ±5.51**高劑量 10 3.00 ±0.87 12.65 ±3.94 17.98 ±3.25 23.56 ±3.49 38.55 ±6.30**

    2.5.2 黃藥子與當歸配伍混煎液對大鼠灌流肝臟XOD活性的影響 結(jié)果見表4。

    表4 配伍混煎液對大鼠灌流肝臟XOD活性的影響(±s)

    表4 配伍混煎液對大鼠灌流肝臟XOD活性的影響(±s)

    注:配伍組與空白組相比較,*P>0.05;配伍組與黃藥子組灌流30'-90'的酶活性比較,△P<0.05;說明黃藥子與當歸1∶2為減毒最佳配伍比例,具有保護肝細胞、降低肝損傷的作用。

    n15' 30' 60' 90'配伍組 10 7.34 ±3.87* 9.25 ±3.23 10.54 ±2.82 11.48 ±2.23組別△黃單組 1010.15 ±3.32 15.29 ±2.59 16.67 ±4.72 19.08 ±5.49△空白組 10 6.89 ±1.72* 6.96 ±1.91 6.99 ±3.31 6.87 ±4.18△

    2.5.3 灌流肝臟病理組織切片的光學顯微鏡觀察結(jié)果見圖1。

    圖1 灌流肝臟HE染色光學顯微鏡圖

    由圖可知,空白組肝細胞索排列整齊,胞質(zhì)染色均一,中央靜脈結(jié)構(gòu)清晰;黃藥子組肝細胞腫脹溶合、排列紊亂、肝板消失、細胞界限不清、細胞核固縮、胞漿染色不均一、匯管區(qū)空泡變,小膽管擴張、水腫、并有大量炎癥細胞浸潤和脂肪滴形成。配伍組肝板沿中央靜脈輻射狀排列,肝板與肝血竇較清晰,病變呈局灶性,肝細胞個別出現(xiàn)腫脹及炎細胞浸潤。

    3 討論

    黃嘌呤氧化酶(XOD)是體內(nèi)核酸代謝中一種重要的酶,其廣泛分布于心、肺、肝臟、小腸粘膜等組織細胞漿膜內(nèi),血清中的 XOD主要來自于肝細胞,可反映肝細胞損傷且有特異性診斷意義[4]。肝組織內(nèi)氧自由基增加愈明顯,XOD活性明顯降低,脂質(zhì)過氧化物生成明顯增加,對肝組織的損傷也越重。

    超氧陰離子自由基的生成與黃嘌呤氧化酶活性呈正相關(guān),自由基的大量生成造成嚴重的氧化損傷。結(jié)合病理組織學,本研究結(jié)果表明,黃藥子中含有損傷肝細胞提高XOD活性的化合物,打破了機體對自由基生成和消除的平衡,造成肝組織的受損和細胞毒作用;以1∶2進行黃藥子與當歸進行配伍使用時,具有顯著降低XOD活性的作用[5]。

    [1] Trowell OA.The establishment and app lication of iso lated perfused rat liver preperation[J].J Physiol(London),1942,100:432.

    [2] Miller LL.Biological synthesis of serum protein by the iso lated perfused rat liver[J].J Exp Med,1951,94:431.

    [3] 丁選勝,李歐.海藻甘草及其相配伍后的水提取物的肝毒性研究[J].江蘇中醫(yī)藥,2002,23(10):51-54.

    [4] 趙遠紅,邵鳳珍.黃嘌呤氧化酶與肝病關(guān)系的探討[J].中西醫(yī)結(jié)合肝病雜志,2005,15(3):188-190.

    [5] 于棟華.黃藥子配伍當歸的減毒及機理的研究[D].哈爾濱:黑龍江中醫(yī)藥大學,2007:27-32.

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