顏曉勇,張茂平,吳蔚樺
(1.遵義醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院腎內(nèi)科,貴州遵義563003;2.瀘州醫(yī)學(xué)院附屬第二醫(yī)院腎內(nèi)科,四川瀘州646000)
糖尿病腎?。╠iabetes nephropathy,DN)為糖尿病最常見、最嚴(yán)重的微血管并發(fā)癥之一,是導(dǎo)致終末期腎功能衰竭和糖尿病致死的主要原因。自噬(autophagy)是細(xì)胞利用溶酶體降解自身受損的細(xì)胞器和大分子物質(zhì)的過程,是真核細(xì)胞特有的生命現(xiàn)象,自噬性細(xì)胞死亡有別于凋亡(Ⅰ型程序性死亡),而被稱為Ⅱ型程序性死亡。近年來的研究提示,細(xì)胞自噬在腎臟疾病中扮演重要的角色,特別是足細(xì)胞病[1-2],如微小病變腎病、局灶性節(jié)段性腎小球硬化(FSGS)、膜性腎病、DN等,推測細(xì)胞自噬與DN的發(fā)生、發(fā)展有關(guān),然而這方面的研究還鮮見報道。本研究檢測了DN大鼠模型各時間點細(xì)胞自噬標(biāo)志蛋白——微管相關(guān)蛋白1輕鏈3(microtubule-associated protein 1 light chain 3,LC3)的表達(dá)水平和細(xì)胞凋亡水平,探討其關(guān)系和意義,為進(jìn)一步研究DN發(fā)病機(jī)制和干預(yù)治療提供依據(jù)。
1.1 動物分組與模型制備 成年雄性SD大鼠48只,8周齡,體質(zhì)量(230±20)g,購至四川大學(xué)實驗動物中心。標(biāo)準(zhǔn)化飼養(yǎng)房籠子喂養(yǎng)。設(shè)模型組和正常對照組,每組設(shè)2、4、6和8周,共4個觀察時間點,各組每個時間點6只大鼠。模型組采用1%鏈脲菌素(STZ,Sigma公司)55 mg/kg一次性腹腔內(nèi)注射誘導(dǎo)造模。72 h后至少連續(xù)3 d尾靜脈采血測血糖,以連續(xù)3次血糖大于16.7 mmol/L,尿量大于原尿量的150%,尿蛋白排泄大于30 mg/24 h者為成模標(biāo)準(zhǔn)[3]。正常對照組用同劑量的生理鹽水腹腔注射。各實驗組均采用相同的大鼠標(biāo)準(zhǔn)食物和飲用水,成模后均未使用降糖藥。每周測定1次血糖、尿蛋白,并定期監(jiān)測一般項目。
表1 兩組大鼠血糖、KI、尿蛋白及Ccr比較(n=6)
1.2 標(biāo)本收集與生化指標(biāo)檢測 在實驗的2、4、6、8周分別通過尾靜脈測量大鼠血糖,并將每只大鼠放入代謝籠留取24 h尿液,記錄24 h尿量,檢測24 h尿白蛋白量(ualb)和24 h尿肌酐濃度(ucrea);同時從兩組中隨機(jī)選取6只大鼠處死,測量大鼠體質(zhì)量;股靜脈取血5 mL檢測血清肌酐(Cr)。經(jīng)腹主動脈灌注生理鹽水后摘取腎臟,立即將右腎組織存入―80℃低溫冰箱;稱取左腎質(zhì)量,取左腎組織10%甲醛固定,待作病理學(xué)檢查。計算內(nèi)生肌酐清除率(Ccr)和腎臟肥大指數(shù)(KI),公式為:Ccr=[尿肌酐(mmol/L)×尿量(mL)×100]/[血肌酐(mmol/L)×體質(zhì)量(g)×1 440],KI=腎質(zhì)量/體質(zhì)量。
1.3 腎臟病理學(xué)檢測 普通HE染色,觀察兩組各時點腎小球、腎小管間質(zhì)病變。
1.4 腎臟LC3免疫組織化學(xué)染色 石蠟切片常規(guī)脫蠟、水化,3%H2O2甲醇液浸泡,微波修復(fù)抗原,正常羊血清封閉,先后滴加稀釋的一抗(兔抗大鼠LC3抗體,英國Abcam公司),羊抗兔二抗,ABC復(fù)合物及DAB顯色劑,蘇木素復(fù)染,脫水,透明,甘油明膠封片。以PBS代替一抗作為對照。先低倍鏡下觀察著染情況,再在高倍鏡下隨機(jī)選皮質(zhì)區(qū)30個腎小球,采用全自動圖像分析系統(tǒng)(Image-proplus 6.0)分別計數(shù)其積分光密度(IOD)值,取其均值分析。
1.5 原位末端標(biāo)記法(TUNEL)染色觀察凋亡細(xì)胞 石蠟切片5μm,二甲苯脫蠟,PBS沖洗,胃蛋白酶消化,PBS沖洗;加TUNEL反應(yīng)液(武漢博士德公司提供)37℃孵育60 min,PBS沖洗;加堿性磷酸酶抗體37℃孵育30 min,PBS沖洗;加1~2滴BCIP/NBT,室溫下孵育10~30 min,PBS沖洗;蘇木素復(fù)染;水性封片劑封片、烘干,光鏡觀察細(xì)胞核紅色為陽性。在光鏡下(×400),每組取6個樣本,每個樣本計數(shù)5個不同視野凋亡的腎小管細(xì)胞數(shù),與同視野腎小管細(xì)胞總數(shù)的百分比率,計算其均值,以確定平均凋亡指數(shù)[4]。
1.6 統(tǒng)計學(xué)處理 使用SPSS 17.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)處理,計量資料以±s表示,方差不齊時行數(shù)據(jù)對數(shù)變換使其方差齊,多組比較采用單因素方差分析,組間比較采用SNK-q檢驗;兩組均數(shù)比較采用獨立樣本均數(shù)t檢驗;變量間的關(guān)系判斷采用Pearson相關(guān)分析。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 兩組大鼠腎臟病理學(xué)比較 腎臟病理HE染色顯示正常對照組腎小球、腎小管間質(zhì)、腎臟血管未發(fā)現(xiàn)明顯異常,而模型組2周即出現(xiàn)明顯腎小球增大,系膜基質(zhì)逐漸增多,系膜細(xì)胞增多,小管擴(kuò)張。
2.2 兩組大鼠血糖、KI、尿蛋白及Ccr比較 兩組大鼠血糖、KI、尿蛋白及Ccr比較見表1。
2.3 兩組大鼠LC3免疫組化結(jié)果比較 LC3主要表達(dá)于腎小管,模型組2、4、6、8周腎臟LC3陽性產(chǎn)物(棕黃色)IOD值均弱于對照組(P<0.05);模型組各時點間LC3陽性產(chǎn)物IOD值比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。見圖1。
圖1 LC3在大鼠腎組織中的表達(dá)情況(免疫組化染色)
2.4 兩組大鼠細(xì)胞凋亡指數(shù)比較 模型組2、4、6、8周腎臟凋亡細(xì)胞增多(紅色為凋亡細(xì)胞),主要出現(xiàn)于腎小管,其凋亡指數(shù)均高于對照組(P<0.05);模型組各時點凋亡指數(shù)比較,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。見圖2。
A:對照組;B、C、D、E:模型組2、4、6、8周。
2.5 相關(guān)性分析 模型組LC3表達(dá)量與尿蛋白、KI呈負(fù)相關(guān)(r=―0.604,P<0.01;r=―0.653,P<0.01);模型組腎臟細(xì)胞凋亡指數(shù)與尿蛋白、KI呈正相關(guān)(r=0.829,P<0.01;r=0.801,P<0.01);LC3表達(dá)量與細(xì)胞凋亡指數(shù)呈負(fù)相關(guān)(r=―0.835,P<0.01)。
DN的發(fā)病機(jī)制至今尚未完全闡明,近年來的研究提示,自噬在腎臟疾病中扮演重要的角色,推測細(xì)胞自噬可能與糖尿病腎病的發(fā)生、發(fā)展有關(guān)。本研究顯示:LC3主要表達(dá)于腎小管,模型組2、4、6、8周腎臟LC3陽性產(chǎn)物(棕黃色)IOD值均弱于對照組(P<0.05);模型組各時點間LC3陽性產(chǎn)物IOD值比較,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01);模型組LC3的表達(dá)量與尿蛋白、KI呈負(fù)相關(guān)(P<0.01)。提示自噬的缺乏可能促進(jìn)了早期DN的發(fā)展。自噬在細(xì)胞和組織穩(wěn)態(tài)中發(fā)揮重要作用:(1)基礎(chǔ)性的自噬有修復(fù)細(xì)胞和維持細(xì)胞生命的作用;(2)過量的自噬會導(dǎo)致細(xì)胞程序性死亡[5]。細(xì)胞自噬水平的降低使其對腎臟細(xì)胞的修復(fù)和生命維持功能減弱,引起腎小管功能障礙,對蛋白的重吸收減少和適應(yīng)細(xì)胞代謝負(fù)荷增加的功能亦減弱,從而可能導(dǎo)致腎臟損傷。
糖尿病時,內(nèi)皮細(xì)胞葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)子表達(dá)增加而使胞內(nèi)葡萄糖含量增加[6],進(jìn)而增加了細(xì)胞內(nèi)活性氧,這可能是糖尿病腎病凋亡增加的主要機(jī)制[7]。這與本研究結(jié)果相一致,模型組2、4、6、8周腎臟凋亡細(xì)胞增多(紅色為凋亡細(xì)胞),主要出現(xiàn)于腎小管,其凋亡指數(shù)均高于對照組(P<0.05);模型組各時點凋亡指數(shù)比較,差異均有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01);模型組腎小管細(xì)胞凋亡指數(shù)與尿蛋白、KI呈正相關(guān)(P<0.01)。表明細(xì)胞凋亡與早期糖尿病腎病的發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān)。
本研究還發(fā)現(xiàn)LC3蛋白表達(dá)量與腎小管細(xì)胞凋亡指數(shù)呈負(fù)相關(guān)(P<0.01),且細(xì)胞自噬減弱和凋亡增多均主要發(fā)生在同一部位——腎小管。細(xì)胞自噬可以單獨通過細(xì)胞保護(hù)作用或自身破壞吞噬作用決定細(xì)胞的生存和死亡,也能通過比較復(fù)雜的機(jī)制與細(xì)胞凋亡聯(lián)系起來,從而對細(xì)胞產(chǎn)生影響。盡快地清除細(xì)胞凋亡殘余物是防止組織損傷的關(guān)鍵[8]。有研究表明自噬基因atg5缺失的胚胎同時具有凋亡細(xì)胞清除不足和組織損傷[9]。不能有效的清除凋亡細(xì)胞會引起組織對自身抗原的耐受,從而導(dǎo)致自身免疫性疾病[8]。細(xì)胞自噬對凋亡細(xì)胞及其產(chǎn)物的清除不足,可導(dǎo)致組織損傷和炎癥,這一機(jī)制可能也參與了DN的發(fā)生、發(fā)展。然而,細(xì)胞自噬在DN中的作用及其與細(xì)胞凋亡相互作用的具體機(jī)制,調(diào)高細(xì)胞自噬和減少細(xì)胞凋亡是否有助DN微血管病變的改善值得進(jìn)一步研究。
[1]Sato S,Kitamura H,Adachi A,et al.Two types of autophagy in the podocytes in renal biopsy specimens:ultrastructural study[J].J Submicrosc Cytol Pathol,2006,38(2/3):167-174.
[2]Asanuma K,Tanida I,Shirato I,et al.MAP-LC3,a prom-ising autophagosomal marker,is processed during the differentiation and recovery of podocytes from Pan nephrosis[J].Faseb J,2003,17(9):1165-1167.
[3]汪琛穎,司馬義·薩依木,馬晴,等.糖尿病腎病大鼠胰基因組DNA甲基化狀態(tài)的變化[J].北京師范大學(xué)學(xué)報:自然科學(xué)版,2002,38(3):395-398.
[4]Schiffer M,Mundel P,Shaw AS,et al.A novel role for the adaptor molecule CD2-associated protein in transforming growth factor-beta-induced apoptosis[J].J Biol Chem,2004,279(35):37004-37012.
[5]Vojo D,Autophagy BL.Immunity,and microbial adaptations[J].Cell,2009,5(16):527-549.
[6]Sheikh-Ali M,Sultan S,Abdul-Razzak A,et al.Effects of antioxidants on glucose-induced oxidative stress and endoplasmic reticulum stress in endothelial cells[J].Diabetes Res Clin Pract,2010,87(2):161-166.
[7]Fa WE,Dekker D,Berden JH,et al.The role of reactive Oxygen species in apoptosis of the diabetic kidney[J].Apoptosis,2009,14(12):1451-1458.
[8]Grossmayer GE,Munoz LE,Gaipl US,et al.Removal of dying cells and systemic lupus erythematous[J].Mod Rheumatol,2005,15(6):383-390.
[9]Qu XP,Zou ZJ,Sun QH,et al.Autophagy Gene-Dependent clearance of apoptotic cells during embryonic development[J].Cell,2007,128(5):931-946.