張一帆,張興義,姜 睿,孫 梅*
(1.吉林大學(xué)白求恩第二醫(yī)院,吉林 長(zhǎng)春130041;2.吉林大學(xué)中日聯(lián)誼醫(yī)院)
一個(gè)世紀(jì)以前,Boveri曾在研究中觀察到染色體異常與腫瘤發(fā)生相關(guān),并由此推測(cè)染色體不穩(wěn)定性(chromosome instability,CIN)可介導(dǎo)腫瘤的發(fā)生[1]。如今隨著腫瘤分子生物學(xué)的發(fā)展,人們逐漸意識(shí)到惡性腫瘤具有不同于正常細(xì)胞的一些生物學(xué)特性,例如過(guò)度激活的增殖信號(hào)、抗凋亡途徑以及侵襲轉(zhuǎn)移機(jī)制等。其中染色體不穩(wěn)定性是惡性腫瘤的主要標(biāo)志之一,可以促進(jìn)惡性腫瘤產(chǎn)生一系列生物學(xué)特性,從而在腫瘤發(fā)生發(fā)展中起到關(guān)鍵作用[2]。然而迄今為止人們對(duì)細(xì)胞是如何保持基因組穩(wěn)定性以及染色體不穩(wěn)定性在腫瘤發(fā)生發(fā)展中的具體作用機(jī)制卻知之甚少。近年來(lái)科研工作者們開(kāi)展了多項(xiàng)研究試圖深入了解基因組不穩(wěn)定性產(chǎn)生的機(jī)制及其在腫瘤發(fā)生過(guò)程中的作用,而凝聚蛋白(Cohesin)復(fù)合體的發(fā)現(xiàn)無(wú)疑是該領(lǐng)域新的突破口。Cohesin蛋白復(fù)合體是細(xì)胞維護(hù)染色體穩(wěn)定性的關(guān)鍵因子,而SMC1A作為Cohesin的重要亞基之一,其功能異常被發(fā)現(xiàn)與包括惡性腫瘤在內(nèi)的多種疾病相關(guān)。本文主要對(duì)Cohesin的亞基SMC1A在腫瘤領(lǐng)域的研究進(jìn)展作一綜述。
Cohesin蛋白復(fù)合體是一種人類(lèi)進(jìn)化過(guò)程中高度保守的蛋白復(fù)合體,最早發(fā)現(xiàn)于酵母細(xì)胞。該蛋白復(fù)合體含有4個(gè)亞基:即一對(duì)染色體結(jié)構(gòu)維修蛋白(Structural Maintenance of Chromosomes,SMC)SMC1A和SMC3,以及兩個(gè)非SMC蛋白質(zhì)RAD21/SCC1 和 STAG/SCC3/SA 構(gòu) 成。 其 中SMC蛋白SMC1A和SMC3由兩條卷曲螺旋的結(jié)構(gòu)域以及一個(gè)球狀鉸鏈域構(gòu)成。在Cohesin復(fù)合體中兩個(gè)SMC蛋白的鉸鏈域相互交纏,以此建立一個(gè)反向的異二聚體,而他們的起始域與RAD21蛋白相互作用,共同構(gòu)成一個(gè)封閉環(huán)狀結(jié)構(gòu)。最后,RAD21亞基與SA結(jié)合,形成一個(gè)完整的Cohesin復(fù)合體[3]。Cohesin可以通過(guò)其特殊的環(huán)狀結(jié)構(gòu)捕捉DNA,藉此在姊妹染色單體凝聚以及其他細(xì)胞活動(dòng)中執(zhí)行重要功能(圖1)。
圖1 Cohesin結(jié)構(gòu)示意
在細(xì)胞有絲分裂過(guò)程中染色體復(fù)制,形成成對(duì)的姊妹染色體。當(dāng)細(xì)胞進(jìn)入分裂中期后,姊妹染色體緊密聚攏在紡錘體赤道,直到末期向兩極準(zhǔn)確分離。同源姊妹染色體的這種彼此聚集作用被稱(chēng)作姊妹染色體凝聚(Sister Chromatid Cohesion,SCC)。在該過(guò)程中Cohesin復(fù)合體可以通過(guò)其環(huán)狀結(jié)構(gòu)把姊妹染色體聚攏在中期紡錘體上,并維持姊妹染色體之間一定的張力,直到分裂末期姊妹染色體分離[4]。Cohesin復(fù)合體在染色體凝聚過(guò)程中的這一功能可以有效防止姊妹染色單體的提前分裂,因此對(duì)維護(hù)子細(xì)胞的染色體穩(wěn)定性有著重要意義[5]。雖然已有多個(gè)針對(duì)Cohesin在細(xì)胞分裂中的作用模式被相繼提出[6-8],但迄今為止Cohesin蛋白在細(xì)胞分裂過(guò)程中的作用機(jī)制并未得到完全闡明。目前普遍認(rèn)為Cohesin在有絲分裂過(guò)程中發(fā)揮其功能依賴(lài)多個(gè)Cohesin相關(guān)蛋白的協(xié)調(diào)作用。例如在酵母細(xì)胞的G1期或在哺乳動(dòng)物細(xì)胞中的前一個(gè)細(xì)胞周期的末期,輔助因子NIPBL便開(kāi)始介導(dǎo)Cohesin裝配在染色體上。當(dāng)細(xì)胞進(jìn)入S復(fù)制期后,Eco1/Ctf7介導(dǎo)的SMC3乙酰化可以維持Cohesin穩(wěn)定地固著在染色體上[9]。而姊妹染色體的準(zhǔn)確配對(duì)和維持則有賴(lài)于PDS5與Cohesin蛋白復(fù)合體之間的相互作用[10]。細(xì)胞由分裂中期向后期過(guò)渡受到中/后期關(guān)卡(checkpoint)嚴(yán)格調(diào)控。只有當(dāng)所有姊妹染色體在紡錘體內(nèi)準(zhǔn)確的向兩極分離時(shí),APC/C復(fù)合體(Anaphase Promoting Complex/Cyclosome)抑制中/后期關(guān)卡,推動(dòng)細(xì)胞周期向后期過(guò)渡。在細(xì)胞分裂后期,Cohesin的亞基 RAD21和SA1/SA2被Polo-like激酶1(PLK1)磷酸化,環(huán)狀結(jié)構(gòu)被打開(kāi),使固著在染色體臂上的Cohesin逐步脫落下來(lái)。但聚集在著絲粒區(qū)域內(nèi)的Cohesin仍受到SGO1的保護(hù)[11]。此外Cohesin從染色體上脫離還需要 WAPL因子與RAD21及SA1直接作用[12]。最后由APC/C復(fù)合體降解PTTG1,促使ESPL1(裂解酶)切斷RAD21,從而使著絲粒上的Cohesin徹底從染色質(zhì)中脫落下來(lái)[13]。Cohesin在細(xì)胞分裂周期中的功能很好的為我們揭示了細(xì)胞分裂過(guò)程中姊妹染色體是如何緊密相連以及準(zhǔn)確分離。然而在細(xì)胞分裂期結(jié)束后仍有部分Cohesin復(fù)合體以環(huán)狀結(jié)構(gòu)殘留在細(xì)胞內(nèi)甚或被重新裝配在染色體上[14],令人們不禁推測(cè)Cohesin除了在細(xì)胞周期調(diào)控中的作用,還履行著其他的功能(圖2)。
圖2 Cohesin在細(xì)胞周期中的作用模式
當(dāng)細(xì)胞暴露于電離輻射致其內(nèi)部的DNA雙鏈斷裂時(shí),其斷裂的DNA若得不到正確的修復(fù)則會(huì)引起基因的插入,缺失以及易位,嚴(yán)重影響染色體穩(wěn)定性,最終可能誘發(fā)腫瘤。目前已有研究發(fā)現(xiàn)Cohesin復(fù)合體在細(xì)胞的DNA修復(fù)機(jī)制中發(fā)揮重要功能。如在芽植酵母中,當(dāng)細(xì)胞暴露于γ射線導(dǎo)致其內(nèi)部發(fā)生DNA雙鏈斷裂時(shí),Cohesin復(fù)合體可以通過(guò)染色體凝聚作用使姊妹染色體彼此靠近,協(xié)助DNA修復(fù)相關(guān)因子以未發(fā)生斷裂的染色體為模板,修復(fù)其斷裂的位點(diǎn)[15]。而且在人體細(xì)胞內(nèi)Cohesin復(fù)合體常聚集在DNA雙鏈斷裂后重建連接的區(qū)域[16]。Cohesin在該區(qū)域內(nèi)的聚集不僅能在DNA發(fā)生損傷后維護(hù)DNA的構(gòu)象以利于修復(fù)相關(guān)酶的附著,還可以在哺乳動(dòng)物細(xì)胞中通過(guò)募集細(xì)胞關(guān)卡相關(guān)蛋白,調(diào)控細(xì)胞周期,調(diào)控受損DNA的修復(fù)[17]。由此可見(jiàn),Cohesin對(duì)細(xì)胞DNA修復(fù)及維護(hù)染色體穩(wěn)定性等方面具有重要作用。
如上文所述,在細(xì)胞分裂后期Cohesin的亞基RAD21可以被ESPL1溶蛋白性裂解,使環(huán)狀結(jié)構(gòu)解開(kāi),利于姊妹染色體的分離。有趣的是,研究者們?cè)诩?xì)胞凋亡過(guò)程中也發(fā)現(xiàn)了RAD21蛋白的裂解[18],但RAD21蛋白在凋亡中的裂解位點(diǎn)不同于在姊妹染色體凝聚過(guò)程中的裂解位點(diǎn),其裂解過(guò)程往往發(fā)生在凋亡早期,為非P53依賴(lài)性凋亡,而其裂解后的產(chǎn)物以正向反饋機(jī)制促進(jìn)凋亡[19]。這些結(jié)果提示Cohesin復(fù)合體參與細(xì)胞非P53凋亡途徑,但其在該凋亡信號(hào)通路中的具體機(jī)制尚不清楚。
Cohesin可以與鋅指蛋白CTCF相互作用,從而在哺乳動(dòng)物細(xì)胞印記調(diào)控中執(zhí)行重要功能。目前研究已證實(shí)鋅指蛋白CTCF可以調(diào)控多個(gè)印記位點(diǎn),其中對(duì) H19/IGF2基因的印記調(diào)控最具代表性。H19為父源性基因,而IGF2為母源性基因。Cohesin和CTCF蛋白相互作用后,CTCF一方面可以結(jié)合在H19的印記調(diào)控區(qū)域促進(jìn)其表達(dá),另一方面通過(guò)抑制IGF2的遠(yuǎn)端增強(qiáng)子阻斷IGF2基因的表達(dá)。反之亦然。鋅指蛋白CTCF在H19/IGF2基因印記中這一功能需Cohesin蛋白的參與[20]。
除此之外,Cohesin復(fù)合體與鋅指蛋白CTCF相結(jié)合以后錨定在染色體上,促使染色體形成發(fā)卡結(jié)構(gòu),從而調(diào)控基因的轉(zhuǎn)錄[21]。目前已知Cohesin蛋白及CTCF鋅指蛋白可以結(jié)合在多種基因的轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)[22]。在果蠅細(xì)胞的研究中人們還發(fā)現(xiàn)Cohesin相關(guān)蛋白Nipped-B可以通過(guò)遠(yuǎn)端增強(qiáng)子的調(diào)節(jié)促進(jìn)其下游基因cut的表達(dá)[23]。
綜上所述,Cohesin復(fù)合體不僅在細(xì)胞有絲分裂過(guò)程中維護(hù)姊妹染色單體的配對(duì)及準(zhǔn)確分離,保證子細(xì)胞的基因組穩(wěn)定性,還在DNA損傷修復(fù)、細(xì)胞周期調(diào)控、凋亡、基因印記調(diào)控以及基因轉(zhuǎn)錄調(diào)控等多項(xiàng)細(xì)胞生命活動(dòng)中發(fā)揮重要功能。由此我們不難想象Cohesin復(fù)合體的功能缺陷在人體中引起包括惡性腫瘤在內(nèi)的多種疾病。
目前人們已觀察到大多數(shù)癌細(xì)胞都展現(xiàn)出染色體不穩(wěn)定性,而Cohesin蛋白復(fù)合體自從被發(fā)現(xiàn)以來(lái)一直被認(rèn)為是維護(hù)染色體穩(wěn)定性的關(guān)鍵因子。近年來(lái)越來(lái)越多的實(shí)驗(yàn)研究致力于闡釋Cohesin蛋白及其輔助因子的功能缺陷與人類(lèi)惡性腫瘤發(fā)生發(fā)展的相關(guān)性。Barber等在表現(xiàn)為染色體不穩(wěn)定性的結(jié)腸癌細(xì)胞中發(fā)現(xiàn)包括SMC1A,SMC3,SA3和NIPBL在內(nèi)多個(gè)Cohesin相關(guān)基因的突變致其編碼蛋白表達(dá)受阻[24]。除了突變之外,Cohesin相關(guān)基因的表達(dá)異常也在多種人類(lèi)癌癥中被觀察到。例如RAD21基因在前列腺癌中高表達(dá)[25],而且該基因在乳腺癌中其表達(dá)水平與患者預(yù)后呈負(fù)相關(guān)[26]。此外人們還在宮頸癌細(xì)胞中發(fā)現(xiàn)WAPL基因的高表達(dá)可以促進(jìn)癌細(xì)胞增殖及侵襲[27],裂解酶的編碼基因ESPL1的高表達(dá)在乳腺癌和前列腺癌中均提示預(yù)后不良[28]。而RAD21在口腔鱗癌細(xì)胞中表達(dá)下調(diào)可以增強(qiáng)癌細(xì)胞的侵襲及轉(zhuǎn)移能力[29]。在胚胎細(xì)胞中PDS5B的表達(dá)缺失則可以誘發(fā)胚胎性癌[30]。這些實(shí)驗(yàn)證據(jù)足以表明Cohesin的功能缺陷與腫瘤發(fā)生具有一定的相關(guān)性。然而這些基因的表達(dá)失控與腫瘤發(fā)生的關(guān)系顯得復(fù)雜多樣。Cohesin復(fù)合體在腫瘤發(fā)生發(fā)展中的分子機(jī)制仍是現(xiàn)階段函待解決的熱點(diǎn)問(wèn)題。
如上文所述,Cohesin蛋白復(fù)合體通過(guò)其在分裂周期中的經(jīng)典模式維護(hù)細(xì)胞的染色體穩(wěn)定性。而該功能的缺陷可以導(dǎo)致姊妹染色單體的分離及子細(xì)胞內(nèi)的染色體數(shù)量異常,最終影響基因的表達(dá),例如染色體缺失可以引起某些抑癌基因的丟失。若這些抑癌基因的等位基因處于失活狀態(tài),則有可能引起細(xì)胞異常增殖甚至腫瘤的發(fā)生。同理,染色體異常增多所致癌基因的激活亦可介導(dǎo)腫瘤的發(fā)生。如惡性膠質(zhì)瘤細(xì)胞中10號(hào)染色體以單體形式存在可以導(dǎo)致抑癌基因PTEN的失活而在腎癌細(xì)胞中7號(hào)染色體的三體形式則會(huì)引起癌基因MET的過(guò)表達(dá)。不過(guò)人們?cè)谡DI組織細(xì)胞中也觀察到7號(hào)染色體的三體形式,因此關(guān)于其是否與腎癌發(fā)生發(fā)展相關(guān)尚存在較多爭(zhēng)議。有趣的是,Kudhson提出的兩次突變學(xué)說(shuō)認(rèn)為腫瘤的發(fā)生源于兩次抑癌基因的突變,而目前已有學(xué)者提出其中一次突變可能來(lái)源于Cohesin蛋白的功能缺陷[31]。除此之外,Cohesin與CTCF結(jié)合后可以調(diào)控多種不同基因的細(xì)胞印記,其中H19/IGF2基因印記的調(diào)控已被廣泛地研究。在宮頸癌Hela細(xì)胞系里RAD21基因的缺失可以引起H19/IGF2基因的印記調(diào)控異常。IGF2印記失控也發(fā)生在約90% 腎母細(xì)胞瘤以及其他惡性腫瘤中如肺癌,宮頸癌,橫紋肌肉瘤和睪丸癌等[32-34]。
綜上所述,Cohesin蛋白復(fù)合體不僅憑借其環(huán)狀結(jié)構(gòu)在細(xì)胞有絲分裂中發(fā)揮重要功能,而且還廣泛參與DNA修復(fù),細(xì)胞周期,基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控以及基因組印記等細(xì)胞生命活動(dòng),藉此維護(hù)細(xì)胞基因組的穩(wěn)定性。而突變及其他因素所致Cohesin復(fù)合體的功能缺陷往往會(huì)伴有染色體結(jié)構(gòu)及數(shù)量的異常和細(xì)胞周期失控,導(dǎo)致細(xì)胞基因組穩(wěn)定性遭到破壞,從而介導(dǎo)惡性腫瘤的發(fā)生發(fā)展。而作為其重要的部件之一SMC1A基因的異常表達(dá)也在多種人類(lèi)惡性腫瘤中發(fā)現(xiàn)。
在人類(lèi)細(xì)胞內(nèi)SMC1A基因位于性染色體11.22至11.21區(qū)域內(nèi)含有25個(gè)外顯子,負(fù)責(zé)編碼Cohesin復(fù)合體的重要部件之一SMC1A蛋白。人們?cè)谘芯緾ornelia de Lange Syndrome(CdLS)時(shí)驚奇的發(fā)現(xiàn)這種先天性綜合征與Cohesin的功能缺陷密切相關(guān),其中約5%的CdLS患者顯示SMC1A的突變。雖然該基因的突變僅存在于一小部分CdLS患者中,但這足以說(shuō)明SMC1A基因的異??梢詫?dǎo)致胚胎細(xì)胞的染色體不穩(wěn)定并造成嚴(yán)重的先天性發(fā)育缺陷。此外SMC1A被認(rèn)為與胚胎干細(xì)胞的自我更新能力密切相關(guān),利用RNAi技術(shù)下調(diào)SMC1A的表達(dá)可以削弱胚胎干細(xì)胞的自我更新能力[35]。
如上文中所述,作為Cohesin蛋白復(fù)合體亞基SMC1A與SMC3及RAD21蛋白共同構(gòu)成一個(gè)封閉環(huán)狀結(jié)構(gòu),在姊妹染色體凝聚中發(fā)揮重要功能。除此之外,人們很早就觀察到SMC1A還是某些ATM/ATR蛋白激酶的底物。當(dāng)細(xì)胞暴露于電離輻射導(dǎo)致其內(nèi)部DNA損傷后,SMC1A蛋白957和966位點(diǎn)的絲氨酸殘端被ATM磷酸化,通過(guò)NBS1和BRCA蛋白的募集作用使ATM蛋白激酶聚集在損傷部位,促進(jìn) DNA損傷的修復(fù)[36,37]。在電離輻射后的鼠類(lèi)細(xì)胞中SMC1A基因若發(fā)生突變導(dǎo)致其編碼蛋白不能被磷酸化,則會(huì)引起細(xì)胞的DNA修復(fù)能力明顯減弱,其生存率下降[38]。而且在人類(lèi)纖維細(xì)胞中運(yùn)用RNAi技術(shù)同時(shí)敲除SMC1A和SMC3則會(huì)引起細(xì)胞染色體非整倍體等異常,尤以基因組脆性位點(diǎn)變化顯著[39]。由此可見(jiàn),SMC1A在細(xì)胞DNA修復(fù)機(jī)制中起到關(guān)鍵作用,其功能異??梢詫?dǎo)致細(xì)胞DNA修復(fù)障礙,進(jìn)而引起嚴(yán)重后果。
最近人們還在去鐵草酰胺介導(dǎo)的凋亡過(guò)程中觀察到SMC1A被ATR磷酸化,表明SMC1A亦參與該類(lèi)凋亡[40]。
此外,Cohesin的亞基RAD21和SMC1還可以和鋅指蛋白CTCF共同作用于哺乳動(dòng)物c-myc基因的啟動(dòng)子序列及H19/Igf2印記調(diào)控區(qū)域,從而調(diào)控基因轉(zhuǎn)錄以及染色質(zhì)結(jié)構(gòu)[41]。
雖然SMC1A在腫瘤發(fā)生中的機(jī)制目前尚未得到充分闡明,但已有實(shí)驗(yàn)研究證實(shí)SMC1A的表達(dá)與腫瘤發(fā)生發(fā)展相關(guān)。
在急性髓細(xì)胞樣白血病的研究中人們發(fā)現(xiàn)SMC1A基因的表達(dá)與患者年齡呈負(fù)性相關(guān),而且其編碼蛋白的表達(dá)水平與患者的預(yù)后成正相關(guān)[42]。如上文所述,SMC1A在維護(hù)染色體穩(wěn)定等方面有著重要功能作用,但在該項(xiàng)研究中人們并未觀察到SMC1A的表達(dá)異常引起染色體不穩(wěn)定及其他明顯的染色體異常等情況的出現(xiàn)。SMC1A在急性髓細(xì)胞樣白血病發(fā)生發(fā)展中的分子機(jī)制仍需進(jìn)一步深入的探究。
結(jié)直腸癌細(xì)胞往往表現(xiàn)出基因組不穩(wěn)定,但其具體機(jī)制一直以來(lái)未得到闡明。最近Barber等人在研究結(jié)腸癌時(shí)發(fā)現(xiàn)132例結(jié)腸癌細(xì)胞內(nèi)有11種基因突變,而SMC1A的突變就占了其中4種,并且均為錯(cuò)義突變。該基因的錯(cuò)義突變可形成提前終止密碼子或者讀碼框的移動(dòng),使其編碼蛋白合成受阻,表達(dá)下調(diào)。為了驗(yàn)證這些基因與腫瘤發(fā)生的作用,研究者們應(yīng)用siRNA技術(shù)下調(diào)SMC1A,SMC3和SCC的表達(dá),發(fā)現(xiàn)這些基因的敲除可導(dǎo)致正常細(xì)胞姊妹染色單體凝聚功能障礙以及染色體不穩(wěn)定,提示這些Cohesin相關(guān)基因可能是引起結(jié)腸癌細(xì)胞中染色體不穩(wěn)定的靶基因,其表達(dá)受阻可影響細(xì)胞的染色體穩(wěn)定性并促使腫瘤的發(fā)生[24]。
此外,馮婉婷等人發(fā)現(xiàn)慢病毒介導(dǎo)RNAi沉默結(jié)直腸癌細(xì)胞的SMC1A基因可以引起癌細(xì)胞對(duì)奧沙利鉑的敏感性顯著增加[43],提示SMC1A的表達(dá)與癌細(xì)胞對(duì)化療藥物的敏感性相關(guān)。
但到目前為止SMC1A的調(diào)控異常在腫瘤發(fā)生過(guò)程中的作用尚存較多爭(zhēng)議。例如SMC1A的突變所造成的Cohesin功能缺陷與CdLS的發(fā)病呈一定的相關(guān)性,但大多數(shù)CdLS的患者并不伴有癌癥發(fā)生。有關(guān)SMC1A的表達(dá)下調(diào)導(dǎo)致染色體不穩(wěn)定是否發(fā)生在其他惡性腫瘤細(xì)胞中,SMC1A在不同腫瘤發(fā)生發(fā)展中的具體作用機(jī)制及其是否與姊妹染色單體凝聚功能缺陷以及染色體不穩(wěn)定相關(guān),SMC1A在不同腫瘤中的表達(dá)水平是否決定抗癌療效并與預(yù)后相關(guān)等等這些問(wèn)題都需要進(jìn)一步的研究探索和驗(yàn)證。
綜上所述Cohesin的功能缺陷在腫瘤領(lǐng)域是一個(gè)新興的分子機(jī)制,其在DNA修復(fù),細(xì)胞周期和基因表達(dá)調(diào)控和基因組印記調(diào)控等過(guò)程中的重要作用目前受到了學(xué)界的廣泛關(guān)注。而SMC1A作為Cohesin復(fù)合體的重要亞基,參與到多種細(xì)胞活動(dòng)中,其突變及調(diào)控異常往往會(huì)引起基因組的不穩(wěn)定,并有可能促成癌癥的發(fā)生發(fā)展。因此Cohesin復(fù)合體及其亞基SMC1A的深入研究有望為我們研究腫瘤發(fā)生發(fā)展的分子機(jī)制開(kāi)辟出新的途徑,從而為腫瘤的早期診斷以及個(gè)體化靶向治療的臨床應(yīng)用提供可靠的理論依據(jù)。
[1]Holland AJ,Cleveland DW.Boveri revisited:chromosomal instability,aneuploidy and tumorigenesis[J].Nat Rev Mol Cell Biol,2009,10:478.
[2]Negrini S,Gorgoulis VG,Halazonetis TD.Genomic instability-an evolving hallmark of cancer[J].Nat Rev Mol Cell Biol,2010,11:220.
[3]Haering CH,Lowe J,Hochwagen A,et al.Molecular architecture of SMC proteins and the yeast cohesin complex[J].Mol Cell,2002,9:773.
[4]Aragon L.A double lock on sister chromatids by cohesin[J].Mol Cell,2011,44:5.
[5]Michaelis C,Ciosk R,Nasmyth K.Cohesins:chromosomal proteins that prevent premature separation of sister chromatids[J].Cell,1997,91:35.
[6]Guacci V.Sister chromatid cohesion:the cohesin cleavage model does not ring true[J].Genes Cells,2007,12:693.
[7]Huang CE,Milutinovich M,Koshland D.Rings,bracelet or snaps:fashionable alternatives for Smc complexes[J].Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci,2005,360:537.
[8]Ocampo-Hafalla MT,Uhlmann F.Cohesin loading and sliding[J].J Cell Sci,2011,124:685.
[9]Rolef Ben-Shahar T,Heeger S,Lehane C,et al.Eco1-dependent cohesin acetylation during establishment of sister chromatid cohesion[J].Science,2008,321:563.
[10]Panizza S,Tanaka T,Hochwagen A,et al.Pds5cooperates with cohesin in maintaining sister chromatid cohesion[J].Curr Biol,2000,10:1557.
[11]McGuinness BE,Hirota T,Kudo NR,et al.Shugoshin prevents dissociation of cohesin from centromeres during mitosis in vertebrate cells[J].PLoS Biol,2005,3:e86.
[12]Kueng S,Hegemann B,Peters BH,et al.Wapl controls the dynamic association of cohesin with chromatin[J].Cell,2006,127:955.
[13]Hauf S,Waizenegger IC,Peters JM.Cohesin cleavage by separase required for anaphase and cytokinesis in human cells[J].Science,2001,293:1320.
[14]Peters JM,Tedeschi A,Schmitz J.The cohesin complex and its roles in chromosome biology[J].Genes Dev,2008,22:3089.
[15]Sjogren C,Nasmyth K.Sister chromatid cohesion is required for postreplicative double-strand break repair in Saccharomyces cer-evisiae[J].Curr Biol,2001,11:991.
[16]Potts PR,Porteus MH,Yu H.Human SMC5/6complex promotes sister chromatid homologous recombination by recruiting the SMC1/3cohesin complex to double-strand breaks[J].EMBO J,2006,25:3377.
[17]Watrin E,Peters JM.The cohesin complex is required for the DNA damage-induced G2/M checkpoint in mammalian cells[J].EMBO J,2009,28:2625.
[18]Chen F,Kamradt M,Mulcahy M,et al.Caspase proteolysis of the cohesin component RAD21promotes apoptosis[J].J Biol Chem,2002,277:16775.
[19]Pati D,Zhang N,Plon SE.Linking sister chromatid cohesion and apoptosis:role of Rad21[J].Mol Cell Biol,2002,22:8267.
[20]Wendt KS,Yoshida K,Itoh T,et al.Cohesin mediates transcriptional insulation by CCCTC-binding factor[J].Nature,2008,451:796.
[21]Dorsett D.Cohesin:genomic insights into controlling gene transcription and development[J].Curr Opin Genet Dev,2011,21:199.
[22]Rhodes JM,Bentley FK,Print CG,et al.Positive regulation of c-Myc by cohesin is direct,and evolutionarily conserved[J].Dev Biol,2010,344:637.
[23]Rollins RA,Korom M,Aulner N,et al.Drosophila nipped-B protein supports sister chromatid cohesion and opposes the stromalin/Scc3cohesion factor to facilitate long-range activation of the cut gene[J].Mol Cell Biol,2004,24:3100.
[24]Barber TD,McManus K,Yuen KW,et al.Chromatid cohesion defects may underlie chromosome instability in human colorectal cancers[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2008,105:3443.
[25]Porkka KP,Tammela TL,Vessella RL,et al.RAD21and KIAA0196at 8q24are amplified and overexpressed in prostate cancer[J].Genes Chromosomes Cancer,2004,39:1.
[26]Oishi Y,Nagasaki K,Miyata S,et al.Functional pathway characterized by gene expression analysis of supraclavicular lymph node metastasis-positive breast cancer[J].J Hum Genet,2007,52:271.
[27]Oikawa K,Ohbayashi T,Kiyono T,et al.Expression of a novel human gene,human wings apart-like (hWAPL),is associated with cervical carcinogenesis and tumor progression[J].Cancer Res,2004,64:3545.
[28]Meyer R,F(xiàn)ofanov V,Panigrahi A,et al.Overexpression and mislocalization of the chromosomal segregation protein separase in multiple human cancers[J].Clin Cancer Res,2009,15:2703.
[29]Yamamoto G,Irie T,Aida T,et al.Correlation of invasion and metastasis of cancer cells,and expression of the RAD21gene in oral squamous cell carcinoma[J].Virchows Arch,2006,448:435.
[30]Denes V,Pilichowska M,Makarovskiy A,et al.Loss of a cohesin-linked suppressor APRIN (Pds5b)disrupts stem cell programs in embryonal carcinoma:an emerging cohesin role in tumor suppression[J].Oncogene,2010,29:3446.
[31]Mannini L,Musio A.The dark side of cohesin:the carcinogenic point of view[J].Mutat Res,2011,728:81.
[32]Ravenel JD,Broman KW,Perlman EJ,et al.Loss of imprinting of insulin-like growth factor-II (IGF2)gene in distinguishing specific biologic subtypes of Wilms tumor[J].J Natl Cancer Inst,2001,93:1698.
[33]McCann AH,Miller N,O'Meara A,et al.Biallelic expression of the IGF2gene in human breast disease[J].Hum Mol Genet,1996,5:1123.
[34]Chao W,D'Amore PA.IGF2:epigenetic regulation and role in development and disease[J].Cytokine Growth Factor Rev,2008,19:111.
[35]Hu G,Kim J,Xu Q,et al.A genome-wide RNAi screen identifies a new transcriptional module required for self-renewal[J].Genes Dev,2009,23:837.
[36]Kim ST,Xu B,Kastan MB.Involvement of the cohesin protein,Smc1,in Atm-dependent and independent responses to DNA damage[J].Genes Dev,2002,16:560.
[37]Yazdi PT,Wang Y,Zhao S,et al.SMC1is a downstream effector in the ATM/NBS1branch of the human S-phase checkpoint[J].Genes Dev,2002,16:571.
[38]Kitagawa R,Bakkenist CJ,McKinnon PJ,et al.Phosphorylation of SMC1is a critical downstream event in the ATM-NBS1-BRCA1pathway[J].Genes Dev,2004,18:1423.
[39]Musio A,Montagna C,Mariani T,et al.SMC1involvement in fragile site expression[J].Hum Mol Genet,2005,14:525.
[40]So EY,Ausman M,Saeki T,et al.Phosphorylation of SMC1by ATR is required for desferrioxamine (DFO)-induced apoptosis[J].Cell Death Dis,2011,2:e128.
[41]Stedman W,Kang H,Lin S,et al.Cohesins localize with CTCF at the KSHV latency control region and at cellular c-myc and H19/Igf2insulators[J].EMBO J,2008,27:654.
[42]Homme C,Krug U,Tidow N,et al.Low SMC1Aprotein expression predicts poor survival in acute myeloid leukemia[J].Oncol Rep,2010,24:47.
[43]馮婉婷,喻曉娟,李 進(jìn),等.靶向SMC1A基因慢病毒介導(dǎo)的RNA干擾對(duì)奧沙利鉑治療敏感性的影響[J].臨床腫瘤學(xué)雜志,2012,17(05):235.