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    固態(tài)發(fā)酵生產(chǎn)豆粕多肽飼料的溫度分段調(diào)控研究

    2012-09-22 07:34:54劉建峰龔永華劉華梅馮建波
    飼料工業(yè) 2012年8期
    關(guān)鍵詞:豆粕固態(tài)多肽

    劉建峰 龔永華劉華梅 馮建波

    (1.湖北輕工職業(yè)技術(shù)學(xué)院,湖北武漢430070;2.武漢科諾生物科技股份有限公司,湖北武漢 430074)

    豆粕是目前畜牧養(yǎng)殖業(yè)使用量很大的一種優(yōu)質(zhì)蛋白源。但豆粕中含有大量的蛋白原抗?fàn)I養(yǎng)因子,嚴(yán)重影響動物對豆粕蛋白的消化、吸收,而通過將豆粕蛋白水解成豆粕多肽,可大大提高動物對其吸收及利用率[1-2],從而節(jié)約成本。多肽是經(jīng)過蛋白酶水解處理后得到的由3~10個氨基酸組成的小分子肽,其分子量一般為1 000 Da。因多肽具有溶解度好、黏度低、吸收好和促進(jìn)微生物發(fā)酵等特點,而成為豆粕發(fā)酵飼料研究的熱點[3-4]。目前,生產(chǎn)豆粕多肽飼料的方法主要有酸解法、酶解法、微生物發(fā)酵法。酸解法通過強(qiáng)酸、強(qiáng)堿的作用分解大分子蛋白為小分子肽,由于強(qiáng)酸、強(qiáng)堿具有腐蝕性,會造成大量的污染;酶解法利用酶定向分解的特性將大分子蛋白分解為小分子肽,但酶解法生產(chǎn)的多肽苦味較重,適口性差;微生物發(fā)酵法是利用微生物的生化代謝功能將蛋白降解或轉(zhuǎn)化為多肽[5-6]。飼用多肽主要采用微生物發(fā)酵法進(jìn)行生產(chǎn),從本質(zhì)上講,微生物發(fā)酵法生產(chǎn)飼用多肽都是通過蛋白酶的酶解內(nèi)剪切作用而產(chǎn)生的[7]。發(fā)酵菌種主要是米曲霉、黑曲霉、乳酸菌、芽孢桿菌等能分泌豐富蛋白酶的菌種[8]。目前采用固態(tài)發(fā)酵法生產(chǎn)豆粕多肽工藝的研究較多,但在生產(chǎn)應(yīng)用中大多數(shù)工藝較粗放,豆粕蛋白的水解程度較低(一般水解度只有4%),不能達(dá)到多肽(水解度需要達(dá)到10%以上)的水解效果。

    為了解決這一問題,本文尋求以現(xiàn)有發(fā)酵工藝(豆粕蛋白水解度為8%)的溫度為突破點,以蛋白水解度為檢測指標(biāo),期望通過對發(fā)酵過程中的溫度進(jìn)行分段調(diào)控,生產(chǎn)出優(yōu)質(zhì)的豆粕多肽飼料產(chǎn)品。

    1 材料與方法

    1.1 試劑與儀器

    1.1.1 材料與試劑

    豆粕由東海糧油工業(yè)(張家港)有限公司提供,普通型豆粕粗蛋白含量≥44%;麥麩皮為市購;糖蜜由南寧糖業(yè)股份有限公司提供;其它試劑均為化學(xué)分析純。

    1.1.2 主要儀器

    生化培養(yǎng)箱(上海一恒科學(xué)儀器有限公司)、高壓蒸汽不銹鋼滅菌鍋 (上海申安醫(yī)療器械廠)、SVS-1300型凈化工作臺(上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠)。

    1.1.3 菌種

    米曲霉F-112,由本實驗室保藏。

    1.1.4 培養(yǎng)基

    PDA培養(yǎng)基:馬鈴薯20 g、蔗糖2 g、自來水100 ml,pH值自然(約6.0),滅菌121℃、20 min。

    麥麩培養(yǎng)基:麥麩90%、豆粕8%、葡萄糖2%,滅菌121℃、20 min。

    固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基:豆粕85%、麥麩10%、糖蜜4%、稻草顆粒1%、自來水110%。

    1.2 試驗方法

    1.2.1 菌株最適生長溫度的測定

    取對數(shù)期生長的米曲霉菌種,接種到裝有適量固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基的罐頭瓶(直徑10 cm、高10 cm)中,分別在 20、23、26、29、32、35 ℃培養(yǎng) 48 h,然后計數(shù)米曲霉的孢子數(shù)量。

    1.2.2 菌株蛋白酶酶活最適溫度的測定

    接種適量米曲霉到裝有適量固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基的罐頭瓶中,培養(yǎng)65 h后終止培養(yǎng),制成粗酶液,分別在 25、30、35、40、45、50、55、60 ℃下測定 pH 值 6.0 的蛋白酶酶活。

    1.2.3 菌株最適產(chǎn)蛋白酶溫度的測定

    把試驗1.2.1中一系列溫度下培養(yǎng)的米曲霉培養(yǎng)65 h后終止培養(yǎng),然后在最適溫度下測定pH值6.0的蛋白酶的酶活。

    1.2.4 發(fā)酵工藝溫度分段調(diào)控的響應(yīng)面法優(yōu)化

    在原有固態(tài)發(fā)酵工藝的基礎(chǔ)上,并根據(jù)試驗1.2.1、1.2.2和1.2.3的試驗結(jié)果,應(yīng)用試驗設(shè)計軟件Design-Expert 8.0中混料(mixture)設(shè)計中的Optimal設(shè)計,對固態(tài)發(fā)酵工藝中的溫度進(jìn)行分段控制試驗。

    1.3 檢測方法

    米曲霉孢子數(shù)量的測定采用GB 4789.15—2010食品安全國家標(biāo)準(zhǔn)中食品微生物學(xué)檢驗霉菌和酵母計數(shù)的方法;蛋白酶酶活的測定采用GB/T 23527—2009蛋白酶制劑的方法;水解度的測定采用甲醛滴定法[9]。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 菌株最適生長溫度的確定

    將米曲霉分別在 20、23、26、29、32、35 ℃溫度下培養(yǎng)48 h,然后計數(shù)米曲霉的孢子數(shù)量,其結(jié)果見圖1。

    從圖1可以看出,曲線可以分為兩個階段,即第一階段,溫度從20℃到26℃,在此過程中,米曲霉的孢子數(shù)量逐漸增加,并達(dá)到最大值,即150億個/g;第二階段,溫度從26℃到35℃,在此過程中,米曲霉的孢子數(shù)量基本呈下降趨勢。從圖1曲線來看,米曲霉的最適生長溫度在26℃左右。

    2.2 菌株蛋白酶酶活最適溫度的確定

    將米曲霉的純培養(yǎng)物,制成粗酶液,分別在25、30、35、40、45、50、55、60 ℃下測定 pH 值 6.0 的蛋白酶酶活,其結(jié)果見圖2。

    從圖2中可以看出,米曲霉蛋白酶的最適酶活溫度在45℃左右。

    2.3 米曲霉最適產(chǎn)蛋白酶溫度的確定

    將米曲霉分別在 20、23、26、29、32、35 ℃下培養(yǎng)65 h,然后在45℃下測定pH值6.0的蛋白酶的酶活,其結(jié)果見圖3。

    從圖3可以看出,米曲霉產(chǎn)蛋白酶的最適溫度在23℃左右,這與其生長最適溫度(26℃左右)不同,說明米曲霉在較高的溫度下生長速度較快,而在較低的溫度下則更有利于產(chǎn)蛋白酶。

    2.4 發(fā)酵工藝溫度分段調(diào)控的響應(yīng)面法優(yōu)化

    2.4.1 溫度分段調(diào)控試驗設(shè)計及結(jié)果

    在原有固態(tài)發(fā)酵工藝的基礎(chǔ)上,并根據(jù)2.1、2.2和2.3節(jié)的結(jié)果,應(yīng)用試驗設(shè)計軟件Design-Expert 8.0中混料(mixture)設(shè)計中的Optimal設(shè)計,進(jìn)行三段控溫的固態(tài)發(fā)酵工藝優(yōu)化,三段溫度控制依次為26℃、23℃和45℃,三段時間控制見表1,試驗設(shè)計及結(jié)果見表2。

    表1 三段時間控制目標(biāo)范圍

    表2 試驗設(shè)計及結(jié)果

    2.4.2 試驗結(jié)果方差分析

    對試驗結(jié)果以二次方模型為依據(jù)進(jìn)行方差分析(見表3),從表3可以看出,二次方模型的P值<0.000 1,說明模型是顯著的;在交互作用項中,AB、AC和BC都是顯著的;在二次方模型的失擬項中P值為0.604 4,大于0.05,說明模型的失擬項不顯著,不需要對試驗結(jié)果進(jìn)行更高次方模型的模擬,即二次方模型是合適的。

    表3 試驗結(jié)果方差分析

    2.4.3 二次方模型的建立

    由表3試驗結(jié)果方差分析可知,本試驗結(jié)果分析采用的二次方模型是合適的,可以建立如下的二次方模型:HD=-1.255 67A-2.462 81B-3.374 12C+0.115 44AB+0.137 39AC+0.079 280BC。

    為了驗證所建立模型的擬合程度,進(jìn)行了模型的可信度分析(見表4)。

    從表4模型的可信度分析中可以看出,校正復(fù)相關(guān)系數(shù)平方為0.854 0,說明以試驗結(jié)果為依據(jù)建立的模型,計算出的數(shù)據(jù)可以覆蓋85.4%的區(qū)域,即模型的擬合程度很好。

    表4 模型的可信度分析

    為了更形象地認(rèn)識A、B和C因素(不同溫度時間分段)對R1響應(yīng)值(水解度)的影響,可以建立等高線圖(見圖4)和響應(yīng)面圖(見圖5)。從圖4和圖5中可以看出,A、B和C 3個因素的重要性為C>B>A,如果A、B和C取值合適,則可以得到R1的最大值,且最大值在試驗值設(shè)計覆蓋的范圍之內(nèi)。

    3 預(yù)測和驗證

    為了得到R1響應(yīng)值的最大值,根據(jù)所建立的模型進(jìn)行了R1最大值的預(yù)測,預(yù)測結(jié)果有22組數(shù)據(jù),根據(jù)工藝的可操作性和操作的難易程度,我們選取了5組(見表5),并進(jìn)行了試證試驗。

    表5 R1響應(yīng)值最大值的預(yù)測

    考慮到試驗的實際情況和操作的可能性,對上述的5組數(shù)據(jù)進(jìn)行了修正。在驗證試驗中,每一個處理做3個平行,試驗結(jié)果見表6。

    表6 R1響應(yīng)值最大值預(yù)測的驗證

    4 結(jié)論

    在豆粕發(fā)酵過程中,米曲霉經(jīng)歷了生長、產(chǎn)酶和酶解的三個階段[10],本文在原有發(fā)酵工藝的基礎(chǔ)上,對固態(tài)發(fā)酵生產(chǎn)豆粕多肽飼料的溫度分段調(diào)控進(jìn)行了研究。通過對米曲霉生長溫度、產(chǎn)酶溫度和酶活溫度的試驗,得到了最適生長溫度(26℃)、最適產(chǎn)酶溫度(23℃)和最適酶活溫度(45℃)等參數(shù)。然后進(jìn)行了不同溫度的時間段的確定試驗,即試驗設(shè)計軟件Design-Expert 8.0中混料(mixture)設(shè)計中的Optimal優(yōu)化設(shè)計,得到了最佳的時間段:0~33.5 h、26℃;33.5~50 h、23 ℃;50~65 h、45 ℃(見表 5),并進(jìn)行了驗證試驗,較優(yōu)化前豆粕蛋白的水解度提高了140%,得到了較好的效果,基本達(dá)到了試驗的目的。

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