馬 健
(國家林業(yè)局森林生態(tài)學(xué)與森林保護(hù)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(中國林業(yè)科學(xué)研究院森林生態(tài)環(huán)境與保護(hù)研究所),北京,100091)
劉振宇 呂 全 梁 軍 嚴(yán)東輝 張星耀
(山東農(nóng)業(yè)大學(xué)) (國家林業(yè)局森林生態(tài)學(xué)與森林保護(hù)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(中國林業(yè)科學(xué)研究院森林生態(tài)環(huán)境與保護(hù)研究所)
楊樹潰瘍病(Botryosphaeria dothidea(Moug.Ex,F(xiàn)r.)Ces.& de Not.) 是 我 國 楊 樹 (Populus spp.)的重要枝干病害[1-3]。該病害近年來地理分布和寄主范圍不斷擴(kuò)大,嚴(yán)重阻礙我國楊樹的發(fā)展。為了進(jìn)一步控制楊樹潰瘍病,對(duì)于楊樹抗病信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)系統(tǒng)的研究是十分必要的。過氧化氫(Hydrogen peroxide,H2O2)作為植物抗病信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)系統(tǒng)中新組分的發(fā)現(xiàn),使H2O2與植物抗病性的研究成為新的熱點(diǎn)。研究表明,H2O2可以作為第二信使誘導(dǎo)防御反基因的表達(dá),從而使植物表現(xiàn)出抗性,是植物抗病反應(yīng)中激活相關(guān)防御基因的主要信號(hào)分子[4-5]。隨著植物體內(nèi)H2O2的積累,其清除系統(tǒng)中的抗壞血酸過氧化物酶(APX)和過氧化物酶(POD)等酶的活性也隨植物抗病性的不同而具有顯著差異。同時(shí),理永霞等[3]對(duì)楊樹接種B.dothidea后蛋白質(zhì)表達(dá)進(jìn)行差異分析,發(fā)現(xiàn)楊樹接種潰瘍病菌后APX與POD差異表達(dá),說明這兩種蛋白在植物防御應(yīng)答中具有重要作用。為了進(jìn)一步分析 H2O2、APX和POD在楊樹抗?jié)儾∵^程中的表達(dá)情況,筆者以抗病毛白楊(Populus tomentosa)和感病北京楊(P.×beijingensis)為研究對(duì)象,探討不同抗性楊樹接種潰瘍病菌后,H2O2及抗病相關(guān)酶活性變化與基因表達(dá)情況,以期為有關(guān)信號(hào)分子和抗性相關(guān)基因在預(yù)防楊樹潰瘍病上的開發(fā)利用提供參考依據(jù)。
以1年生毛白楊(Populus tomentosa Carr.,自然狀態(tài)下感病指數(shù)為0~6.0)和北京楊(P.×beijingensis W.Y.Hsu,自然狀態(tài)下感病指數(shù) 45.1 以上)[6-7]扦插苗為試驗(yàn)材料,其扦插枝條采自中國林業(yè)科學(xué)研究院森林生態(tài)環(huán)境與保護(hù)研究所病理組實(shí)驗(yàn)苗圃毛白楊和北京楊植株,扦插于中國林業(yè)科學(xué)研究院溫室,在相同的環(huán)境條件下,采用常規(guī)方法對(duì)苗木進(jìn)行統(tǒng)一管理,盆栽用土為V(園土)∶V(草炭土)∶V(蛭石)=1∶1∶1,溫室中晝夜溫度分別為25~27℃和18~20℃,平均日照時(shí)間12 h。
供試菌株為從北京楊潰瘍病斑上分離并保存的楊樹潰瘍病(Botryosphaeria dothidea,經(jīng)單胞培養(yǎng)鑒定,致病力中等)病原菌株。菌株在27℃條件下于PDA平板上暗培7 d,無菌條件下用滅菌打孔器在菌落邊緣取直徑為5 mm的菌餅作為接種體備用。
針刺菌餅接種:用75%乙醇擦拭消毒,用滅菌解剖針在楊樹莖部輕刺梅花型針眼,相距約3 mm,然后將有菌絲一面朝向針眼貼緊,外被濕滅菌藥棉并用保鮮膜包扎固定接種點(diǎn)。每樹種設(shè)2個(gè)處理:針刺接種滅菌PDA培養(yǎng)基(CK)、針刺接種潰瘍病菌。實(shí)施處理后0(無針刺)、6、12、24、48、72 和96 h分別取樣,每處理每時(shí)間點(diǎn)重復(fù)3次。取后迅速投入液氮中,并保存于-80℃冰箱中備用。
參考Patterson等[8]的方法,稍有改動(dòng)。取1 g樣品加5 mL冷丙酮磨成勻漿,12 000 r/min離心,上清液定容,反應(yīng)液中含0.1 mL體積分?jǐn)?shù)為20%TiCl4的濃鹽酸、0.2 mL濃氨水和1 mL上清液生成的過氧化物—Ti復(fù)合物,用丙酮洗3次,丙酮揮發(fā)后溶于3 mL 1 mol/L硫酸中,410 nm下測(cè)光吸收值,按同樣程序制H2O2標(biāo)準(zhǔn)曲線。
H2O2細(xì)胞化學(xué)定位根據(jù)Bestwick等[9]的方法。取樣部位為離病斑0.5 cm處樹皮進(jìn)行取樣,取樣時(shí)用鋒利的刀片取離苗木接種點(diǎn)周圍小于1~2 cm2的樹皮。把樣品放在新制備的5 mmol/L CeCl3中真空滲透1 h。前固定:把莖塊放在固定液(體積分?jǐn)?shù)2%戊二醛+體積分?jǐn)?shù)4%多聚甲醛)中,室溫固定1 h,并在4℃條件下過夜。固定后,莖塊用二甲砷酸鹽緩沖液(CAB)漂洗2次,每次10 min。后固定:把莖塊放存體積分?jǐn)?shù)1%的四氧化鋨固定液中,固定45 min。固定后再用CAB緩沖液漂洗2次,每次10 min。脫水:吸去緩沖液,注入乙醇,逐級(jí)梯度脫水。浸透:把樣品放在氧化丙烯中浸透2次,每次20 min。包埋:逐步用Eponaraldite包埋樣品。然后無染色看片。透射電鏡加速電壓80 V,切片厚度50~100 nm。
酶活性測(cè)定參考現(xiàn)代植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)指南[10]中的實(shí)驗(yàn)方法,稍有改動(dòng)。
1.4.1 抗壞血酸過氧化物酶(APX)活性測(cè)定
接種后于各時(shí)段取樣品,參照Nakano等[11]的方法測(cè)定APX酶的活性,略作改進(jìn)。取1 g樣品加入50 mmol/L磷酸緩沖液進(jìn)行研磨,冷凍離心(12 000 r/rain,20 min)后,取上清液備用。3 mL的反應(yīng)體系中含50 mmol/L磷酸緩沖液(pH=7.0,0.1 mmoL/L EDTA-Na2),0.3 mmol/L AsA,0.06 mmoL/L H2O2和0.1 mL酶液。加入 H2O2后,立即在20℃下用分光光度計(jì)測(cè)定10~30 s內(nèi)290 nm波長(zhǎng)下吸光值。
1.4.2 過氧化物酶(POD)活性測(cè)定
參照Hammerschmid[12]的方法對(duì)各處理樣品的POD酶活性進(jìn)行測(cè)定,每處理測(cè)定3次,以每克鮮質(zhì)量每分鐘增加0.1個(gè) OD值為酶活單位(U·min-1·g-1)。
將所獲各處理數(shù)據(jù)用SPSS 13.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。
1.5.1 總RNA的提取和cDNA第一鏈的合成
RNA提取試劑盒(Bioteke公司)提取樣品的總RNA,TaKaRa的反轉(zhuǎn)錄試劑盒反轉(zhuǎn)錄成cDNA,方法按照說明書進(jìn)行。將所獲得的RNA和cDNA分別儲(chǔ)存于-80℃和-20℃的冰箱中備用。
1.5.2 RT-PCR 引物設(shè)計(jì)與篩選
利用軟件Primer 5.0設(shè)計(jì)熒光定量PCR引物,見表1。
表1 毛白楊和北京楊接種潰瘍病菌后APX和POD RTPCR分析所用引物
1.5.3 目的基因的RT-PCR擴(kuò)增
以反轉(zhuǎn)錄獲得的cDNA稀釋20倍作模板,按下列組分配制PCR反應(yīng)液(反應(yīng)液配制在冰上進(jìn)行):SYER Premix Ex TaqTM(2×)12.5 μL,PCR Forward Primer(10 μM)0.5 μL,PCR Reverse Primer(10 μM)0.5 μL,ROX Reference Dye(50×)0.5 μL,模板 2.0 μL,H2O9.0 μL。
本次實(shí)驗(yàn)使用TAKARA公司SYBR?Premix Ex Taq TM(Perfect Real Time)試劑。Real-Time PCR反應(yīng)程序?yàn)椋?5℃預(yù)變性30 s;接下來是40個(gè)循環(huán),95℃變性5 s,60℃退火34 s;每個(gè)樣品3次重復(fù),PCR反應(yīng)結(jié)束后進(jìn)行熔解曲線分析。儀器:ABI 7500 Real-time PCR System。
2種不同抗性楊樹接種潰瘍病菌后,其體內(nèi)H2O2摩爾質(zhì)量濃度差異顯著,同時(shí)發(fā)現(xiàn)兩種楊樹在健康狀態(tài)下(CK)H2O2摩爾質(zhì)量濃度變化不明顯,見表2。
表2 不同接種時(shí)間后潰瘍病菌對(duì)不同抗性楊樹中H2O2摩爾質(zhì)量濃度的影響
接種B.dothidea后,抗病和感病楊樹H2O2摩爾質(zhì)量濃度均先上升后下降,但變化幅度存在明顯差異。毛白楊H2O2摩爾質(zhì)量濃度顯著高于北京楊,在接種后24~72 h時(shí)的H2O2摩爾質(zhì)量濃度顯著高于北京楊。72h時(shí),毛白楊達(dá)到最高峰(P<0.000 1),而北京楊48 h時(shí)達(dá)到高峰,H2O2摩爾質(zhì)量濃度分別為 737.52 mol/g和 306.99 mol/g,比相應(yīng)對(duì)照(CK)分別增加10.03倍和3.08倍,見表2。
為進(jìn)一步研究H2O2的系統(tǒng)性產(chǎn)生,用CeCl3染色的細(xì)胞化學(xué)方法對(duì)楊樹韌皮部H2O2積累情況進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果見圖1。當(dāng)孵育液中不加底物CeCl3時(shí),未能觀察到黑色顆粒狀沉淀(圖1A、D),因此,本試驗(yàn)中CeCl3沉淀顆粒多少以及著色深淺為H2O2摩爾質(zhì)量濃度的真實(shí)反映。從圖1B、E可以看出,接種潰瘍病菌72 h時(shí),在電鏡下明顯觀察到,抗病毛白楊細(xì)胞壁兩側(cè)有H2O2的積累,增加的沉淀顆粒主要位于細(xì)胞壁上(圖1C),表明毛白楊接種潰瘍病菌后,顯著誘導(dǎo)了楊樹韌皮部細(xì)胞中H2O2的積累;與抗病毛白楊相比,感病北京楊中H2O2-CeCl3沉淀顆粒很少,與應(yīng)用植物生理學(xué)方法測(cè)定H2O2摩爾質(zhì)量濃度的結(jié)果保持一致。初步推測(cè)楊樹中H2O2可能被病原菌誘導(dǎo)系統(tǒng)性產(chǎn)生,且起源于細(xì)胞壁。
2.3.1 APX 的活性變化
毛白楊在接種B.dothidea后,其體內(nèi)APX活性呈升高變化趨勢(shì)(表2),相對(duì)于對(duì)照(CK)升高幅度為33.91%~350.37%,72 h時(shí)達(dá)到最大值(708.39 U·min-1·g-1),相對(duì)于對(duì)照(CK)增加 350.37%;隨后至接種96 h,毛白楊體內(nèi)的APX活性下降,下降幅度為24.34%。北京楊接種后,APX活性與對(duì)照(CK)相比差異不明顯;而未接種潰瘍病菌的抗、感兩個(gè)品種APX活性在所測(cè)定時(shí)間內(nèi)無顯著變化,始終維持在一個(gè)較低而平穩(wěn)的水平(見表2)。
可知,楊樹接種B.dothidea后,其莖部APX活性升高的幅度、峰值的高低均與楊樹的抗性有關(guān)。
2.3.2 APX 基因表達(dá)
B.dothidea對(duì)毛白楊和北京楊的APX基因均有誘導(dǎo)作用,接種后不同抗性品種在同一時(shí)間點(diǎn)的誘導(dǎo)表達(dá)有顯著的差異(表3)。從表3可以看出,接種后抗病毛白楊各個(gè)時(shí)期APX基因的表達(dá)水平均明顯高于感病北京楊。毛白楊-潰瘍病菌互作中APX基因受潰瘍病菌誘導(dǎo)后表達(dá)上調(diào),48 h表達(dá)量上調(diào)且達(dá)到最高(t=21.557,P=0.002)。而在北京楊—潰瘍病菌互作體系中APX基因也是上調(diào)表達(dá),但是上調(diào)幅度顯著低于毛白楊。
圖1 用CeCl3染色的細(xì)胞化學(xué)方法對(duì)楊樹韌皮部H2 O2的檢測(cè)
表3 不同接種時(shí)間后潰瘍病菌對(duì)不同抗性楊樹中抗壞血酸過氧化物酶(APX)活性的影響
表4 接種潰瘍病菌后不同抗性品種中APX基因表達(dá)差異
2.4.1 POD 活性變化
從表4可以看出,不同抗性楊樹接種潰瘍病菌后,POD活性均呈上升趨勢(shì)。毛白楊接種B.dothidea后,其體內(nèi)POD活性與對(duì)照(CK)相比增加17.26%~166.15%;而北京楊接種后POD活性雖也呈上升趨勢(shì),但是增加不顯著,POD活性相對(duì)于對(duì)照(CK)僅增加了5.13%~64.04%,且接種48 h后POD活性開始下降,直至趨于對(duì)照。
未接種B.dothidea的抗、感兩個(gè)品種POD活性在所測(cè)定時(shí)間內(nèi)無顯著變化,始終維持在一個(gè)較低而平穩(wěn)的水平。這說明楊樹感染潰瘍病菌后其莖部POD酶活的變化一定程度上反映了楊樹的抗病程度,POD的活性與楊樹抗病性呈正相關(guān)。
表5 不同接種時(shí)間后潰瘍病菌對(duì)不同抗性楊樹中過氧化物酶(POD)活性的影響
2.4.2 POD 基因表達(dá)
接種B.dothidea后,抗病毛白楊POD表達(dá)量相對(duì)于感病北京楊變化顯著。POD在毛白楊接種后表達(dá)量處于上調(diào)趨勢(shì),12 h時(shí)表達(dá)量上升(t=3.834,P=0.004),為對(duì)照的 6.41 倍;隨后 24 h 表達(dá)量下降,但48 h時(shí)表達(dá)量迅速上升并達(dá)到較高值(t=11.023,P=0.0001),為對(duì)照的 7.47 倍,而后表達(dá)受到抑制,表達(dá)量逐漸降低。而在北京楊中POD的表達(dá)量變化處于下調(diào)趨勢(shì),見表5。
表6 接種潰瘍病菌后不同抗性品種中POD基因表達(dá)差異
H2O2是植物與病原菌互作中最重要的活性氧物質(zhì)[4],在植物對(duì)病原菌的防御反應(yīng)中,H2O2作為一種信號(hào)分子可以在病原菌侵染后迅速產(chǎn)生,植物體內(nèi)H2O2的積累及之后的過敏性反應(yīng)被認(rèn)為是植物抵御病原菌入侵的標(biāo)志之一[13-14]。
本實(shí)驗(yàn)研究表明抗病毛白楊在接種B.dothidea后H2O2的摩爾質(zhì)量濃度顯著高于感病北京楊,毛白楊接種后72 h時(shí),H2O2摩爾質(zhì)量濃度達(dá)到最大值,且兩種楊樹對(duì)照(CK)中H2O2摩爾質(zhì)量濃度沒有顯著變化。這說明楊樹在受到病原菌入侵時(shí),H2O2可能參與楊樹的抗病防御反應(yīng),推測(cè)H2O2摩爾質(zhì)量濃度的調(diào)控對(duì)楊樹抗?jié)儾【哂兄匾淖饔?,楊樹?duì)潰瘍病的抗性與植株體內(nèi)H2O2的快速積累有關(guān)。同時(shí),本實(shí)驗(yàn)還利用CeCl3沉淀法進(jìn)一步觀察了亞細(xì)胞水平上H2O2分布和積累的動(dòng)態(tài)變化,結(jié)果顯示,抗病毛白楊在接種后72 h時(shí),細(xì)胞壁上有大量CeCl3沉淀,初步推測(cè)楊樹中H2O2可能被病原菌誘導(dǎo)系統(tǒng)性產(chǎn)生,且起源于細(xì)胞壁。
大量研究表明,在不同抗性的植物中,抗氧化酶表達(dá)量的增加與植物抗性有關(guān)。POD和APX是植物體內(nèi)重要的氧化酶[15],是植物防御體系的關(guān)鍵酶,在活性氧代謝等多種代謝途徑中起到關(guān)鍵作用[16-18]。這些酶的活性可間接反映植物體內(nèi)活性氧的代謝變化,與植物抗病性密切相關(guān)。本研究表明,接種B.dothidea后抗病毛白楊H2O2摩爾質(zhì)量濃度變化與APX、POD活性變化具有顯著相關(guān)性;而感病北京楊中H2O2的變化不明顯。這表明毛白楊在接種后體內(nèi)H2O2的快速積累可能誘導(dǎo)了APX、POD活性的升高。通過RT-PCR分析表明,潰瘍病菌誘導(dǎo)了兩種互作體系中楊樹APX和POD基因的表達(dá),研究結(jié)果說明APX和POD基因表達(dá)差異是由于B.dothidea侵染后引起的,抗病品種相對(duì)于感病品種變化顯著,APX和POD參與了楊樹的抗病過程。
另有研究表明,APX是一種重要的雙氧水脫毒化的酶[17],Agrawal等[19]報(bào)道了水稻 APX 基因的表達(dá)受稻瘟病菌(Magnaporthe grisea)誘導(dǎo),并且推測(cè)APX可能在植物的抗病過程中起重要作用。Chen等[20]證明煙草的SA結(jié)合蛋白(SA binding protein,SABP)與CAT高度同源,SA與SABP結(jié)合后阻礙其CAT活性,提高H2O2水平;除了CAT以外,沈文飚等[21]研究證明APX對(duì)H2O2的親和力要大于CAT,通過抑制APX活性提高植物體內(nèi)H2O2摩爾質(zhì)量濃度,H2O2或其他活性氧物質(zhì)可激活抗病途徑中抗病基因的表達(dá)。這些研究結(jié)果可能是本實(shí)驗(yàn)中抗病毛白楊在接種前期,APX活性下降的原因之一,可能存在SA與APX結(jié)合的現(xiàn)象。同時(shí),RT-PCR分析證明,接種后抗病毛白楊A(yù)PX基因表達(dá)在6~24 h上調(diào)不顯著,推測(cè)此時(shí)SA與SABP結(jié)合,抑制APX活性,從而導(dǎo)致了72 h時(shí)H2O2摩爾質(zhì)量濃度的激增。這說明APX與楊樹抗病過程是密切相關(guān)的,可能在楊樹防御應(yīng)答中發(fā)揮重要的作用,但APX與CAT在楊樹與潰瘍病互作過程中誰起到主導(dǎo)作用,還需要進(jìn)一步研究。
由此可見,不同抗性楊樹在對(duì)潰瘍病菌的防御反應(yīng)中,其體內(nèi)H2O2摩爾質(zhì)量濃度、APX與POD酶活性及基因表達(dá)的變化規(guī)律與其樹種的抗性密切相關(guān),H2O2的積累程度在楊樹抗病反應(yīng)中具有重要的作用,但其作用的具體途徑及H2O2是否作為信號(hào)分子在楊樹—潰瘍病互作體系中作用尚需進(jìn)一步研究。
[1]張星耀,駱有慶.中國森林重大生物災(zāi)害[M].北京:中國林業(yè)出版社,2003.
[2]蘇曉華,張冰玉,黃秦軍,等.我國林木基因工程研究進(jìn)展和關(guān)鍵領(lǐng)域[J].林業(yè)科學(xué),2003,39(5):111-118.
[3]理永霞,呂全,梁軍,等.楊樹接種Botryosphaeria dothidea潰瘍病菌后蛋白質(zhì)表達(dá)差異分析[J].南京林業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2011,35(4):1-6.
[4]Averyanov A.Oxidative burst and plant disease resistance[J].Frontiers in Bioscience,2009,1:142-152.
[5]Zhang W P,Jiang B,Lou L N,et al.Impact of salicylic acid on the antioxidant enzyme system and hydrogen peroxide production in Cucumis sativus under chilling stress,Zeitschrift fur Naturforschung c-a[J].Journal of Biosciences,2011,66:413-422.
[6]楊俊秀,李武漢,符毓秦.等.抗?jié)儾顦浞N類的調(diào)查研究[J].西北林學(xué)院學(xué)報(bào),1990,5(4):1-10.
[7]王穎,胡景江,朱瑋,等.楊樹潰瘍病寄主誘導(dǎo)抗病性的研究[J].西北林學(xué)院學(xué)報(bào),1996,11(1):1-4.
[8]Patterson B D,Macrea E A,F(xiàn)erguson I B.Estimation of hydrogen peroxide in plant extracts using titanium(IV)[J].Analytical Biochemistry,1984,139:487-492.
[9]Bestwick CS,Brown I R,Bennett M H,et al.Localization of hydrogen peroxide accumulation during the hypersensitive reaction of lettuce cells to Pseudomonas syringae pv phaseolicola[J].Plant Cell,1997,9:209-221.
[10]中科院上海植物生理所.現(xiàn)代植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)指南[M].北京:科學(xué)出版社,1999.
[11]Nakano Y,Asada K.Hydrogen peroxide is scavenged by acerbate-specific peroxidase in spinachchlop1asts[J].Plant and Cell Physiology,1981,22:867-880.
[12]Hammersehmidt R,Nuckles E M,Kuc J.Association of enhanced peroxides activity with induced systemic resistance for cucumber to Colletectrichum lagenarium[J].Physiological and Molecular Plant Pathology,1982,20:73-82.
[13]Harfouche A L,Rugini E,Mencarelli F,et al.Salicylic acid induces H2O2production and endochitinase gene expression but not ethylene biosynthesis in Castanea sativa in vitro model system[J].Journal of Plant Physiology,2008,165:734-744.
[14]Pei Z M,Murata Y,Benning G,et al.Calcium channels activated by hydrogen peroxide mediate abscises acid signaling guard cells[J].Nature,2000,406:731-734.
[15]Zhao Y,Peralta-Videa J R,Lopez-Moreno,et al.Kinetin increases chromium absorption,modulates its distribution,and changes the activity of catalase and ascorbate peroxidase in Mexican Palo Verde[J].Environmental Science and technology,2011,45:1082-1087.
[16]Bonifacio A,Martins M O,Ribeiro C W,et al.Role of peroxidases in the compensation of cytosolic ascorbate peroxidase knockdown in rice plants under abiotic stress[J].Plant Cell and Environment,2011,34:1705-1722.
[17]Pal S,Dolai S,Yadav R K,et al.Ascorbate peroxidase from Leishmania major controls the virulence of infective stage of promastigotes by regulating oxidative stress[J].Plos One,2010,5(6):e11271.
[18]Spanou C I,Veskoukis A S,Stagos D,et al.Effects of Greek legume plant extracts on xanthine oxidase,catalase and superoxide dismutase activities[J].Journal of Physiology and Biochemistry,2012,68:37-45.
[19]Agrawal G K,Jwa N S,Iwahashi H,et al.Importance of acerbate peroxides OsAPX1 and OsAPX2 in the rice pathogen response pathways and growth and reproduction revealed by their transcriptional profiling[J].Gene,2003,322:93-103.
[20]Chen Z,Silva H,Klessig D F.Active oxygen species in the induction of plant systemic acquired resistance by salicylic acid[J].Science,1993,262:1883-1886.
[21]沈文飚,徐朗萊,葉茂炳,等.水楊酸對(duì)小麥葉片抗壞血酸過氧化物酶活性的抑制[J].南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),1998,21(3):126-128.