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    懸鈴木SSR反應(yīng)體系建立及引物篩選

    2012-07-16 07:37:48劉榮寧趙曉改趙振利范國(guó)強(qiáng)
    關(guān)鍵詞:懸鈴木電泳產(chǎn)物

    劉榮寧,趙曉改,趙振利,范國(guó)強(qiáng)*

    (1.河南農(nóng)業(yè)大學(xué),河南 鄭州 450002;2.河南農(nóng)業(yè)職業(yè)學(xué)院,河南 中牟 451450)

    懸鈴木具有耐修剪整形、生長(zhǎng)迅速、隔離噪音、抗煙和抗塵的能力,特別對(duì)SO2、Cl2等有毒氣體有較強(qiáng)的抗性,對(duì)城市環(huán)境有極強(qiáng)的適應(yīng)能力,且有“行道樹(shù)之王”的美稱,故世界各國(guó)廣為種植[1]。SSR標(biāo)記技術(shù)目前已廣泛用于基因定位、遺傳作圖、多態(tài)性分析、構(gòu)建DNA指紋圖譜等[1-7]各個(gè)領(lǐng)域。SSR標(biāo)記雖具有試驗(yàn)程序簡(jiǎn)單、物種及染色體組特異性等優(yōu)點(diǎn),但因其擴(kuò)增過(guò)程中有諸多因素的影響,也會(huì)產(chǎn)生非特異擴(kuò)增等問(wèn)題,從而給研究工作帶來(lái)不便。目前,SSR 技術(shù)已在水稻[9]、玉米[10]、柑橘[11]、櫻桃李[12]、泡桐[13]等標(biāo)記研究中得以應(yīng)用,但尚未見(jiàn)到有關(guān)懸鈴木SSR體系建立的相關(guān)報(bào)道。本實(shí)驗(yàn)旨在通過(guò)篩選反應(yīng)體系中各因素的最佳組合,并進(jìn)行引物篩選檢驗(yàn),建立一套適合懸鈴木基因組SSR-PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系,并為基因定位及克隆研究奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    河南農(nóng)業(yè)大學(xué)泡桐研究所林木生物技術(shù)實(shí)驗(yàn)室在溫度(25±2)℃,光強(qiáng)130 μmol·m-2·s-1,光照時(shí)間16 h·d-1的條件下,培養(yǎng)35 d的三球懸鈴木(Platanus orientalis L.)健康組培苗。

    1.2 試驗(yàn)方法

    1.2.1 懸鈴木基因組DNA的提取 取35 d組培苗的葉片,參照TIANGEN試劑盒說(shuō)明書(shū)提取懸鈴木基因組DNA,利用紫外分光光度計(jì)及瓊脂糖凝膠電泳法檢測(cè)所提取的DNA濃度和質(zhì)量,置-20 ℃冰箱保存,用于PCR擴(kuò)增。

    1.2.2 SSR-PCR反應(yīng)程序設(shè)定 SSR擴(kuò)增程序:SSR-PCR擴(kuò)增在Biometra擴(kuò)增儀上進(jìn)行。反應(yīng)程序參照曹喜兵等[13]方法。

    1.2.3 SSR-PCR基本反應(yīng)體系 參照曹喜兵等[13]SSR反應(yīng)體系建立。對(duì)影響PCR擴(kuò)增結(jié)果的退火溫度、dNTP和引物(5'GCC AGC GAA CTC AAA TCT與3'AAC GAG AAC GAC GAG CG)濃度,Taq酶用量,模板DNA濃度等參數(shù)進(jìn)行梯度試驗(yàn)(表1)。當(dāng)利用一種參數(shù)試驗(yàn)時(shí),其它參數(shù)保持不變,以便篩選出5種參數(shù)的最佳組合,試驗(yàn)設(shè)3次重復(fù)。

    表1 PCR 反應(yīng)體系中處理因素和水平Table 1 Factor and level of PCR reaction system

    1.2.4 PCR產(chǎn)物的電泳及分析 PCR產(chǎn)物采用6%非變性聚丙烯酰胺凝膠電泳。20 μL PCR產(chǎn)物與5.5 μL 加樣緩沖液(49 mL 甲酰胺、1 mL 0.5 mol·L EDTA、0.125 g溴酚藍(lán)、0.125 g 二甲苯菁)混合,在95℃變性5 min后,放入4 ℃冰箱冷卻待用。電泳時(shí),每泳道上樣量為5 μL擴(kuò)增產(chǎn)物,電泳條件為60 W恒功率,電泳時(shí)間為30 min。電泳結(jié)束后,凝膠固定、銀染、顯影,并用UMAX PowerLook2100LX型掃描儀掃描凝膠。

    1.2.5 引物篩選 參考常莉[14]從其它木本植物篩選出的417對(duì)微衛(wèi)星引物,由鄭州寶賽生物科技有限公司合成。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 懸鈴木SSR分子標(biāo)記反應(yīng)體系

    2.1.1 不同退火溫度對(duì)懸鈴木SSR-PCR反應(yīng)程序的影響 退火溫度對(duì)SSR-PCR擴(kuò)增結(jié)果(圖1)可看出,不同退火溫度對(duì)懸鈴木SSR-PCR擴(kuò)增產(chǎn)物量影響不同。當(dāng)退火溫度為45、47、50℃時(shí),SSR-PCR擴(kuò)增出的條帶亮度逐漸明顯增強(qiáng);當(dāng)退火溫度為53、55、57℃時(shí),擴(kuò)增產(chǎn)物電泳條帶逐漸減弱。當(dāng)SSRPCR擴(kuò)增引物一定時(shí),懸鈴木擴(kuò)增產(chǎn)物量隨退火溫度逐漸升高而增大,但當(dāng)退火達(dá)到一定溫度時(shí),SSRPCR擴(kuò)增量又隨其溫度的增高而下降,因此該研究認(rèn)為針對(duì)引物對(duì)ORNL-97適宜的退火溫度選擇為50℃。同時(shí)針對(duì)不同的引物在進(jìn)行SSR-PCR反應(yīng)程序時(shí)可根據(jù)引物所標(biāo)出的退火溫度進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整,才能達(dá)到理想的效果。

    2.1.2 不同dNTP濃度對(duì)懸鈴木SSR-PCR擴(kuò)增的影響 不同dNTP濃度對(duì)懸鈴木SSR擴(kuò)增產(chǎn)物量產(chǎn)生了明顯的影響。當(dāng) dNTP 濃度分別為0.025、0.05、0.1 和 0.2 mmol·L-1(泳道 1 -4)時(shí),擴(kuò)增產(chǎn)物電泳后均有譜帶出現(xiàn),但不同dNTP濃度擴(kuò)增譜帶的亮度強(qiáng)度存在著差異。其中,0.2 mmol·L-1擴(kuò)增出的譜帶亮度最強(qiáng),0.1 mmol·L-1次之,0.05 mmol·L-1較弱,0.025 mmol·L-1最弱。當(dāng) dNTP 濃度為0.3 和0.4 mmol·L-1時(shí),擴(kuò)增產(chǎn)物電泳后逐漸減弱(泳道5和6)。意味著dNTP濃度過(guò)低降低SSR-PCR產(chǎn)物的產(chǎn)量,濃度過(guò)高又會(huì)抑制產(chǎn)物產(chǎn)生,本試驗(yàn)中,dNTP濃度為0.2 mmol·L-1時(shí),SSR-PCR擴(kuò)增的譜帶最清晰,故選擇0.2 mmol·L-1作為懸鈴木SSR-PCR擴(kuò)增的最適濃度。

    2.1.3 引物濃度對(duì)SSR-PCR擴(kuò)增的影響 由引物濃度對(duì)SSR-PCR擴(kuò)增結(jié)果(圖3)可以看出,雖然不同引物濃度對(duì)SSR擴(kuò)增產(chǎn)物量的影響不同,但是試驗(yàn)設(shè)置的6個(gè)濃度均可擴(kuò)增出電泳譜帶。當(dāng)引物濃度為 0.1、0.2 和0.4 μmol·L-1時(shí),擴(kuò)增出的譜帶明顯增強(qiáng)(泳道 2、3 和 4),當(dāng)濃度分別 0.6 μmol·L-1時(shí),擴(kuò)增結(jié)果最清楚,故選擇0.6 μmol·L-1作為懸鈴木SSR-PCR擴(kuò)增的最適濃度。

    2.1.4 懸鈴木DNA濃度對(duì)SSR擴(kuò)增的影響 不同濃度懸鈴木DNA的SSR-PCR擴(kuò)增結(jié)果(圖4)表明,當(dāng)懸鈴木DNA為0.5ng·μL-1時(shí),譜帶亮度過(guò)低(泳道1),在一定范圍內(nèi)模板DNA濃度對(duì)泡桐SSR擴(kuò)增結(jié)果影響不顯著。雖然懸鈴木DNA濃度由1.0升高到16.0 ng·μL-1,但其SSR擴(kuò)增出的電泳譜帶亮度差異不大。因此,從擴(kuò)增產(chǎn)物的穩(wěn)定性和節(jié)省模板用量等方面考慮,我們選擇4.0 ng·μL-1懸鈴木DNA作為其SSR-PCR擴(kuò)增體系的適宜模板濃度。

    2.1.5 Taq酶量對(duì)SSR擴(kuò)增的影響 由不同Taq酶量對(duì)SSR-PCR擴(kuò)增結(jié)果(圖5)的影響可以看出,不同Taq酶量對(duì)泡桐SSR擴(kuò)增產(chǎn)物量產(chǎn)生了較為顯著的影響。在SSR-PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系中,在一定范圍內(nèi)隨著Taq酶量的逐漸增加,其擴(kuò)增產(chǎn)物量也逐漸增大,之后,隨著Taq酶量的增加,譜帶亮度和清晰度逐漸降低。在SSR-PCR擴(kuò)增體系中,我們選用0.05U·μL-1為懸鈴木SSR-PCR擴(kuò)增體系的最適Taq酶量。

    2.2 引物篩選

    根據(jù)上述優(yōu)化體系,從其它木本植物的417對(duì)SSR引物中篩選出適合懸鈴木SSR擴(kuò)增的54對(duì)引物(表2)。結(jié)果表明,選出的54對(duì)引物,所擴(kuò)增的譜帶清晰、分辨率高、重現(xiàn)性好、多態(tài)性強(qiáng),是較適宜的擴(kuò)增體系(圖6)。

    表2 懸鈴木SSR擴(kuò)增引物Table 2 Primers used in the SSR-PCR of the plant

    引物編號(hào)Primer Codes核苷酸序列(5’---3’)Nucleotide sequences(5’- - -3’)備注References引物編號(hào)Primer Codes核苷酸序列(5’---3’)Nucleotide sequences(5’- - -3’)備注References 19 CGG AGG GTG TGC TGC CGA AGGCC CAG CCC ATA TCT GCT [18] 46 TTC ATC CTA GCT GCT TGC TTTCTC AGC GTC TAC CCC ATC AA [23]20 TAT TTC TAC AAC ATA CCA AAA CGCAT TAC TCA AGC ACA TGC ACG C [23] 47 CTT GTT GCT GCT TCT GCAAC AAA ATA ATA TAA ATG CTC TGC [23]21 CAT CCA TGA TAT CAA ACC AAA TTA GTGT AAT CCA AAC ATA AAA TCC CAA G [23] 48 CAC GGC CCT TAG CTT TAC CTTTTC TGA TGG GGC AAC TG [23]22 ACC TCA ATC ATC ATC ACC ATC TTGCG CTG AAA TGA TCA TAA TGT AG [23] 49 TTG GGC GCC TCT TGC TCG TCT TCAAGC ATG CGT GGT GGT CTC GTC AGC [23]23 TGT ATC CCC TCC TCG GAT AAGGC ATT AAT GGA TGA TGA TGA [24] 50 AGG CCG AGC AAG ATG ACG ACG ATACGT TCG ACA GCG GCT CTT CAA AAG [23],24 AAT TAA CTC CAA CAG CTC CAATG GTT GCT TAA TTC AAT GG [24] 51 GAC GAC ATG ACG AGG GAG GAAGCA CTA TGG GCG CAC TAC ACA [23],25 AAG CAA AGT CCA TAA AAA CGCGGA CGA AGA CGC TCC ATT [25] 52 CCT GCA AGG GTA TTT GGG TTT ACGTTC GTT GGC CCC AAA TAC TTC AAT [23],26 TGC AGG TGA TGT CAT CAC CGAAC CGA ATC CAT GCG TCA CC [23] 53 ATT TAG TTA TGA TCT GGT TTT TAAG CTA TTA TAA TCA TTT CTC ACA [23],27 ACG TAT ATG AAG TTC TTG ATT GCGAC AGA TCA TTA TGA TTA CTA CAG [23] 54 TTT GGC AAA AGA ACA TTG AGA TATA TTG GTA TTA GTT GAA GTT [23],

    圖6 懸鈴木54對(duì)引物的SSR擴(kuò)增圖Fig.6 Gel electrophoresis of the SSR products with 54 pairs of the plant

    3 結(jié)論與討論

    SSR-PCR標(biāo)記具有多態(tài)性高、試驗(yàn)重復(fù)性好和共顯性遺傳的特點(diǎn),雖然廣泛用于農(nóng)作物品種鑒定、遺傳作圖、基因定位、植物分類和進(jìn)化及遺傳多樣性[2-13]等方面,但對(duì)于不同植物SSR標(biāo)記的技術(shù)體系有所不同。該試驗(yàn)采用了先構(gòu)建基本反應(yīng)體系,再在基本反應(yīng)體系中進(jìn)行單因素梯度優(yōu)化試驗(yàn)的方法,既節(jié)約了成本,又有的放矢的針對(duì)每一個(gè)因素。本實(shí)驗(yàn)對(duì)影響SSR擴(kuò)增效果的退火溫度等5個(gè)參數(shù)的篩選,建立的最適懸鈴木SSR-PCR擴(kuò)增體系為,20 μL的反應(yīng)體系中,包括懸鈴木4.0ng·μL-1DNA,0.2 mmol·L-1dNTP,0.6μmol·L-1引物,0.05 U·μL-1Taq 酶,退火溫度為 50 ℃。

    影響PCR擴(kuò)增效果的因素多種多樣,引物退火溫度就是其中之一[1-14]。在利用SSR分子標(biāo)記技術(shù)開(kāi)展新植物DNA堿基序列變化研究中,需要進(jìn)行大量的引物篩選工作。雖然每對(duì)引物都有其理論的退火溫度,但是適宜的理論退火溫度不能得到理想的擴(kuò)增效果。通用SSR-PCR擴(kuò)增需要對(duì)每一對(duì)引物進(jìn)行適宜退火溫度的篩選[1-14,16],工作單調(diào)而繁重。因此,本試驗(yàn)采用TD-PCR技術(shù)建立起來(lái)的懸鈴木SSR-PCR分子標(biāo)記反應(yīng)體系可以在懸鈴木相關(guān)研究中兼顧大部分引物對(duì)退火溫度的要求,使引物篩選工作能夠快速準(zhǔn)確的進(jìn)行,從而避免煩瑣引物退火溫度的篩選工作。至于該反應(yīng)體系在懸鈴木現(xiàn)代生物技術(shù)研究中的應(yīng)用情況將在后續(xù)的論文內(nèi)給予報(bào)道。

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