吳書景 池玉杰 閆洪波
(東北林業(yè)大學(xué),哈爾濱,150040)
錳過氧化物酶(MnP;EC1.11.1.13)是一種依賴H2O2的含F(xiàn)e3+的血紅素五聚體糖蛋白酶,同時(shí)也是一種常見的降解木質(zhì)素的過氧化物酶,廣泛存在于白腐菌中,在真菌降解木質(zhì)素的非特異性細(xì)胞外氧化還原酶中起著至關(guān)重要的作用。由于MnP對酚類和非酚類木質(zhì)素和多環(huán)芳烴等多種異生物質(zhì)都具有獨(dú)特的降解能力,它能夠有效地降解廢水和土壤中很難被降解的多氯聯(lián)苯、多環(huán)芳烴、DDT、染料、炸藥和其它氯化物等,因此這種酶在生物制漿、污水處理等生物技術(shù)應(yīng)用中具有重要意義。Lenzittes gibbosa是東北地區(qū)常見的一種白腐菌,也是一種生長速度較快、對木材和木質(zhì)素分解能力較強(qiáng)的白腐菌,筆者及其小組以前的研究表明這種白腐菌能夠產(chǎn)生錳過氧化物酶和漆酶[1],并首先克隆到了該菌種的MnP基因[2]。筆者根據(jù)本研究小組已克隆到的L.gibbosa MnP1 cDNA全長基因Lg-mnp1,利用染色體步移法首先克隆到了Lg-mnp1上游的啟動子序列。對L.gibbosa MnP1基因Lg-mnp1啟動子的克隆有助于進(jìn)一步深入研究mnp表達(dá)調(diào)控的關(guān)系,同時(shí)也為外源基因表達(dá)載體系統(tǒng)的構(gòu)建提供了重要依據(jù)。
白腐菌(Lenzittes gibbosa)菌株CB1采自長白山,自行分離得到,保存在東北林業(yè)大學(xué)森林保護(hù)學(xué)科森林病蟲病理實(shí)驗(yàn)室。試驗(yàn)前在PDA斜面培養(yǎng)基上培育的菌種冷藏于4℃冰箱。挑取小塊試管內(nèi)的菌種,接種于PDA平板培養(yǎng)基上,于28℃下培養(yǎng)7 d。
取長勢較旺的一皿菌絲體,刮取新鮮菌絲,使用TIANGEN公司的 DNAquick_快捷型植物基因組DNA提取系統(tǒng)及相關(guān)方法提取真菌基因組DNA。將所得DNA取2 μL用1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測DNA的純度和大小,然后將DNA稀釋到終濃度為10~100 mg·L-1用于PCR反應(yīng)。
根據(jù)已克隆到的L.gibbosa MnP1 cDNA全長基因Lg-mnp1,在 5'端設(shè)計(jì)了3個(gè)巢式特異性引物SP1、SP2和SP3,設(shè)計(jì)方向?yàn)樾枰獢U(kuò)增的未知區(qū)域方向,SP2在SP1的上游,SP3位于SP2的上游。其中,SP1:5'-CGCAGCGTTCGTAGTGGTCT-3';SP2:5'-GCGAGGAGAGAAACGAAGGAAG-3';SP3:5'-ATTGTCGTTGTCTGATGAGGGATG-3'。利用染色體步移技術(shù)(Genome Walking Kit試劑盒,TaKaRa)克隆其上游的啟動子序列。PCR的擴(kuò)增體系、溫度條件和循環(huán)數(shù)見表1。擴(kuò)增完畢后,取第二、三輪PCR反應(yīng)液各2 μL,使用1%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳,觀察電泳圖,確定目的條帶。使用Gel Extraction Kit(E.Z.N.A)試劑盒回收PCR產(chǎn)物的目的片段,再將DNA片段連接到 PMD20-T載體(TaKaRa)并轉(zhuǎn)化至Top10感受態(tài)細(xì)胞中,所得菌液交北京英駿公司測序。將測定的序列去除載體后,與Lg-mnp1編碼區(qū)原始序列進(jìn)行拼接比對,確定為編碼區(qū)上游序列。采用 Signal Scan(http://www-bimas.cit.nih.gov/molbio/signal/)對克隆到的Lg-mnp1啟動子序列進(jìn)行分析[3-4],確定其中的啟動子元件及核心區(qū)域。
篩選第2輪和第3輪PCR產(chǎn)物的目的片段,測序后得到1 568 bp的序列如圖1所示,與Lg-mnp1編碼區(qū)原始序列進(jìn)行拼接比對,結(jié)果有90 bp的重疊,表明所得序列即為L.gibbosa MnP1基因Lgmnp1的啟動子序列。將該啟動子序列遞交Gen-Bank,登錄號為 HM369808。
表1 染色體步移PCR的擴(kuò)增體系、溫度條件和循環(huán)數(shù)
圖1 L.gibbosa MnP1基因Lg-mnp1的啟動子序列
啟動子序列結(jié)構(gòu)分析結(jié)果表明,Lg-mnp1 5'端上游包含了真核生物啟動子的基本轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件,見表2及圖1。在起始密碼子上游-83 bp處有1個(gè)TATA-box,-119、-196 bp有 2 個(gè)反向 CCAAT-box(ATTGG)。-92~43 bp為Lg-mnp1啟動子的基礎(chǔ)啟動子區(qū);在-52 bp處有一個(gè)轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)。也存在多個(gè)順式作用元件,包括SP-1(GGGCGG)、激活子蛋白AP-2位點(diǎn)(CCCMNSSS)、熱激元件HSE(5'-NTTCNNGAAN-3')[5]及6個(gè)推定的金屬響應(yīng)MREs(TGCRCNC)[6]等。
表2 Lg-mnp1啟動子包含的作用元件
將克隆到的白腐菌L.gibbosa MnP1基因Lgmnp1啟動子序列與前人研究的8種白腐菌16個(gè)mnp啟動子元件進(jìn)行了比較,結(jié)果見圖2。從圖2可知,盡管Lg-mnp1的調(diào)控元件與其他記載的白腐菌mnp有很多相似之處,但元件分布、數(shù)目及方向都有所不同。有些菌株mnp啟動子不包含MRE(如Lentinula edodes[7]),而有些菌株 mnp 啟動子存在正向的CCAAT-box。
本研究的白腐菌(Lenzites gibbosa)與偏腫栓菌(Trametes gibbosa)是同物異名,起初Persoon將其命名為偏腫迷孔菌(Daedalea gibbosa Pers.),后來由Fries轉(zhuǎn)屬作為 Trametes gibbosa(Pers.ex Fr.)Fr.,該命名后來一直被沿用。1939年,日本京都帝國大學(xué)農(nóng)學(xué)部植物病理學(xué)研究室的逸見武雄(Hemmi Takewo)曾根據(jù)其子實(shí)體的形態(tài)特征,將其重新轉(zhuǎn)屬命名為 Lenzites gibbosa(Pers.)Hemmi[19],但并未被采用。Tom?ovsky等[20]對其進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育分析后,發(fā)現(xiàn)其與Lenzites屬的系統(tǒng)學(xué)關(guān)系較近,遂認(rèn)定Lenzites gibbosa為該種的合法名稱。由于該種已經(jīng)轉(zhuǎn)屬到革裥菌屬,可將其中文名改為偏腫革裥菌,偏腫栓菌作為同物異名。
圖2 16個(gè)白腐菌mnp基因啟動子元件的比較
利用染色體步移法克隆了偏腫革裥菌Lg-mnp1啟動子序列,序列全長1 568 bp。經(jīng)啟動子在線分析軟件分析可知,該5'端轉(zhuǎn)錄調(diào)控區(qū)序列包含了真核生物啟動子的基本轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件:1個(gè)TATA-box和2個(gè)反向的CCAAT-box(ATTGG),以及多個(gè)重要順式作用元件,包括轉(zhuǎn)錄因子SP-1、AP-2、熱誘導(dǎo)因子HSE、金屬響應(yīng)因子MRE以及氮因子結(jié)合元件(GATA)等,這表明偏腫栓菌MnP在轉(zhuǎn)錄水平可能受氮源、錳以及熱休克調(diào)控,進(jìn)一步的證據(jù)有待于對其5'端調(diào)控區(qū)域進(jìn)行缺失分析研究。因此,對偏腫革裥菌Lg-mnp1啟動子的克隆,可為進(jìn)一步揭示mnp表達(dá)調(diào)控的分子機(jī)制提供啟動子序列基礎(chǔ)。再者,在構(gòu)建外源表達(dá)載體時(shí),所應(yīng)用的可以是質(zhì)粒中的啟動子序列,也可以是自我基因的啟動子序列,這可根據(jù)試驗(yàn)對比的結(jié)果篩選哪一個(gè)啟動子序列更有利于該基因的外源表達(dá)。因此,對偏腫革裥菌L.gibbosa的錳過氧化物酶基因啟動子序列的克隆,也為其外源基因表達(dá)載體系統(tǒng)的構(gòu)建提供了基礎(chǔ)依據(jù)。
[1]張玉龍,池玉杰,閆洪波.偏腫栓菌產(chǎn)錳過氧化物酶條件優(yōu)化[J].林業(yè)科學(xué),2011,47(8):88-94.
[2]閆洪波.偏腫擬栓菌錳過氧化物酶cDNA基因克隆及在畢赤酵母中的表達(dá)[D].東北林業(yè)大學(xué),2009.
[3]Liu Yaoguang,Chen Yuanling.High-efficiency thermal asymmetric interlaced PCR for amplification of unknown flanking sequences[J].BioTechniques,2007,43(5):649-656.
[4]Wang Shiming,He Jian,Cui Zhongli,et al.Self-formed adaptor PCR:a simple and efficient method for chromosome walking[J].Applied and environmental microbiology,2007,73(15):5048-5051.
[5]Bonner J J,Ballou C,F(xiàn)ackenthal D L.Interactions between DNA-bound trimers of the yeast heat shock factor[J].Mol Cell Biol,1994,14(1):501-508.
[6]Culotta V C,Hamer D H.Fine mapping of a mouse metallothionein gene metal response element[J].Mol Cell Biol,1989,9(3):1376-1380.
[7]Nagai M,Sakamoto Y,Nakade K,et al.Isolation and characterization of the gene encoding a manganese peroxidase from Lentinula edodes[J].Mycoscience,2007,48:125-130.
[8]Alic M,Akileswaran L,Gold M H.Characterization of the gene encoding manganese peroxidase isozyme 3 from Phanerochaete chrysosporium[J].Biochimica et Biophysica Acta,1997,1338(1):1-7.
[9]Godfrey B J,Mayfield M B,Brown J A,et al.Characterization of a gene encoding a manganese peroxidase from Pkanerochaete chrysosporium[J].Gene,1990,93(1):119-124.
[10]Mayfield M B,Godfrey B J,Gold M H.Characterization of the MnP2 gene encoding manganese peroxidase isozyme 2 from the basidiomycete Phanerochaete chrysosporium[J].Gene,1994,142(2):231-235.
[11]Lobos S,Larrondo L,Salas L,et al.Cloning and molecular analysis of a cDNA and the Cs-MnP1 gene encoding a manganese peroxidase isoenzyme from the lignin-degrading basidiomycete Ceriporiopsis subvermispora[J].Gene,1998,206(2):185-193.
[12]Tello M,Corsini G,Larrondo L F,et al.Characterization of three new manganese peroxidase genes from the ligninolytic basidiomycete Ceriporiopsis subvermispora[J].Biochimica et Biophysica Acta,2000,1490(1/2):137-144.
[13]Li D,Li N,Mayfield M B,et al.Characterization of genes encoding two manganese peroxidases from the lignin-degrading fungus Dichomitus squalens[J].Biochimica et Biophysica Acta,1999,1434(2):356-364.
[14]Ruiz-Due?as F J,Martínez M J,Martínez A T.Molecular characterization of a novel peroxidase isolated from the ligninolytic fungus Pleurotus eryngii[J].Molecular Microbiology,1999,31(1):223-235.
[15]Asada Y,Watanabe A,Irie T,et al.Structures of genomic and complementary DNAs coding for Pleurotus ostreatus manganese(II)peroxidase[J].Biochimica et Biophysica Acta,1995,1251(2):205-209.
[16]Giardina P,Palmieri G,F(xiàn)ontanella B,et al.Manganese peroxidase isoenzymes produced by Pleurotus ostreatus grown on wood sawdust[J].Archives of Biochemistry and Biophysics,2000,376(1):171-179.
[17]Hildén K,Martinez A T,Hatakka A,et al.The two manganese peroxidases Pr-MnP2 and Pr-MnP3 of Phlebia radiata,a lignindegrading basidiomycete,are phylogenetically and structurally divergent[J].Fungal Genetics and Biology,2005,42(5):403-419.
[18]Johansson T,Nyman P O.A cluster of genes encoding major isozymes of lignin peroxidase and manganese peroxidase from the white-rot fungus Trametes versicolor[J].Gene,1996,170(1):31-38.
[19]Hemmi T,Ikeya J.Studies on Lensites gibbosa(Pers.)Hemmi n.comb.causing wood-rot of deciduous trees[J].Japanese Journal of Phytopathology,1939,9(1):1-15.
[20]Tom?ovsky M,Kolaǐík M,Pa?outová S,et al.Molecular phylogeny of European Trametes(Basidiomycetes,Polyporales)species based on LSU and ITS(nrDNA)sequences[J].Nova Hedwigia,2006,82(3/4):269-280.