劉永祥劉艷麗徐秋良姜東風楊建平
(1.河南省高校動物營養(yǎng)與飼料工程技術研究中心,鄭州 450011;2.鄭州牧業(yè)工程高等??茖W校,鄭州 450011)
共軛亞油酸(conjugated linoleic acid,CLA)是含有共軛雙鍵亞油酸的空間和幾何異構體的一類化合物的總稱,屬多不飽和脂肪酸家族的成員,具有抗癌、預防心血管疾病、糖尿病及控制體重等多種生理活性,其調節(jié)免疫和炎癥反應的功效被廣泛認可[1]。在動物生產方面,人們致力于生產富含CLA的動物產品以滿足人類的健康需求,同時利用CLA的免疫調節(jié)作用,緩解畜禽免疫應激,保證畜禽正常生長。
腸道黏膜免疫是動物機體數量最大、最復雜的免疫系統,在對抗有害飼糧抗原和腸道病原微生物方面發(fā)揮著重要的作用。有研究表明,母鼠飼糧添加CLA能夠提高幼鼠腸道分泌型免疫球蛋白 A(secretory immunoglobulin A,SIgA)含量[2]。從母豬懷孕至肉豬生長育肥期,在飼糧中添加CLA能夠提高肉豬腸道SIgA含量,增強腸道細胞免疫功能[3]。在病原菌Brachyspira hyodysenteriae誘導仔豬腸炎的試驗中,飼糧添加CLA能夠增強仔豬結腸過氧化酶體增殖物激活受體γ(PPARγ)基因mRNA的表達,緩解炎癥相關的腸道黏膜損傷[4]。上述研究顯示,CLA和腸道黏膜免疫反應存在密切的關系。在家禽科學方面,有關CLA的研究集中在提高禽產品的CLA含量及利用CLA改善機體脂類代謝從而提高肌肉率[5-7],少量的研究涉及CLA對肉仔雞的免疫調節(jié)特性[8-9],但CLA對家禽腸道黏膜免疫反應的研究尚屬空白。
基于CLA和豬鼠等動物腸道黏膜免疫的密切關系,我們推斷CLA可能影響肉仔雞腸道黏膜免疫反應。本試驗參考前人的研究[8-9],選擇1%CLA添加量,研究CLA對肉仔雞空腸SIgA分泌和小腸黏膜細胞免疫反應的影響,旨在為采取營養(yǎng)措施調控肉仔雞的腸道免疫反應,保證肉仔雞正常生長提供理論和實踐依據。
試驗選用72只1日齡健康、體重相近的愛拔益加(AA)雄性肉仔雞,隨機分配到對照組和CLA組,每組6個重復,每個重復6只雞,2組分別飼喂基礎飼糧和在基礎飼糧中添加1%CLA的飼糧。飼糧參考NRC(1994)標準配制,基礎飼糧組成及營養(yǎng)水平見表1,CLA組以1%CLA替代等量豆油,試驗所用的CLA(80.8%)購自青島澳海生物有限公司。肉仔雞購自本地孵化場,初始體重差別控制在1.5 g。采用3層鍍鋅雞籠飼養(yǎng),人工控溫,最初5 d的溫度控制在31~33℃,以后每周降低2~3℃。肉仔雞飼養(yǎng)按常規(guī)程序飼養(yǎng)和免疫,直到21日齡。
1.2.1 生長性能
試驗開始和結束時,以重復為單位分別稱重,統計階段平均日采食量和料重比,發(fā)生死亡時,隨時記錄飼料消耗量和死淘汰雞的體重。
1.2.2 空腸內容物SIgA測定
肉仔雞于21日齡宰殺,收集空腸內容物,內容物與生理鹽水按1∶1(質量體積比)稀釋,混勻后5 000×g 4℃離心15 min,分離上清液。按ELISA試劑盒說明測定SIgA含量,ELISA試劑盒購自上海滬峰生物科技有限公司。
1.2.3 空腸黏膜SIgA、PPARγ 和轉化生長因子β4(transforming growth factor-β4,TGFβ4)基 因mRNA表達檢測
取21日齡肉仔雞空腸中段2~3 cm,縱形剖開,用磷酸鹽緩沖液(PBS)充分洗滌,取組織樣30~50 mg,液氮速凍后,置入 -80℃保存??俶RNA分離采用TRIZOL一步法,即組織樣品在1 mL TRIZOL中充分勻漿,勻漿液12 000×g 4℃離心10 min以去除不溶成分。
實時熒光PCR檢測基因mRNA表達。各基因引物序列如下,根據GenBank發(fā)表的雞PPARγ基因mRNA(XM414308)序列為模板設計引物為:5'-GGGCGATCTTGACAGGAA-3',5'-GCCTCCACAGAGCGAAAC-3'。根據 GenBank發(fā)表的雞SIgA基因mRNA(S40610)序列為模板設計引物為:5'-TAGATAACCTCGAGCCGATCGCA-3',5'-GACTTGCCCTCCAATGGATCCTC-3'。根 據 Gen-Bank發(fā)表的雞TGFβ4基因mRNA(M31160)序列為模板設計引物為:5'-CGGGACGGATGAGAAGAAC-3',5'-CGGCCCACGTAGTAAATGAT-3'。根據GenBank發(fā)表的雞 β-肌動蛋白(β-actin)基因mRNA(NM 205518)序列為模板設計引物為:5'-TCTGGTGGTACCACAATGTACCCT-3',5'-CCAGTAATTGGTACCGGCTCCTC-3'。
表1 基礎飼糧組成及營養(yǎng)水平(風干基礎)Table 1 Composition and nutrient levels of the basal diet(air-dry basis) %
PCR反應體系為:1 μL cDNA、上游和下游引物(0.25 μmol)各 0.6 μL、5.3 μL 雙蒸水(無RNA 酶)、7.5 μL SYBR Green PCR master Mix(ABI公司,美國),反應總體積為15 μL。擴增條件為:55℃ 2 min,94℃預變性10 min,94℃變性15 s、53.5 ℃退火30 s、72 ℃ 延伸 30 s擴增 30 個循環(huán),每個樣品設3個重復。以β-actin為參比。
1.2.4 Peyer氏結淋巴細胞分離、淋巴細胞轉化率和淋巴細胞亞群檢測
Peyer氏結及其淋巴細胞分離按照Vaughn等[10]的方法。截取從麥柯爾盲囊近端大約3 cm到回盲結合部尾端大約2 cm的腸段,用蒸餾水徹底沖洗,在靠近空腸和回腸結合處用鑷子結扎,用10~20 mL稀薄的曙紅液灌注,停留1 min,然后用10~20 mL結晶紫溶液灌注,顯現并切除Peyer氏結,放入冷的RPMI-1640溶液,用手術刀片輕輕切割和碾碎,腸道組織轉移到含10 mmol/L DTT、10-4mol/L EDTA的無鈣、鎂漢克氏平衡鹽溶液(CMF-HBSS,含5%胎牛血清)中,37°C孵育,搖床20 min,釋放的淋巴細胞經300目尼龍網過濾,500×g離心,沉淀懸于HBSS液,反復3次。重懸于HBSS液(含3%胎牛血清),用Percoll密度離心法分離IEL,4℃,600×g,離心25 min,重懸于HBSS營養(yǎng)液,調整淋巴細胞至1×107個/mL。
MTT法測定淋巴細胞轉化率。將淋巴細胞懸液加入96孔細胞培養(yǎng)板,再加入含絲裂原伴刀豆球蛋白(ConA,終濃度45 μg/mL),對照組則加等體積的不含絲裂原的培養(yǎng)液,培養(yǎng)體系每孔共200 μL,3 個重復。于5%CO2、37 ℃ 下培養(yǎng)72 h。在培養(yǎng)結束前4 h,每孔加入5 mg/mL的 MTT 10 μL,繼續(xù)培養(yǎng)。培養(yǎng)結束時,每孔再加入100 μL 10%SDS-0.04 mol/L HCl溶液,30 min 后用酶標儀于570 nm波長下測定OD值。
淋巴細胞亞群檢測。CD4+和CD8+淋巴細胞亞群含量在河南省人民醫(yī)院采用流式細胞儀測定。小鼠抗雞CD4+-PE、CD8+-PE(Southern Biotechnology Associates,Inc,Birmingham,AL)單抗均為熒光標記。
試驗數據表示為平均值±標準差,采用SPSS 11.5統計分析軟件進行t檢驗和相關分析。
如表2所示,CLA組和對照組肉仔雞1~21日齡的平均日增重、平均日采食量和料重比之間沒有顯著差異(P>0.05)。
表2 飼糧添加CLA對1~21日齡肉仔雞平均日增重、平均日采食量和料重比的影響Table 2 Effects of dietary CLA on average daily gain,average daily feed intake and feed/gain of broiler chicks from 1 to 21 days of age
從表3可以看出,與對照組相比,CLA組肉仔雞空腸食糜SIgA含量和空腸SIgA基因mRNA的表達水平分別提高了 43.58%(P<0.01)和212.20%(P <0.01),這說明飼糧糧添加 CLA 無論在蛋白質水平還是在基因水平上均提高了SIgA的表達。
表3 飼糧添加CLA對肉仔雞空腸食糜SIgA含量和空腸SIgA基因mRNA表達的影響Table 3 Effects of dietary CLA on jejunal chyme SIgA content and jejunum SIgA gene mRNA expression of broiler chicks
從表4可以看出,與對照組相比,CLA組肉仔雞空腸PPARγ基因mRNA表達水平提高了51.56%(P <0.01),但 TGFβ4 基因 mRNA 表達水平在2組之間沒有顯著差異(P>0.05)。
表4 飼糧添加CLA對肉仔雞空腸PPARγ和TGFβ4基因mRNA表達的影響Table 4 Effects of dietary CLA on jejunum PPARγ and TGFβ4 gene mRNA expression of broiler chicks
飼糧添加CLA對肉仔雞Peyer氏結淋巴細胞亞群和淋巴細胞轉化率的影響見表5。與對照組相比,CLA組肉仔雞Peyer氏結CD8+淋巴細胞亞群百分數提高了 18.35%(P <0.01),CD4+淋巴細胞亞群百分數有提高的趨勢,但未達到顯著水平(P>0.05);飼糧添加 CLA顯著提高肉仔雞Peyer氏結淋巴細胞增殖活性(P<0.05)。
表5 飼糧添加CLA對肉仔雞Peyer氏結淋巴細胞亞群和淋巴細胞轉化率的影響Table 5 Effects of dietary CLA on T lymphocyte subsets of Peyer’s patch and lymphocyte transformation rate of broiler chicks
在本試驗的條件下,飼糧添加1%CLA對1~21日齡肉仔雞平均日增重、平均日采食量和料重比均沒有顯著的影響,這與 Du等[11]和 Simon等[12]的研究結果一致。但 Szymczyk 等[13]發(fā)現在肉仔雞飼糧中添加 CLA(0.50%、1.00% 和 1.50%)顯著降低了平均日采食量和平均日增重,但對料重比無顯著影響。而賀喜等[6]的研究表明飼糧添加1.00%CLA顯著增加長沙黃和AA 2個品種肉仔雞1~21日齡和22~42日齡期間的體增重并改善4~6周齡的飼料轉化率。不同試驗結果的差異還沒有明確的解釋,但可能與CLA添加水平、飼喂時間和動物的營養(yǎng)狀態(tài)、品種等因素有關。
SIgA是胃腸道提供免疫保護最主要的免疫球蛋白,是黏膜免疫的核心,由于其獨特的分泌成分可降低對蛋白酶的敏感性,保證其黏膜免疫清除功能的充分發(fā)揮,從而阻止外源蛋白和病原微生物的入侵。本試驗首次報道飼糧添加1%CLA無論在蛋白水平還是在基因水平均提高了肉仔雞空腸 SIgA 含量。Pérez-Cano等[2]報道,通過在母鼠飼糧中添加CLA,可提高仔鼠小腸和結腸SIgA基因mRNA表達水平和腸道SIgA含量。Ramírez-Santana等[14]報道,小鼠飼糧長期添加 CLA可提高腸系膜淋巴結特異性卵清蛋白-免疫球蛋白A(OVA IgA)的產量??傊?,飼糧添加CLA可能對多種動物腸道黏膜SIgA的分泌有廣泛調節(jié)作用。
過氧化酶體增殖物激活受體(PPAR)是核受體家族中的一員,是調控基因轉錄和細胞功能的一個重要成分,與特定的DNA序列即PPAR反應元件(PPRE)結合,調控目的基因的表達。目前的理論認為,CLA具有PPAR激活體的一般結構特點,激活PPAR是CLA發(fā)揮免疫調節(jié)和炎性抑制活性的途徑之一[15]。在誘導性結腸炎(IBD)試驗中,飼糧添加CLA通過激活PPARγ調節(jié)相關基因的表達,緩解仔豬炎性腸病損傷程度[16]。Nicholas等[17]報道,CLA通過PPAR途徑減輕結腸炎癥,阻止腸道腫瘤的形成。本試驗中,飼糧添加CLA提高了空腸PPARγ基因mRNA的表達水平,同時也使SIgA含量和SIgA基因mRNA表達水平增強,這意味著激活PPARγ可能是CLA調節(jié)SIgA表達的途徑之一。
轉化生長因子β(TGFβ)在黏膜位點刺激免疫球蛋白A(IgA)反應中有重要的作用[18],其介導的信號在免疫球蛋白M(IgM)+B細胞向IgA+B細胞轉化中發(fā)揮重要作用。此外,TGFβ是吸引淋巴細胞向上皮層移居的趨化因子,在IgA+B細胞分化增殖后再到黏膜下固有層中成為成熟IgA漿細胞的過程中發(fā)揮重要作用。但本試驗中該基因mRNA水平在CLA組和對照組之間沒有顯著差異,因此在本試驗的條件下,提高的SIgA基因mRNA表達和蛋白質水平不可能源自TGFβ4的刺激作用。
Peyer氏結是腸道黏膜免疫系統重要的組分,是腸道對外界抗原應答的主要調節(jié)和擴大器,被稱為第2淋巴器官。與哺乳動物的Peyer氏結不同,家禽的Peyer氏結在未固定的狀態(tài)下不太明顯,故其在黏膜免疫中的作用鮮有報道。本試驗采用Vaughn等[10]提出的簡便方法鑒別分離肉仔雞的Peyer氏結。
本試驗發(fā)現飼糧添加1%CLA顯著提高21日齡肉仔雞腸道Peyer氏結淋巴細胞對ConA的增殖活性。關于CLA對淋巴細胞轉化率的影響已有許多報道。飼糧添加CLA增強鼠、豬等動物外周血和脾臟淋巴細胞的增殖活性[19-21]。但家禽方面的研究僅見于Zhang等[9]的報道,與本試驗結果不同的是飼糧添加CLA顯著提高了42日齡時外周血淋巴細胞對ConA的增殖反應,但對肉仔雞21日齡外周血淋巴細胞轉化率無顯著影響。本試驗與Zhang等[9]試驗結果存在差異的原因可能在于淋巴細胞對CLA的反應存在組織差異性;此外,腸道直接處于高濃度的CLA環(huán)境下,可能比外周血淋巴細胞對CLA的反應更快。
本試驗條件下,飼糧添加CLA顯著提高Peyer氏結CD8+淋巴細胞百分數,與以前的研究結果一致,即在缺乏外源刺激的情況下,飼糧添加CLA能夠提高鼠、豬和禽等動物外周血、胸腺、脾臟CD8+T 淋巴細胞數[9,20-22]。CD8+可直接破壞被病毒感染的細胞,防止由Th1和Th2類CD4+T淋巴細胞介導的免疫損傷,在機體抵抗病毒和細菌感染的細胞免疫中發(fā)揮重要的作用。因此,提高的Peyer氏結CD8+T淋巴細胞百分數意味著可能有助于提高肉仔雞抵抗腸道病毒(菌)感染的能力,但其確切的作用尚需進一步的攻毒試驗來驗證。不過這一作用已在豬的研究中得到證實:在腸道病原菌B.hyodysenteriae誘導仔豬腸炎的試驗中,飼糧添加CLA有利于維持正常的淋巴細胞亞群(CD4+和CD8+)并減輕腸道黏膜損傷[4]。
①飼糧添加1%CLA無論在蛋白質水平還是在基因水平均提高了21日齡肉仔雞空腸SIgA含量,激活PPARγ可能是CLA調節(jié)SIgA表達的途徑之一。
②飼糧添加1%CLA提高了21日齡肉仔雞Peyer氏結T淋巴細胞轉化率和CD8+T淋巴細胞百分數。
[1]PARIZA M W,PARK Y,COOK M E.The biologically active isomers of conjugated linoleic acid[J].Progress of Lipid Research,2001,40(4):283-298.
[2]PéREZ-CANO FJ,RAMíREZ-SANTANA C,MOLERO-LUíS M,et al.Mucosal IgA increase in rats by continuous CLA feeding during suckling and early infancy[J].Journal of Lipid Research,2009,50(3):467-476.
[3]BONTEMPO V,SCIANNIMANICO D,PASTORELLI G,et al.Dietary conjugated linoleic acid positively affects immunologic variables in lactating sow and piglets[J].The Journal of Nutrition,2004,134(4):817-824.
[4]HONTECILLAS R,WANNEMEULHER M J,ZIM-MERMAN D R,et al.Nutritional regulation of porcine bacterial-induced colitis by conjugated linoleic acid[J].The Journal of Nutrition,2002,132(7):2019-2027.
[5]COOK M E,MILLER C C,PARK Y,et al.Immune modulation by altered nutrient metabolism:nutritional control of immune-induced growth depression[J].Poultry Science,1993,72(7):1301-1305.
[6]賀喜,戴求仲,張石蕊,等.日糧添加共軛亞油酸對兩個品種肉仔雞脂類代謝的影響[J].動物營養(yǎng)學報,2007,19(5):581-587.
[7]戴求仲,易昌華,賀建華,等.共軛亞油酸對肉雞體脂和蛋白質沉積的影響[J].動物營養(yǎng)學報,2007,19(1):16-22.
[8]TAKAHASHI K,AKIBA Y,IWATA T,et al.Effect of a mixture of conjugated linoleic acid isomers on growth performance and antibody production in broiler chicks[J].British Journal of Nutrition,2003,89(5):691-694.
[9]ZHANG H J,GUO Y M,YANG Y,et al.Dietary conjugated linoleic acid enhances spleen PPARγ mRNA expression in broiler chicks[J].British Poultry Science,2006,47(6):726-733.
[10]VAUGHN L E,HOLT P S,MOORE R W,et al.Enhanced gross visualization of chicken Peyer’s patch:novel staining technique applied to fresh tissue specimens[J].Avian Disease,2006,50(2):298-302.
[11]DU M,AHN D.Effect of dietary conjugated linoleic acid on the growth rate of live birds and on the abdominal fat content and quality of broiler meat[J].Poultry Science,2002,81(3):428-433.
[12]SIMON O,MANNER K,SCHAFER K,et al.Effects of conjugated linoleic acids on protein to fat proportions,fatty acids,and plasma lipids in broilers[J].Europe Journal of Lipid Science Technology,2000,102(6):402-410.
[13]SZYMCZYK B,PISULEWSKI P,SZCZUREK M,et al.Effects of conjugated linoleic acid on growth performance,feed conversion efficiency,and subsequent carcass quality in broiler chickens[J].British Journal of Nutrition,2001,85(4):465-473.
[14]RAMíREZ-SANTANA C,CASTELLOTE C,CASTELL M,et al.Long-term feeding of the cis-9,trans-11 isomer of conjugated linoleic acid reinforces the speciflc immune response in rats[J].The Journal of Nutrition,2009,139(1):76-81.
[15]TAKAMURA T,NOHARA E,NAGAI Y,et al.Stage specific effects of a thiazolidinedione on proliferation,differentiation and PPARgamma mRNA expression in 3T3-L1 adipocytes[J].Europe Journal of Pharmacology,2001,422(1/2/3):23-29.
[16]BASSAGNYA-RIERA J,HONTECILLAS R.CLA and n-3 PUFA differentially modulate clinical activity and colonic PPAR-responsive gene expression in a pig model of experimental IBD[J].Clinical Nutrition,2006,25(3):454-465.
[17]NICHOLAS P E,SARAH A M,EVA M S.Conjugated linoleic acid ameliorates inflammation-induced colorectal cancer in mice through activation of PPAR[J].The Journal of Nutrition,2010,140(3):515-521.
[18]BORSUTZKY S,CAZAC B B,ROES J,et al.TGF-β receptor signaling is critical for mucosal IgA responses[J].The Journal of Immunology,2004,173(5):3305-3309.
[19]賴長華.共軛亞油酸對斷奶仔豬免疫應激的調控[D].博士學位論文.北京:中國農業(yè)大學,2005:23-29.
[20]BASSAGANYA-RIERA J,HONTECILLAS R,BREGENDAHL K,et al.Effects of dietary conjugated linoleic acid in nursery pigs of dirty and clean environments on growth,empty body composition,and immune competence[J].Journal of Animal Science,2001,79(3):714-721.
[21]CHEW B P,WONG T S,SLUITZ T D,et al.Effects of conjugated dienoic derivatives of linoleic acid and beta-carotene in modulating lymphocyte and macrophage function [J]. AnticancerResearch,1997,17(2):1099-1106.
[22]YAMASAKI M,CHUJO H,HIRAO A,et al.Immunoglobulin and cytokine production from spleen lymphocytes is modulated in C57BL/6J mice by dietary cis-9,trans-11 and trans-10,cis-12 conjugated linoleic acid[J].The Journal of Nutrition,2003,133(3):784-788.