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    和田苜蓿組織培養(yǎng)中玻璃化現(xiàn)象研究

    2012-06-04 03:39:28王庭輝馬暉玲
    草原與草坪 2012年5期
    關(guān)鍵詞:玻璃化和田苜蓿

    王庭輝,馬暉玲

    (甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué) 草業(yè)學(xué)院/草業(yè)生態(tài)系統(tǒng)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/甘肅省草業(yè)工程實(shí)驗(yàn)室/中-美草地畜牧業(yè)可持續(xù)發(fā)展研究中心,甘肅 蘭州 730070)

    紫花苜蓿(Medicago sativa)屬豆科多年生植物,是世界上最重要的飼料作物,有“牧草之王”的美稱,目前世界苜蓿栽培面積為3500萬hm2,在我國已有2000年的栽培歷史[1]。自1958年Renert和Steward從胡蘿卜愈傷織和懸浮細(xì)胞體系中獲得體細(xì)胞胚以來,植物組織培養(yǎng)技術(shù)得到了迅速發(fā)展。隨著組織培養(yǎng)技術(shù)的不斷完善,使得生物技術(shù)在育種上的應(yīng)用成為了可能,大大加快了我國牧草育種的進(jìn)展[2]。王發(fā)生等[3]對紫花苜蓿愈傷組織誘導(dǎo)及植株再生做了詳細(xì)研究。但是,在植物組織培養(yǎng)過程中超度含水態(tài)苗[4,5],由于其難以移栽成活,嚴(yán)重影響植物組織培養(yǎng)技術(shù)的發(fā)展和應(yīng)用。1981年Debergh等[6]提出了試管植物“玻璃化作用”的概念。陳兵先等[7]對植物組織培養(yǎng)中玻璃化現(xiàn)象做了詳細(xì)報(bào)道。

    通過組培體系獲得轉(zhuǎn)基因植株,是目前生物技術(shù)手段改良植物品種的途徑之一,而組培過程中出現(xiàn)的污染,褐化和玻璃化是影響植物組培體系建立的3大難題[8],隨著轉(zhuǎn)基因技術(shù)的發(fā)展,組培體系顯得尤為重要。陶銘[9]通過研究發(fā)現(xiàn)導(dǎo)致再生苗玻璃化的原因主要有培養(yǎng)基、培養(yǎng)容器、環(huán)境條件及外植體種類等,但其誘發(fā)機(jī)理至今尚無定論。李云霞等[10]以新疆大葉,甘農(nóng)三號和隴東苜蓿為試材,對紫花苜蓿組培體系中常見褐化原因進(jìn)行了分析并提出了解決辦法。吳麗芳等[11]對紫花苜蓿組織培養(yǎng)中常見問題也提出了解決對策。同時(shí),亓建飛等[12]對組培中畸形苗的發(fā)生機(jī)理做了闡述。擬通過摸清影響和田苜蓿組織培養(yǎng)過程中玻璃化現(xiàn)象產(chǎn)生的部分因素,提出應(yīng)對措施,為消除紫花苜蓿組織培養(yǎng)過程中的玻璃化現(xiàn)象提供一定的參考依據(jù)。

    1 材料和方法

    1.1 材料

    成熟的和田苜蓿種子采自新疆和田地區(qū)民豐縣苜蓿原種站。

    1.2 方法

    挑選飽滿顏色較好的新疆和田苜蓿種子,用自來水浸泡40min,用75%酒精處理30s,后用0.1%升汞浸泡10min,無菌水沖洗4~5次,將種子表面的升汞沖洗干凈,接于MS培養(yǎng)基中,室內(nèi)自然光光照培養(yǎng),待種子萌發(fā)至2~3cm,取其下胚軸為外植體,切成0.5cm×0.5cm的小塊,轉(zhuǎn)接于 MS+2.0mg/L 2,4-D+3%蔗糖+0.7%瓊脂[11]誘導(dǎo)愈傷組織,時(shí)間為20~25d(圖1-1)。將愈傷組織轉(zhuǎn)接到前期分化培養(yǎng)基,誘導(dǎo)芽分化培養(yǎng)基為 MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.05mg/L+瓊脂0.9%[13](圖1-2),直至分化出幼小再生苗。

    30~35 d后選取健康無污染的幼小和田苜蓿再生苗接種在MS基本培養(yǎng)基上,設(shè)置不同濃度6-BA和NAA的組合、不同蔗糖含量、不同瓊脂濃度、不同光照強(qiáng)度作單因子處理,每個(gè)處理20株,每瓶5株,3次重復(fù)。培養(yǎng)條件:25~28℃,光照周期16h。

    1.3 數(shù)據(jù)處理方法

    在不同因素作用下,培養(yǎng)30d后,觀察并統(tǒng)計(jì)組培苗出現(xiàn)玻璃化的情況,用SPSS17.0軟件進(jìn)行單因素的差異顯著性分析,并按公式計(jì)算:

    2 結(jié)果與分析

    2.1 6-BA和NAA濃度對和田苜蓿再生苗玻璃化的影響

    在添加20g/L蔗糖,7g/L瓊脂的MS培養(yǎng)基中,添加不同濃度6-BA和NAA,在光照強(qiáng)度為1 000~1 200lx的條件下,接種繼代培養(yǎng)后的和田苜蓿再生苗,接種30d后觀察并統(tǒng)計(jì)結(jié)果(表1)。試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),隨著6-BA和NAA濃度的升高,再生苗玻璃化率逐漸增大,當(dāng)6-BA為2.0mg/L、NAA 為0.5mg/L時(shí)其增殖系數(shù)達(dá)到最大,為1.93,玻璃化率為38%;當(dāng)6-BA為2.0mg/L、NAA 為1mg/L 時(shí),其增殖系數(shù)為1.75,玻璃化率為60%(圖1-3),研究表明,隨著6-BA和NAA濃度的升高,和田苜蓿再生苗的玻璃化現(xiàn)象加重,而其再生苗增殖系數(shù)先升高后降低。綜合考慮,選擇2.0mg/L 6-BA+0.5mg/L NAA為和田苜蓿再生苗分化的最佳激素濃度配比。

    2.2 蔗糖濃度對和田苜蓿再生苗玻璃化的影響

    將繼代培養(yǎng)的分化苗接種于添加2.0mg/L 6-BA+0.5mg/L NAA和7g/L的瓊脂的MS培養(yǎng)基中并附加不同濃度的蔗糖,在光照強(qiáng)度為1 000~1 200lx的條件下,培養(yǎng)30d后觀察統(tǒng)計(jì)結(jié)果(表2),隨著蔗糖濃度的增加,再生苗的玻璃化率逐漸降低,當(dāng)蔗糖濃度為30g/L時(shí),其玻璃化率最低,為17%;增殖系數(shù)在增大的情況下又減小,當(dāng)蔗糖濃度為20g/L的時(shí)候,其增殖系數(shù)達(dá)到最大,為1.63。當(dāng)蔗糖濃度為20g/L和25g/L時(shí),其增殖芽數(shù)最多,增殖系數(shù)差異不顯著,并且玻璃化率比較低(圖1-4),所以當(dāng)蔗糖濃度為20~25g/L時(shí)適合和田苜蓿再生苗的生長。

    表1 不同激素濃度下和田苜蓿再生苗玻璃化Table 1 Effect of different hormones combination on vitrification of hetian alfalfa

    表2 不同蔗糖濃度下和田苜蓿再生苗玻璃化Table 2 Effect of sugar combination on vitrification of hetian alfalfa

    2.3 瓊脂濃度對和田苜蓿再生苗玻璃化的影響

    在添加2.0mg/L 6-BA+0.5mg/L NAA 和20 g/L蔗糖的MS培養(yǎng)基中加不同濃度的瓊脂,光照強(qiáng)度為1 000~1 200lx的條件下,接種繼代培養(yǎng)后的再生苗,30d后觀察。試驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),隨著瓊脂濃度的增大,其玻璃化率逐漸減小,當(dāng)瓊脂濃度為5g/L時(shí),再生苗玻璃化現(xiàn)象最嚴(yán)重(表3,圖1-5),玻璃化率達(dá)到78%。瓊脂濃度為7g/L和8g/L時(shí),其增殖系數(shù)差異性顯著,玻璃化率差異性不顯著,因此,選擇7g/L的瓊脂濃度作為和田苜蓿最佳的再生苗分化濃度。

    表3 不同瓊脂濃度下和田苜蓿再生苗玻璃化Table 3 Effect of agar combination on vitrification of hetian alfalfa

    2.4 光照強(qiáng)度對和田苜蓿再生苗玻璃化的影響

    在含2.0mg/L 6-BA+0.5mg/L NAA+20g/L蔗糖+7g/L瓊脂的培養(yǎng)基上,接種繼代培養(yǎng)后的和田苜蓿再生苗,置于不同光照強(qiáng)度的培養(yǎng)箱進(jìn)行培養(yǎng),30d后觀察。結(jié)果表明,隨著光照強(qiáng)度增加,再生苗芽增殖能力先升高再下降,在光照強(qiáng)度為1 000lx時(shí),增殖芽數(shù)最多,為25.67,其增殖系數(shù)最大;當(dāng)光照強(qiáng)度為1 000lx和1 200lx時(shí),其增殖系數(shù)差異性不顯著。當(dāng)光照強(qiáng)度為1 000lx和1 200lx時(shí),和田苜蓿玻璃化苗情況不嚴(yán)重,玻璃化率明顯低于其他2個(gè)光照強(qiáng)度(表4,圖1-6)。因此,選擇1 000~1 200lx的光照強(qiáng)度為和田苜蓿再生苗分化培養(yǎng)的光照強(qiáng)度。

    表4 不同光照強(qiáng)度下和田苜蓿再生苗玻璃化Table 4 Effect of Light intensity on vitrification of hetian alfalfa

    圖1 和田苜蓿再生狀況Fig.1 Regeneration of hetian alfalfa

    3 討論

    玻璃化苗現(xiàn)象普遍存在于組織培養(yǎng)過程中,試管苗玻璃化嚴(yán)重影響了植物組織培養(yǎng)的效率和質(zhì)量,因此,試管苗玻璃化問題的解決有助于整個(gè)植物組織培養(yǎng)的發(fā)展和其遺傳體系的建立[14]。而且,在試管苗增殖過程中,一旦形成玻璃化苗,其增殖系數(shù)會(huì)明顯下降,不利于繼代和生根培養(yǎng),降低了組培的效率[15]。在植物組織培養(yǎng)中,蔗糖一直被作為標(biāo)準(zhǔn)碳源,蔗糖的用量是組織培養(yǎng)成功與否的關(guān)鍵之一。成細(xì)華等[16]在結(jié)球白菜組織培養(yǎng)中發(fā)現(xiàn),高濃度的蔗糖不僅不能克服玻璃化現(xiàn)象,而且抑制了不定芽的分化。因此,適當(dāng)提高蔗糖濃度對培養(yǎng)壯苗很有必要[17],何芳蘭等[18]認(rèn)為,增加蔗糖和瓊脂的濃度,可以在不同程度上減少高山杜鵑試管苗玻璃化的發(fā)生,當(dāng)瓊脂濃度0.6%時(shí),其玻璃化率低,增殖系數(shù)高。研究通過蔗糖和瓊脂的不同濃度發(fā)現(xiàn),在和田苜蓿的組織培養(yǎng)中,利用MS培養(yǎng)基,增加適宜濃度的瓊脂,可以降低培養(yǎng)基的襯質(zhì)勢,造成細(xì)胞吸水阻遏,從而降低玻璃化。適當(dāng)提高培養(yǎng)基中蔗糖含量,也可降低培養(yǎng)基中的滲透勢,減少培養(yǎng)基中植物材料可獲得的水分,降低玻璃化現(xiàn)象。

    研究報(bào)道,玻璃化苗發(fā)生百分率和細(xì)胞分裂素成正相關(guān),其中,6-BA的影響大于ZT和KT[19]。適當(dāng)?shù)募に亟M合可以降低試管苗的玻璃化。實(shí)驗(yàn)研究中,在MS+2.0mg/L 6-BA+0.5mg/L NAA 的培養(yǎng)條件下,和田苜蓿玻璃化程度降低,所以,和田苜蓿組織培養(yǎng)可通過調(diào)整6-BA(2.0mg/L)和 NAA(0.5mg/L)的作用濃度,降低和田苜蓿的玻璃化現(xiàn)象,并且其再生芽增殖較明顯。研究建議今后這些措施可以應(yīng)用于苜蓿組織培養(yǎng)過程中,消除玻璃化現(xiàn)象,提高苜蓿組織培養(yǎng)的效率。

    在植物組織培養(yǎng)中,光照是影響培養(yǎng)效果的主要因子之一[20]。桂明春等[22]通過對橡膠樹不定芽誘導(dǎo)的研究發(fā)現(xiàn),光照強(qiáng)度能顯著影響不定芽的生長和形態(tài),不同光照強(qiáng)度下誘導(dǎo)出的不定芽嫩綠程度不同。研究發(fā)現(xiàn),在和田苜蓿誘導(dǎo)分化階段,光照強(qiáng)度對不定芽的再生和植物葉片的形態(tài)具有顯著影響,當(dāng)光照強(qiáng)度為1 000~1 200lx時(shí),其不定芽嫩綠,玻璃化情況不嚴(yán)重。因此,不同的植物,選擇適宜的光照強(qiáng)度對組織培養(yǎng)體系的建立具有重要作用。

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