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    來自鏈霉菌屬的阿魏酸酯酶的分離純化、理化性質(zhì)

    2012-02-26 06:57:54范韻敏
    關(guān)鍵詞:鹽析酯酶層析

    范韻敏

    來自鏈霉菌屬的阿魏酸酯酶的分離純化、理化性質(zhì)

    范韻敏

    (漳州職業(yè)技術(shù)學院, 福建 漳州 363000)

    通過鹽析透析、離子層析、疏水層析,對鏈霉菌屬發(fā)酵液中的阿魏酸酯酶(FAE)進行分離純化,并進行酶學性質(zhì)研究。得出的阿魏酸酯酶的純化倍數(shù)為2.67,回收率為55.8%,酶分子約為30 kDa。其最適反應pH約為6.0,最適溫度約為50°C,金屬離子Cu2+和Zn2+對阿魏酸酯酶酶活力均有明顯的抑制作用,而Mg2+、Fe2+、Ca2+、Na+和Mn2+對酶的活性均有一定的促進作用。

    阿魏酸酯酶;純化;性質(zhì)

    阿魏酸酯酶[1](E.C.3.1.1.73,F(xiàn)erulie acid esterases,F(xiàn)AE),屬于羧酸酯酶類,是一種典型的肉桂酸酯酶。它可破壞阿魏酸與多糖相連的酯鍵,從植物細胞壁中釋放阿魏酸,讓余下的多糖主鏈易被降解,有效提高了含有大量木質(zhì)纖維素和阿魏酸的副產(chǎn)品的營養(yǎng)價值[2]。阿魏酸酯酶的活性是在橄欖產(chǎn)色鏈霉菌和裂褐菌的發(fā)酵液中第一次被發(fā)現(xiàn)[3]。此后,幾種微生物被證實能分泌阿魏酸酯酶,以真菌為多,細菌與放線菌較少。但不同微生物分泌的阿魏酸酯酶在氨基酸序列、理化性質(zhì)和催化功能上有所不同[4,5]。

    研究對一鏈霉菌屬發(fā)酵的阿魏酸酯酶的分離純化,考察了其最適反應pH、最適溫度,以及金屬離子對其的影響,為木質(zhì)纖維綜合利用提供了前期的研究參考。

    1材料和方法

    1.1材料

    1.1.1主要試劑和儀器

    反式阿魏酸標準品,EDTA,阿魏酸甲酯(MFA),硫酸銨,過硫酸銨,低分子量SDS蛋白Marker,考馬斯亮藍,DEAE-Sepharose Fast Flow層析介質(zhì),Phenyl-Sepharose 6 Fast Flow層析介質(zhì), AKTA Prime蛋白質(zhì)純化儀,蛋白電泳儀, Agilent 1100高效液相色譜儀,Thermo EC120小型垂直電泳系統(tǒng),ODS-C18色譜柱(5μm,4.6 mm×250 mm),Gis-2008凝膠成像系統(tǒng)。

    1.1.2菌種:從土壤中篩選得到的鏈霉菌屬

    1.2培養(yǎng)基及培養(yǎng)條件

    (1)斜面培養(yǎng)基:高氏一號培養(yǎng)基,pH 7.2-7.4,28°C培養(yǎng)72 h。

    (2)液體種子培養(yǎng)基:高氏一號培養(yǎng)基,不加瓊脂,pH自然。培養(yǎng)條件:250 mL三角瓶內(nèi)裝50 mL液體培養(yǎng)基,28°C,200 rpm培養(yǎng)72 h。

    (3)發(fā)酵培養(yǎng)基(%)[6]:KH2PO40.30、Na2HPO4·7H2O 0.60、NaCl 0.01、酵母粉0.80、麥糟1.33(粒徑<0.054mm)。培養(yǎng)條件:250 mL三角瓶內(nèi)裝75 mL發(fā)酵培養(yǎng)基,28°C,210 rpm培養(yǎng)68 h。

    1.3阿魏酸和阿魏酸酯酶酶活測定

    1.3.1阿魏酸的測定

    采用HPLC法[7]。流動相為甲醇:水:冰醋酸=30 : 69.5 : 0.5(v:v:v);流速為0.8 mL/min;柱溫30°C;檢測波長318 nm;ODS-C18柱;進樣量為20 μL;檢測器為紫外檢測器,進行等梯度洗脫。

    1.3.2阿魏酸酯酶酶活測定[8]

    發(fā)酵液離心后取250 μL上清液加入250 μL阿魏酸甲酯溶液,50°C保溫15 min后加500 μL的冰乙酸(10% v/v),離心,4°C保存??瞻讟悠窞橹蠓惺Щ畹陌l(fā)酵上清液,處理方法同上。用HPLC法測定其阿魏酸含量。根據(jù)公式:酶活力(U/mL)=W×Df×1000 / 194.18×15×0.25,從而算出阿魏酸酯酶酶活力。式中,W:酶解反應產(chǎn)生的阿魏酸量(mg);Df:稀釋度;1000:將mmol轉(zhuǎn)化成μmol所乘的系數(shù);194.18:阿魏酸的分子量(mg/mmol);15:反應時間(min);0.25:與底物反應的待測酶液量。

    1.4蛋白質(zhì)標準曲線的繪制

    蛋白質(zhì)標準曲線的繪制采用考馬斯亮藍法[9]。

    1.5鹽析曲線的繪制

    根據(jù)硫酸銨飽和度,稱取相應重量的固體硫酸銨,加入發(fā)酵上清液,使其飽和度分別為40%、45%……95%、100%,4°C靜置24 h后離心,棄上清,加10 mL pH 6.0,Na2HPO4-C6H8O7緩沖液。分別測定各個硫酸銨飽和度的沉淀的酶活力。將未經(jīng)硫酸銨處理過的原始酶液的總酶活定為100%。沉淀的酶活力與總酶活的比值定義為相對酶活,繪制鹽析曲線圖。確定最佳硫酸銨飽和度。

    1.6 DEAE-Sepharose Fast Flow離子交換層析原理

    平衡緩沖液:pH 6.0,0 M NaCl,Na2HPO4-C6H8O7緩沖液。洗脫緩沖液:pH 6.0,1 M NaCl,Na2HPO4-C6H8O7緩沖液。用平衡緩沖液平衡DEAE-Sepharose Fast Flow柱,流速為5 mL/min。上樣量為2 mL。后用洗脫緩沖液進行洗脫,洗脫流速為5 mL/min,采用部分收集器連續(xù)收集洗脫液,用于測定酶活,以確定最適的洗脫梯度。

    1.7 Phenyl-Sepharose Fast Flow疏水層析

    平衡緩沖液:pH 6.0,40% 的飽和(NH4)2SO4,Na2HPO4-C6H8O7緩沖液。洗脫緩沖液:pH 6.0,Na2HPO4-C6H8O7緩沖液。用平衡緩沖液平衡Phenyl FF柱后上樣,流速為1 mL/min。上樣量為2 mL。后用洗脫緩沖液進行洗脫,洗脫流速為1 mL/min。采用部分收集器連續(xù)收集洗脫液,用于酶活測定。以確定最適的洗脫梯度。

    1.8 SDS-PAGE 蛋白電泳

    本實驗用10%分離膠及5%濃縮膠制膠。樣品加等體積的2×上樣緩沖液,沸水浴5 min,瞬時離心。上樣量為10-15 μL,采用15 V/cm的電壓進行電泳,采用考馬斯亮藍進行染色1-2 h,SDS聚丙烯酰胺凝膠進行脫色3 h以上,后用GIS-2008凝膠成像系統(tǒng)觀察并拍照。

    1.9阿魏酸酯酶酶學性質(zhì)研究

    1.9.1最適反應pH值和pH值穩(wěn)定性的測定

    最適反應pH值的測定:在50°C,不同的pH值條件下分別測定酶活,以酶活最高為100%,計算相對酶活。所用緩沖液是0.2 M,pH 4.0-9.0的Na2HPO4-C6H8O7緩沖液。

    pH值穩(wěn)定性的測定:將酶液置于不同pH值的0.2 M,pH 4.0-9.0的Na2HPO4-C6H8O7緩沖液中,在50°C保溫,測定殘留酶活性,以各pH值的初始酶活為100%,計算百分比。

    1.9.2最適反應溫度和溫度穩(wěn)定性的測定

    最適反應溫度的測定:在酶液中加入等體積的MFA,在25°C -60°C范圍內(nèi),隨時間變化每隔5°C,測定酶活。以該溫度初始酶活為100%,計算相對酶活。所用緩沖液是0.2 M,pH 4.0-9.0的Na2HPO4-C6H8O7緩沖液。

    溫度穩(wěn)定性的測定:在0.2 M,pH 6.0的Na2HPO4-C6H8O7緩沖溶液中,分別將酶液置于 25°C、30°C……60°C下保溫8 h、16 h、24 h、48 h、72 h、96 h、120 h,分別測定酶活,以初始酶活為100%,測定酶的溫度穩(wěn)定性。

    1.9.3金屬離子對酶活力的影響

    將酶液置于不同離子的反應液中(離子濃度為10 mmol/L),靜置過夜。反應液中還含有0.2 M,pH 6.0的Na2HPO4-C6H8O7緩沖溶液。以不添加離子的酶樣活性為100%,考察金屬離子對酶活力的影響。

    2 實驗結(jié)果

    2.1蛋白標準曲線的制作

    蛋白標準曲線如圖1所示。

    圖1 蛋白質(zhì)濃度標準曲線

    圖2 鹽析曲線

    2.2鹽析曲線的制作

    鹽析曲線如圖2,隨著硫酸銨飽和度增大,沉淀中的相對酶活力緩慢增多,表明蛋白質(zhì)逐步被沉淀,這和硫酸銨鹽析的理論一致。當硫酸銨飽和度低于40%時,大部分蛋白酶仍保留在溶液中,相對酶活力較低。而當硫酸銨飽和度至80%,相對酶活力達到最大,大約90%的蛋白酶已經(jīng)被沉淀。當硫酸銨飽和度超過80%時,部分蛋白質(zhì)變性,蛋白質(zhì)析出量減少,相對酶活力急劇下降??梢娏蛩徜@最適鹽析飽和度為80 %。

    2.3離子交換層析

    經(jīng)采用不同梯度的緩沖液進行洗脫,確定40%至100%洗脫緩沖液二級洗脫,分離效果最佳。粗酶液經(jīng)DEAE FF離子交換層析,得到穿透峰和兩個洗脫峰,其酶活力如表1所示,所得活力組分主要集中在未吸附的穿透峰,洗脫峰中只有很小的酶活力。將收集到的穿透峰的層析液冷凍干燥濃縮后進行蛋白電泳,考察其分離效果(圖3)??芍置敢旱玫讲糠旨兓勺畛醯?條條帶純化至3條條帶。收集該酶活力組分,為1 mL Phenyl FF(high sub)疏水層析樣品。

    表1 離子層析穿透峰和洗脫峰的酶活力

    表2 疏水層析穿透峰和洗脫峰的酶活力

    2.4疏水層析

    經(jīng)采用不同梯度的緩沖液進行洗脫,確定100%洗脫緩沖液梯度洗脫,達到最佳的分離效果。將DEAE FF離子交換層析后得到的穿透峰樣品,進行Phenyl FF疏水層析,得到穿透峰和洗脫峰兩個峰,其酶活力如表2所示,所得活力組分主要集中在洗脫峰,穿透峰中只有很小的酶活力。將收集到的洗脫峰的層析液冷凍干燥濃縮后進行蛋白電泳,考察其分離效果(圖3)。

    2.5蛋白電泳檢驗純度

    通過SDS-PAGE電泳檢驗得到的蛋白的純度,如圖3所示。圖上顯示所純化出來的阿魏酸酯酶的分子量約為30 kDa。從左至右,從泳道3、4可以判斷,除了目標蛋白外,沒有其他條帶,得到了電泳純的目標蛋白。從表3可以看出,經(jīng)DEAE-Sepharose Fast Flow純化后,酶的比活由11.2 U/mg提高到19.8 U/mg,純化倍數(shù)為1.77,回收率為81.5%。通過Phenyl-Sepharose Fast Flow純化,酶的比活達到29.9 U/mg,純化倍數(shù)為2.67,回收率為55.8%,較好的進行了酶的回收。

    圖3 蛋白電泳圖:泳道1為上樣樣品(即粗酶液),泳道2為DEAE穿透峰樣品,泳道3、4為Phenyl洗脫峰樣品,圖中泳道5代表蛋白Marker。

    表3 阿魏酸酯酶的純化

    2.6酶學性質(zhì)研究

    2.6.1最適反應pH值和pH值穩(wěn)定性的測定

    經(jīng)純化的阿魏酸酯酶在不同pH (4.0-9.0)下進行酶促反應以測定其最適 pH值,結(jié)果見圖4。純化的阿魏酸酯酶酶活隨著反應液pH值的變化而變化,在pH值較小時,酶活力較低,pH值為6.0時,阿魏酸酯酶酶活最大,隨著pH值的繼續(xù)增大,酶活力緩慢下降。

    圖4 反應pH對阿魏酸酯酶活性的影響

    圖5 pH對FAE穩(wěn)定性的影響

    在pH 4.0-9.0范圍內(nèi),考察了阿魏酸酯酶隨時間的pH值穩(wěn)定性,見圖5。結(jié)果表明在pH 4.0-6.0之間,酶保持了較高的穩(wěn)定性,其中pH=5.0的時候酶活穩(wěn)定性最高。pH值繼續(xù)增加,酶穩(wěn)定性下降。

    2.6.2最適反應溫度和溫度穩(wěn)定性的測定

    最適溫度的測定是在pH 6.0、0.2 M的Na2HPO4-C6H8O7緩沖溶液體系下進行的酶促反應。結(jié)果如圖6所示,隨溫度升高阿魏酸酯酶的酶活力迅速增加,反應溫度50°C時,阿魏酸酯酶酶活力最大;當溫度超過55°C時酶活力緩慢下降。

    圖6 反應溫度對FAE活性的影響

    圖7 溫度對FAE穩(wěn)定性的影響

    在25°C -60°C考察了阿魏酸酯酶的熱穩(wěn)定性,結(jié)果見圖7。在25°C-35°C保溫120 h,阿魏酸酯酶酶相對活力在80%以上,具有較好的熱穩(wěn)定性。隨著溫度的增高,阿魏酸酯酶的熱穩(wěn)定性下降??梢姲⑽核狨ッ冈跍囟容^低的情況下穩(wěn)定性較強,有利于保存。

    2.6.3金屬離子對酶活力的影響

    為確定金屬離子對酶活力的影響,在含有不同10 mmol×L-1一價、二價金屬離子的反應液中,考察金屬離子對酶活力的影響。以不添加金屬離子的酶活力為對照(100%),結(jié)果如表4。Cu2+、Zn2+對阿魏酸酯酶酶活力均有明顯的抑制作用,Cu2+尤其明顯。而Mg2+、Fe2+、對酶活力有一定的促進作用。其余離子對在檢測范圍對酶活沒有顯著影響。

    表4 金屬離子對阿魏酸酯酶酶活力的影響

    2.7與其他來源的阿魏酸酯酶比較

    本實驗純化的阿魏酸酯酶(FAE-M)與國外的黑曲霉來源的阿魏酸酯酶的理化性質(zhì)進行比較(表5)[4,5],發(fā)現(xiàn)實驗篩選出來的FAE-M與國外的黑曲霉來源FAE-II分子量較為接近,但最適pH差別較大;FAE-M與黑曲霉來源的FAE-III的最適溫度和最適pH較為接近,分子量也較為接近。說明所得到的FAE-M可能為一種新酶,仍需進一步研究加以確認。

    表5 阿魏酸酯酶的理化性質(zhì)

    3討論

    在本實驗中,從菌種的麥糟發(fā)酵液中純化得到一個阿魏酸酯酶的組分,雖然阿魏酸酯酶純化的研究已有很多報道,但放線菌產(chǎn)阿魏酸酯酶報道較少。經(jīng)鹽析、透析、離子交換層析、疏水層析對阿魏酸酯酶進行分離純化,得到了電泳純的目標蛋白。SDS-PAGE電泳確定酶的分子量約為30 kDa。阿魏酸酯酶的純化倍數(shù)為2.67,回收率為55.8%。該酶最適反應pH約為6.0;在pH 4.0-6.0阿魏酸酯酶的穩(wěn)定性較高;其最適反應溫度約為50°C;在25°C-35°C保溫120 h后阿魏酸酯酶酶相對活力在80%以上,表明阿魏酸酯酶具有較好的熱穩(wěn)定性。金屬離子Cu2+和Zn2+對阿魏酸酯酶酶活力均有明顯的抑制作用,而 Mg2+、Fe2+對酶的活性均有一定的促進作用。

    實驗純化的阿魏酸酯酶(FAE-M)與國外黑曲霉來源的阿魏酸酯酶的理化性質(zhì)進行比較,發(fā)現(xiàn)實驗篩選出來的FAE-M與國外的黑曲霉來源FAE-II分子量較為接近,但最適pH差別較大;FAE-M與黑曲霉來源的FAE-III的最適溫度和最適pH較為接近,分子量也較為接近。說明所得到的FAE-M可能為一種新酶,仍需進一步研究加以確認。

    [1] 劉鵬展, 歐仕益, 包惠燕.阿魏酸酯酶的研究與應用[J].食品研究與開發(fā), 2002, 27(5): 169-172.

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    Purification and characterization of ferulic acid esterase from Streptomyces

    FAN Yun-min

    (Zhangzhou Institute of Technology, Fujian Zhanghzou, 363000)

    Ferulic acid esterase produced from the strain was purified by salted out, dialyzed, DEAE-sepharose, Phenyl-sepharose, enzyme specific activity was increased from 11.2 U/mg to 29.9 U/mg and activity recovery reached 55.8%. The molecular mass of this enzyme was estimated to be 30kDa by 0.8% SDS-PAGE. The ferulic acid esterase had an optimal pH value 6.0, and it was stable at pH value 4.0-6.0. Optimal (reaction) temperature of the ferulic acid esterase was 50 ℃, and it was very stable in 25°C-35°C. Metal ions Cu2+, Zn2+had negative effect on FAE, but Mg2+, Fe2+, Ca2+, Na+, Mn2+have promotion effect on FAE.

    ferulic acid esterase, purification, physicochemical properties

    (責任編輯:季平)

    2012-04-15

    范韻敏(1984-),女,福建漳州人,助教,工學碩士。

    TQ925

    A

    1673-1417(2012)02-0020-06

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