龔云飛,陳宗倫,奚茜,李沐潔,王唯芬,王旻子,應(yīng)永飛,張明洲
1 中國計量學(xué)院生命科學(xué)學(xué)院 浙江省生物計量與檢驗檢疫技術(shù)重點實驗室,浙江 杭州 310018
2 杭州迪恩科技有限公司,浙江 杭州 310013
3 浙江省畜產(chǎn)品質(zhì)量安全檢測中心,浙江 杭州 310020
三聚氰胺 (Melamine) 是一種三嗪類含氮雜環(huán)有機化工原料,廣泛應(yīng)用于木材、塑料、涂料、造紙、紡織、皮革、電氣等行業(yè)[1]。三聚氰胺含氮量極高,不法商販把廉價的三聚氰胺添加入食品中,以虛假提高食品中的蛋白質(zhì)含量。2007年3月,美國發(fā)生4 000多起貓狗中毒死亡事件[2];2008年我國爆發(fā)三鹿嬰幼兒奶粉受污染事件,導(dǎo)致食用了受污染奶粉的嬰幼兒產(chǎn)生腎結(jié)石病癥甚至死亡;2010年初再度爆發(fā)的問題奶粉事件,其原因都是奶粉中含有三聚氰胺[3],因此開展對食品及飼料中三聚氰胺殘留的檢測勢在必行。目前,各國政府都禁止三聚氰胺用于食品生產(chǎn),并規(guī)定了其在食品的最低限量值。三聚氰胺的檢測方法主要有高效液相色譜法 (HPLC)[4-6]、氣-質(zhì)聯(lián)用色譜法 (GC-MS)[7],液-質(zhì)聯(lián)用色譜法[6,8-10]和酶聯(lián)免疫吸附法[11-15]。
膠體金免疫層析技術(shù)和酶聯(lián)免疫吸附法等免疫分析技術(shù)近年來在生物各領(lǐng)域得到了越來越多的應(yīng)用。目前,已報道的酶聯(lián)免疫吸附法對實際樣品中三聚氰胺的檢測限在1.8~20 mg/L,已能滿足各種食品或飼料的檢測要求。膠體金免疫層析法 (GICA) 是近10年發(fā)展起來的一項新技術(shù),它是基于抗原抗體的特異性反應(yīng),用膠體金作為標記物。該方法操作簡單、快速、特異靈敏,不需要儀器,不需專業(yè)技術(shù)人員操作,幾分鐘內(nèi)即可通過目視判斷檢測結(jié)果,并可保持檢測結(jié)果,比酶聯(lián)免疫吸附法操作更簡單,更適合在現(xiàn)場應(yīng)用。因此在食品安全及醫(yī)學(xué)檢驗領(lǐng)域有廣泛的應(yīng)用[16-19]。本試驗制備的三聚氰胺膠體金檢測試紙條,為食品中三聚氰胺殘留水平監(jiān)測提供了便捷的方法,該試紙條具有較高的特異性、敏感性,而且操作簡單,具有很好的應(yīng)用前景。
三聚氰胺 (純度98.5%) 購自上海凌峰化學(xué)試劑有限公司;羊抗鼠IgG、氯金酸和檸檬酸三鈉購自 Sigma公司;硝酸纖維素膜 (簡稱 NC膜)分別購自Sartorius公司 (CN140)、Millipore公司 (M135) 和 Whatman公司 (Puraband impuraband);玻璃纖維素膜購自Millipore公司;PVC底板、W-8濾紙與 MF-11吸水紙購自Whatman公司;其他試劑為國產(chǎn)分析純。三聚氰胺單克隆抗體 (1B12,IC50=8.3 mg/L) 和包被抗原MEL-OVA本實驗室制備[20-21]。
純牛奶 (伊利)、脫脂奶粉 (伊利) 與寵物飼料樣品 (均經(jīng)HPLC檢測,為陰性),均購自杭州下沙物美超市。試驗中簡稱為牛奶、奶粉和飼料。
ARISTA-Q5切割機和ARISTA-XZ100平臺系統(tǒng),均購自美國 Arista公司;恒溫干燥箱DHG-9146A,購自上海秦邁儀器有限公司;除濕機購自日本川井公司;紫外可見分光光譜儀,Shimadzu UV-2501PC;三重四級桿串聯(lián)質(zhì)譜儀,Waters Alliance 2695。
采用檸檬酸三鈉還原法制備膠體金溶液:取0.01%氯化金溶液100 mL攪拌加熱至沸騰,迅速加入2.5 mL 1%檸檬酸三鈉水溶液,繼續(xù)攪拌煮沸20 min,直至溶液呈透亮狀,停止加熱;室溫冷卻,用超純水恢復(fù)到原體積,4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
膠體金質(zhì)量采用紫外掃描鑒定:膠體金溶液進行400~600 nm紫外掃描,觀察最大吸收峰的峰形和峰寬。
室溫下,將10 mL用0.1 mol/L K2CO3調(diào)pH為8.2的膠體金溶液加入50 mL燒杯中,邊攪拌邊逐滴加入 2 mL用 0.01 mol/L PBS稀釋為0.1 g/L的純化三聚氰胺單克隆抗體 (1B12) 溶液;繼續(xù)攪拌標記反應(yīng)10 min后,逐滴加入2 mL 5% BSA溶液,繼續(xù)攪拌10 min。采用高速離心法純化金標抗體,將上述金標抗體溶液常溫低速(1 831′g離心20 min,棄沉淀,取紅色上清夜4 ℃下10 989′g離心40 min;將中層可流動的暗紅色沉淀轉(zhuǎn)移到另一新離心管中,用含 1% BSA的0.01 mol/L的PBS混懸至原量;平衡過夜,4 ℃下10 989′g離心40 min,中層可流動的暗紅色沉淀轉(zhuǎn)移到另一新離心管中,用含1% BSA與0.02% NaN3的0.01 mol/L的PBS混懸為原體積的1/10~1/40,4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
采用紫外掃描對金標抗體質(zhì)量進行鑒定,400~600 nm紫外掃描,通過觀察最大吸收峰的峰形和峰寬的完整性來判斷金標抗體質(zhì)量的好壞。
選擇了 Sartorius、Millipore和 Whatman三種 NC膜進行包被抗原 MEL-OVA (檢測線,1 000 mg/L) 和羊抗鼠IgG (質(zhì)控線,1 000 mg/L)的包被試驗,用PBS及其添加100 mg/L、200 mg/L三聚氰胺標準品的樣品進行測試,選擇出線快、清晰與靈敏度達到要求的NC膜進行后續(xù)試驗。
1.6.1 膠體金標記抗體噴膜量的選擇
制備的膠體金標記 MEL單克隆抗體 1B12 mAb用0.01 mol/L的PBS稀釋10倍后,分別按每1 cm2玻璃纖維素膜噴涂20 μL、40 μL和60 μL體積進行噴膜,干燥后分別組裝試紙條;用PBS及其添加50 mg/L、100 mg/L、150 mg/L三聚氰胺標準品的樣品稀釋液進行測試,選擇最佳噴膜量。
1.6.2 NC膜包被抗原包被量的選擇
包被抗原MEL-OVA稀釋成1 500 mg/L、1 200 mg/L和1 000 mg/L分別在NC膜檢測線上劃線,質(zhì)控線上均用1 000 mg/L的羊抗鼠IgG進行劃線,干燥后分別組裝試紙條;用樣品稀釋液及其添加50 mg/L、100 mg/L三聚氰胺標準品的樣品稀釋液進行測試。
采用0.01 mol/L PBS (pH 7.0)、0.01 mol/L PBS (pH 7.5)、0.01 mol/L TBS (pH 8.5) 對樣品墊進行前處理,組裝試紙條,分別用pH值約為7.0陰性液體純牛奶樣品及其添加50 mg/L、100 mg/L三聚氰胺標準品的樣品進行測試,選擇樣品墊最佳處理方式。
1.8.1 試紙條制備與組裝
用ARISTA-XZ1000平臺系統(tǒng)在NC膜檢測線與質(zhì)控線分別噴上最佳包被量的包被抗原MEL-OVA與1 000 μg/mL的羊抗鼠IgG,在玻璃纖維素膜噴上最佳噴金量的膠體金標記MEL單克隆抗體1B12;NC膜和玻璃纖維素膜于烘箱中37 ℃干燥24 h,均置于干燥的容器中存放備用。依次搭接地粘貼吸水紙、樣本墊、玻璃纖維素膜和NC膜于PVC粘性底板上,ARISTA試紙條切刀機切割成一定尺度的試紙條,裝入檢測卡中,再裝入一袋干燥劑、封口,室溫保存。如圖1為試紙條組裝模式圖。
圖1 試紙條組裝模式圖Fig. 1 Cross-section of immunochromatographic strip.
1.8.2 最低檢測限測試
PBS中分別添加0 mg/L、5 mg/L、10 mg/L、25 mg/L、50 mg/L、100 mg/L和200 mg/L的三聚氰胺標準品,以PBS為對照,分別用優(yōu)化條件制備的試紙條進行測試,共對3個批次進行2個重復(fù)試驗。
1.8.3 實際樣品添加測試
陰性樣品中添加三聚氰胺標準品,采用組裝的試紙條進行測試。1) 牛奶樣品:直接添加三聚氰胺標準液到陰性純牛奶中,使三聚氰胺的添加濃度依次為:0 mg/L、50 mg/L、100 mg/L和200 mg/L;2) 奶粉:先將奶粉溶于水中,再添加三聚氰胺標準液于奶粉溶液中,使三聚氰胺的添加濃度依次為:0 mg/L、50 mg/L、100 mg/L和200 mg/L;3) 飼料:先將飼料溶于水中,再添加三聚氰胺標準液于飼料溶液中,使三聚氰胺的添加濃度依次為:0 mg/L、100 mg/L、200 mg/L和500 mg/L。
1.8.4 與LC-MS/MS比對試驗
1) 液相色譜條件:色譜柱:Waters xBridge HILIC 柱 (4.6 mm×150 mm,i.d.,3.5 μm);柱溫:30 ℃;進樣量:20 μL;流速:0.4 mL/min;流動相:20 mmol/L 甲酸銨:乙腈=8:2。
2) 質(zhì)譜條件:采用電噴霧離子源 (ESI),正離子模式采集,離子源溫度為110 ℃,脫溶劑溫度為350 ℃,脫溶劑氣和錐孔氣為N2,脫溶劑流速為600 L/h,光電倍增器電壓為650 V,毛細管電壓為3.0 kV,萃取電壓為2.0 V;碰撞氣為高純氬氣,碰撞室壓為3×105Pa;監(jiān)測模式采用MRM 多反應(yīng)監(jiān)測方式,離子對為 m/z:127.2/85.1、127.2/68.1,其中m/z =127.2/85.1為定量離子對,離子對駐留時間為100 ms。
3) 樣品處理:精確量取或稱取試樣2 mL或2 g于50 mL離心管,加入19 mL水-乙腈 (1:1,V/V) 和1 mL飽和乙酸鉛溶液,混勻超聲波提取15 min,10 000 r/min離心10 min,取上清液5 mL并加入0.2 mL甲酸充分混勻后過MCX固相萃取小柱,用6 mL乙腈淋洗,5 mL 5%氨水/甲醇溶液洗脫,60 ℃下氮氣吹干,用0.1 mL 20 mmol/L乙酸銨溶液溶解后,加入0.9 mL乙腈充分混勻后,過0.22 μm濾膜后上機測定。
陰性牛奶與奶粉樣品中添加三聚氰胺標準品,使?jié)舛冗_到w1mg/L (w1=50+10 n,n=0,1,2, 3….),陰性飼料樣品中添加三聚氰胺標準品,使?jié)舛冗_到w2mg/L (w2=100+20 n,n=0,1,2,3….),分別用 LC-MS/MS法和本研究的試紙條對每個濃度的樣品測試5次。
將制作好的三聚氰胺試紙條每5條裝入1包鋁箔袋中,加干燥劑密封,放置60 ℃烘箱中,每隔1天取出1包 (5條) 分別用3個陰性樣本和2個陽性樣本 (添加200 mg/L、400 mg/L三聚氰胺標準品的樣本) 進行測試進行試紙條保存期試驗,觀察檢測線的變化。
采用紫外掃描鑒定,膠體金溶液進行400~600 nm紫外掃描,觀察最大吸收峰的峰形和峰寬。從圖2可看出,A1與A2瓶膠體金溶液質(zhì)量比A3、A4好,計算出A1-A4的膠體金金顆粒直徑分別約為15、40、60、80 nm。以下試驗采用A2膠體金進行。
圖2 制備的膠體金溶液實物圖及紫外掃描圖Fig.2 Exterior appearance and UV absorbance spectra of colloidal gold solution. (A) Preparation of colloidal gold solution. 1: 1.0 mL; 2: 1.5 mL; 3: 2.0 mL; 4: 2.5 mL. (B) The UV absorbance spectra of different colloidal golds. A1: 519.20 nm; A2: 525.00 nm; A3: 539.40 nm; A4: 594.80 nm.
從圖3可看出,獲得的金標抗體用0.01 mol/L的PBS稀釋50倍后進行紫外掃描,最大吸收峰具有很好的峰形和峰寬,說明標記的膠體金抗體顆粒大小適中且均一,表示金標抗體質(zhì)量好,可用于后續(xù)研究。
選擇了Sartorius、Millipore和Whatman三種 NC膜進行包被抗原 MEL-OVA (檢測線,1 000 μg/mL) 和 羊 抗 鼠 IgG (質(zhì) 控 線 ,1 000 μg/mL) 的包被試驗,用PBS及其添加100、200 ng/mL三聚氰胺標準品的樣品進行測試,結(jié)果如圖4。綜合考慮膜的層析速度、檢測線與質(zhì)控線的顯色情況、最低檢測限與成本等因素,選擇Whatman的NC膜。
制備的膠體金標記MEL抗體用0.01 mol/L的PBS稀釋10倍后,分別按每1 cm2玻璃纖維素膜噴涂20、40、60 μL體積進行噴膜,干燥后分別組裝試紙條;用樣品稀釋液及其添加50 mg/L、100 mg/L、150 mg/L三聚氰胺標準品的PBS進行測試。從圖5可看出,噴膜量為60 μL/cm2效果最佳。
圖3 金標MEL抗體紫外掃描圖Fig.3 UV absorbance spectra of gold-antibody.
圖4 不同NC膜制作的試紙條效果圖Fig.4 The graph of strip produced by different NC membranes. (A) 0 mg/L (PBS). (B) 100 mg/L. (C) 200 mg/L. 1,2: Millipore NC membranes; 3,4: Whatman NC membranes; 5,6: Sartorius NC membranes. Amount added: C: control line; T: detection line.
包被抗原MEL-OVA稀釋成1 500 mg/L、1 200 mg/L和1 000 mg/L分別在NC膜檢測線上劃線,質(zhì)控線上均用1000 μg/mL的羊抗鼠IgG進行劃線,干燥后分別組裝試紙條;用樣品稀釋液及其添加50 mg/L、100 mg/L三聚氰胺標準品的樣品稀釋液進行測試。從圖6可看出,包被抗原MEL-OVA為1200 mg/L時效果最佳。
圖5 不同膠體金標記抗體噴膜量試紙條效果圖Fig.5 The graph of strip produced by different gold-antibodies. (A) PBS. (B) 50 mg/L. (C) 100 mg/L. (D) 150 mg/L. 1: 60 μL/cm2; 2: 40 μL/cm2; 3: 20 μL/cm2.
圖6 不同包被抗原包被量試紙條效果圖Fig.6 Graph of strip produced by different volumes of coating antigen. (A) PBS. (B) 50 mg/L. (C) 100 mg/L. 1: 1 500 mg/L; 2: 1 200 mg/L; 3: 1 000 mg/L.
采用0.01 mol/L PBS (pH 7.0)、0.01 mol/L PBS (pH 7.5)、0.01 mol/L TBS (pH 8.5) 對樣品墊進行前處理,組裝試紙條,分別用pH值約為7.0陰性液體純牛奶樣品及其添加 50 ng/mL、100 ng/mL三聚氰胺標準品的樣品進行測試。結(jié)果表明用0.01mol/L PBS (pH 7.5) 進行樣品墊前處理具有較好的效果,對金標記物與抗原/抗體的結(jié)合起穩(wěn)定的作用,同時也改變樣品 pH值是整個系統(tǒng)達到穩(wěn)定;同時可以使最低檢測限得到優(yōu)化 (圖7)。
在上述研究基礎(chǔ)上,確定三聚氰胺膠體金免疫層析試紙條的研制材料選擇及工藝參數(shù)選擇如下:NC膜,Whatman;膠體金標記三聚氰胺單克隆抗體噴膜量為 60 μL/cm2;包被抗原MEL-OVA包被量為1200 mg/L;二抗 (質(zhì)控線)包被量為1 000 mg/L;0.01 mol/L PBS (pH 7.5)進行樣品墊前處理。按此參數(shù)生產(chǎn)一批試紙條,進行檢出限、實際樣品加標、比對測試與保存期試驗。
圖7 樣品墊前處理試驗Fig.7 The test of sample pad pre-treatment. (A) PBS. (B) 50 mg/L. (C) 100 mg/L. 1: treatment by 0.01 mol/L PBS (pH 7.0); 2: treatment by 0.01 mol/L PBS (pH 7.5); 3: treatment by 0.01 mol/L TBS (pH 8.5); 4: no treatment.
2.7.1 最低檢測限試驗
試驗結(jié)果如圖8所示,隨著MEL添加濃度的增大,檢測線的顏色逐漸變淡,直至消失,在MEL添加濃度為50 mg/L時,檢測線已經(jīng)很難辨別,表明試紙條對三聚氰胺的最低檢測限可達到
50 mg/L。
2.7.2 實際樣本檢測試驗
HPLC檢測陰性牛奶、奶粉與飼料樣品中添加三聚氰胺標準品,采用組裝的試紙條進行測試。由圖9可見,試紙條在牛奶、奶粉和飼料中的肉眼可視最低檢測限分別為 100 mg/L、100 ng/g和200 ng/g。
圖8 MEL膠體金試紙條最低檢測限圖Fig.8 LOD of test trip for detecting melamine.
圖9 膠體金試紙條法測定牛奶、奶粉和飼料中的三聚氰胺Fig.9 The result of detecting melamine in milk, milk powder and feed. (A) Milk, melamine concentration (mg/L): 0, 50, 100 and 200. (B) Milk powder, melamine concentration (ng/g): 0, 50, 100 and 200. (C) Feed, melamine concentration (ng/g): 0, 100, 200 and 500.
2.7.3 LC-MS/MS法與CGIA檢測牛奶中三聚氰胺含量的比對
分別應(yīng)用兩種方法對不同濃度的樣品測試5次,主要結(jié)果見表1。牛奶與奶粉樣品中的MEL添加量為50 ng/g時,LC-MS/MS法能檢出,且回收率良好,而試紙條對牛奶與奶粉樣品中的MEL肉眼可視最低檢測限為 100 ng/g,不能檢出;牛奶與奶粉樣品中的MEL添加量不小于為100 ng/g時,LC-MS/MS法和試紙條均能檢出。而飼料樣品中的 MEL添加量為 100 ng/g時,LC-MS/MS法能檢出,且回收率良好,而試紙條對飼料樣品中的 MEL肉眼可視最低檢測限為200 ng/g,不能檢出;添加量不小于200 ng/g時,LC-MS/MS法和試紙條均能檢出。此結(jié)果表明,試紙條檢測結(jié)果與 LC-MS/MS法具有很高的符合率。
表1 LC-MS/MS法和金標法檢測MEL的對比試驗 (n=5)Table 1 The comparison test of melamine by LC-MS/MS and ICA (n=5)
2.7.4 試紙條保存期測試
保存期加速實驗結(jié)果如表2所示,表明60 ℃條件下可保存12 d。根據(jù)試紙條保存期經(jīng)驗:膠體金免疫層析試紙條60 ℃下穩(wěn)定1 d,相當于常溫干燥環(huán)境下可保質(zhì)1個月??赏普?,三聚氰胺膠體金免疫層析試紙條常溫干燥環(huán)境下至少可保質(zhì)6個月。
表2 三聚氰胺試紙條保質(zhì)期實驗Table 2 Experiment of shelf life for melamine test strip
基于抗原抗體結(jié)合原理的免疫分析技術(shù)以其特異、便捷、快速的優(yōu)點,在小分子有害殘留監(jiān)測中被廣泛應(yīng)用。目前針對三聚氰胺的免疫分析技術(shù)也有報道,主要為酶聯(lián)免疫吸附法和膠體金免疫層析法。其中介紹三聚氰胺的 ELISA檢測法主要為論文,研制方法詳盡;介紹三聚氰胺膠體金免疫層析法主要為專利[22-24],還處于知識產(chǎn)權(quán)保護中。
在本研究中,詳細介紹了MEL膠體金免疫層析檢測試紙條的研制過程:NC膜、金標三聚氰胺抗體噴膜量、包被抗原 (檢測線) MEL-OVA包被量和二抗 (質(zhì)控線) 包被量的工藝參數(shù)為:硝酸纖維素膜采用Whatman NC膜、膠體金標記MEL單克隆抗體最佳噴膜量為60 μL/cm2、包被抗原MEL-OVA最佳包被量為1200 mg/L、樣品墊采用0.01 mol/L PBS (pH 7.5) 進行前處理。三聚氰胺膠體金試紙條肉眼可視最低檢測限為50 mg/L;試紙條在牛奶、奶粉和飼料中的肉眼可視最低檢測限分別為 100 mg/L、100 ng/g和200 ng/g,與LC-MS/MS法比對,具有較高的準確性;試紙條常溫干燥環(huán)境下可保質(zhì)6個月。能夠檢測出三聚氰胺含量大于50 mg/L的樣品,適用于現(xiàn)場實際樣品三聚氰胺殘留水平監(jiān)測,為三聚氰胺膠體金免疫層析檢測試紙條的研制及產(chǎn)品化提供了參考,具有良好的應(yīng)用前景。
REFERENCES
[1] Wang YJ. Raw Material of Organic Chemicals. Beijing: Chemical Industry Press, 2004: 727–728.王延吉. 有機化工原料. 北京: 化學(xué)工業(yè)出版社, 2004: 727?728.
[2] Lang L. FDA issues statement on diethylene glycol and melamine food contamination. Gastroenterology, 2007, 133(1): 5?6.
[3] Ingelfinger J R. Melamine and the global implications of food contamination. N Engl J Med, 2008, 359(26): 2745?2748.
[4] Sugita T, Ishiwata H, Yoshihira K, et al. Determination of melamine and three hydrolytic products by liquid chromatography. Bull Environ Contam Toxicol, 1990, 44(4): 567?571.
[5] Mniiz VR, Cbballos SG, Rosales MD, et al. Method development and validation for melamine and its derivatives in rice concentrates by liquid chromatography. Application to animal feed samples. Anal Bioanal Chem, 2008, 392(3): 523?531.
[6] Yu H, Tao YF, Chen DM, et al. Development of a high performance liquid chromatography method and a liquid chromatography-tandem mass spectrometry method with pressurized liquid extraction for simultaneous quantification and confirmation of cyromazine, melamine and its metabolites in foods of animal origin. Anal Chim Acta, 2010, 682(1/2): 48?58.
[7] FDA/ORA. Forensic Chemistry Center GC-MS screen for the presence of melamine and cyanuric acid[EB/OL]. [2007-04-10]. http://www.fda.gov/ cvm/Melamine Presence.htm.
[8] Vail T, Jail PR, Sparkman OD. Rapid and unambiguous identification of melamine in contaminated pet food based on mass spectrometry with four degrees of confirmation. J Anal Toxicol, 2007, 31(6): 304?312.
[9] Filigenzi MS, Puschner B, Aston LS, et al. Diagnostic determination of melamine and related compounds in kidney tissue by liquid chromatography/tandem mass spectrometry. J Agric Food Chem, 2008, 56(17): 7593?7599.
[10] Varelis P, Jeskelis R. Preparation of [(13)C(3)]-melamine and (13)C(3)]-cyanuric acid and their application to the analysis of melamine and cyanuric acid in meat and pet food using liquid chromatography-tandem mass spectrometry. Food Addit Contam Part A Chem Anal Control Expo Risk Assess, 2008, 25(10): 1208?1215.
[11] Garber EAE. Detection of melamine using commercial enzyme-linked immunosorbent assay technology. J Food Prot, 2008, 71(3): 590?594.
[12] Choi JH, Kim YT, Lee JH. Rapid quantification of melamine in milk using competitive 1, 10-oxalyldiimidazole chemiluminescent enzyme immunoassay. Analyst, 2010, 135(9): 2445?2450.
[13] Wang ZY, Ma X, Zhang LY, et al. Screening and determination of melamine residues in tissue and body fluid samples. Anal Chim Acta, 2010, 662(1): 69?75.
[14] Zhu K, Li JC, Wang ZH, et al. Simultaneous detection of multiple chemical residues in milk using broad-specificity antibodies in a hybrid immunosorbent assay. Biosens Bioelectron, 2010, 26(5): 2716?2719.
[15] Tang MJ, Zhang H, Zheng XY, et al. Rapid detection of melamine in different matrixes of food samples by ELISA. Chin J Food Hyg, 2010, 22(4): 340?343.湯慕瑾, 張恒, 鄭曉燕, 等. 酶聯(lián)免疫吸附法快速測定不同樣品基質(zhì)中三聚氰胺. 中國食品衛(wèi)生雜志, 2010, 22(4): 340?343.
[16] Zhang MZ, Wang MZ, Chen ZL, et al. Development of a colloidal gold based lateral-flow immunoassay for the rapid simultaneous detection of clenbuterol and ractopamine in swine urine. Anal Bioanal Chem, 2009, 395(8): 2591?2599.
[17] Wang TC, Zhang T, Yang ST, et al. Preparation and application of a colloidal gold strip to detect the rabies antibody. Chin J Biotech, 2011, 27(5): 799?804.王鐵成, 張濤, 楊松濤, 等. 狂犬病病毒抗體膠體金檢測試紙的制備. 生物工程學(xué)報, 2011, 27(5): 799?804.
[18] Zhang JY, Zhang Y, Wang S. Rapid detection of sulphamethazine residues in pig muscle and milk by colloidal gold-based immumochromatographic assay. J Chin Inst Food Sci Technol, 2010, 10(1): 181?185.張佳宜, 張燕, 王碩. 膠體金免疫層析法快速檢測豬肉及牛奶中磺胺二甲嘧啶殘留. 中國食品學(xué)報, 2010, 10(1): 181?185.
[19] Lin T, Shao JJ, Cong GZ, et al. Establishment of colloidal gold-immunochroma-togrphy assay strip for detection of type Asial foot-and-mouth disease virus. Chin J Biotech, 2009, 25(5): 767?772.林彤, 邵軍軍, 叢國正, 等. Asial型口蹄疫病毒膠體金免疫層析檢測方法的建立. 生物工程學(xué)報, 2009, 25(5): 767?772.
[20] Gong YF, Wang WF, Zhang MZ, et al. Preparation of artificial antigen of melamine and polyclonal antibody. China Univ Metrol, 2011, 22(1): 73?79.龔云飛, 王維芬, 張明洲, 等. 三聚氰胺人工抗原及多克隆抗體的制備. 中國計量學(xué)院學(xué)報, 2011, 22(1): 73?79.
[21] Wang MZ, Ying YF, Gong YF, et al. Preparation and identification of anti-melamine monoclonal antibody. J Anhui Agric Sci, 2012, 40(5): 2574?2576.王旻子, 應(yīng)永飛, 龔云飛, 等. 三聚氰胺單克隆抗體制備與鑒定. 安徽農(nóng)業(yè)科學(xué), 2012, 40(5): 2574?2576.
[22] Qian JH,Liao YY. Establishment of colloidal gold-immunochromatogrphy assay strip for detecting melamine: CN, 200910060513, 2009-01-14.錢金宏, 廖園園. 三聚氰胺膠體金免疫層析檢測試紙及制備方法: CN, 200910060513, 2009-01-14.
[23] He FY, Wan YP, Feng CW, et al. A special test strip for detecting melamine: CN, 200810240316.2, 2008-12-17.何方洋, 萬宇平, 馮才偉, 等. 一種檢測三聚氰胺的方法及其專用試紙: CN, 200810240316.2, 2008-12-17.
[24] Zhang SE, Sang LY, Bu LJ, et al. A colloidal gold-immunochromatogrphy assay strip for detection of melamine: CN, 201020107992.5, 2010-02-01.張少恩, 桑麗雅, 卜令杰, 等. 一種檢測三聚氰胺的免疫膠體金試劑板: CN, 201020107992.5, 2010-02-01.