鄭紀(jì)偉 韓斐斐 王 瑾 韓建國 丁志江
中國社會(huì)漸步入老齡化,牙體缺失情況越來越嚴(yán)重,隨著經(jīng)濟(jì)水平的增長及對(duì)美觀要求的提高,種植作為修復(fù)缺失牙的重要手段變得越來越重要。種植成功的關(guān)鍵在于形成良好的種植體-骨界面[1],如何獲得這種理想的種植體-骨界面結(jié)合方式,影響因素主要有種植體、成骨細(xì)胞功能和其他外在因素等。外源性細(xì)胞因子對(duì)成骨細(xì)胞的功能具有重要的調(diào)節(jié)作用,TGF-β1就是其中一類重要的多肽類生長因子。鑒于TGF-β1對(duì)于成骨細(xì)胞作用的復(fù)雜性和多樣性,以及有關(guān)TGF-β1對(duì)接種于鈦片表面的成骨細(xì)胞作用的報(bào)道相對(duì)較少,本研究采用體外實(shí)驗(yàn)的方法,探討特定濃度的TGF-β1對(duì)鈦表面成骨細(xì)胞的增殖、分化的影響。
1.1 實(shí)驗(yàn)材料和主要儀器 MC3T3-E1成骨細(xì)胞系(ATCC中心,美國);TGF-β1(Peprotech公司,英國);GAPDH引物及其它引物均由上海生工合成(見表1)。
純鈦片(Strauman公司,瑞士)TA2,直徑15mm,厚約1mm,使用噴砂機(jī)用TiO2均勻噴砂處理3min,10%鹽酸處理1min,去離子水清洗,5%碳酸氫鈉中和,去離子水清洗三次,高溫高壓消毒備用。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng)及鈦片表面細(xì)胞接種 取出凍存的成骨細(xì)胞,置42℃水浴使其快速融化。轉(zhuǎn)移至離心管,磷酸鹽緩沖液(Phosphate buffer saline,PBS)沖洗,DMEM完全培養(yǎng)液重懸。轉(zhuǎn)移至培養(yǎng)瓶,加入含10%胎牛血清的完全DMEM培養(yǎng)液,置37℃,5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待細(xì)胞長成單層后,倒掉瓶內(nèi)的培養(yǎng)液,加少許消化液,靜置5~10分鐘。倒掉消化液,制成細(xì)胞懸液,送回二氧化碳培養(yǎng)箱培養(yǎng)。將處理好的鈦片置于6孔培養(yǎng)板中,每孔六片,平鋪板底。取處對(duì)數(shù)生長期的成骨細(xì)胞,0.25%胰酶+0.02%EDTA消化,DMEM培養(yǎng)基混懸成單細(xì)胞懸液,調(diào)整細(xì)胞濃度1×105個(gè)/ml,取100ul滴種于鈦片表面,置于CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。4~6h后加入含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)液2ml,放入CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。細(xì)胞貼壁后,3d換液一次。
1.2.2 TGF-β刺激 實(shí)驗(yàn)分為實(shí)驗(yàn)組和對(duì)照組,實(shí)驗(yàn)組加入0.5ng/ml TGF-β1刺激細(xì)胞,對(duì)照組不加TGF-β1,采用酶消化法分別收集培養(yǎng)后1d,3d,7d后的細(xì)胞,每孔中六塊鈦板的細(xì)胞作為一個(gè)樣本,應(yīng)用RT-PCR檢測蛋白表達(dá)情況并做對(duì)比分析。
1.2.3 逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈反應(yīng)(RT-PCR)(1)總RNA提取:采用TRlzol試劑盒,提取總RNA,紫外分光光度計(jì)測定260nm和280nm處的OD值,檢測總RNA的純度,并做快速瓊脂糖電泳,分析RNA的完整性。(2)逆轉(zhuǎn)錄為cDNA。(3)以此為模板行PCR反應(yīng)。反應(yīng)體系為10×PCR Buffer 5μl,25mmol/L MgCl23μl,10mmol/L dNTP 1μl ,Primer1 1μl,Primer2 1μl,cDNA 3μl,5U/μl Taq DNA polymerase 0.8μl, sterilized ddH2O 35.2μl。反應(yīng)條件:94℃預(yù)變性4min后,以92℃變性40秒,按照表1中所列出的最佳退火溫度退火45秒,72℃延伸1分40秒,為一個(gè)循環(huán),共35個(gè)循環(huán),最后再于72℃延伸15min。(每樣本重復(fù)三管)(4)產(chǎn)物經(jīng)1.0%瓊脂糖電泳,并經(jīng)凝膠成像系統(tǒng)分析。
表1 引物序列、產(chǎn)物大小及退火溫度
1.2.4 成像系統(tǒng)分析及統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 體外實(shí)驗(yàn)中基因的表達(dá)量與電泳條帶的亮度成正比,以GAPDH為內(nèi)參照,Gene Ruler100bpDNA Ladder為標(biāo)記,對(duì)電泳條帶進(jìn)行圖像光密度半定量分析,RT-PCR產(chǎn)物經(jīng)1.0%瓊脂糖電泳,并經(jīng)成像系統(tǒng)分析后得到各個(gè)條帶的灰度值,用目的基因的灰度值比上內(nèi)參的灰度值就是這個(gè)基因相對(duì)表達(dá)的量,防止因細(xì)胞數(shù)目差異而造成誤差。測量和計(jì)算各組目的擴(kuò)增帶與內(nèi)參灰度值的比值,數(shù)據(jù)均以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用SPSS 11.0軟件包進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理,組間比較應(yīng)用方差分析和q檢驗(yàn)分析,P<0.05認(rèn)為差異有顯著性意義。
2.1 培養(yǎng)細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察
成骨細(xì)胞鋪板后24h,大部分細(xì)胞貼壁,呈紡錘形,大部分細(xì)胞帶有突起,數(shù)目和長短不一,且形成分散的集落,大小不等,融合后呈復(fù)層生長(見圖1)。
2.2 TGF-β1刺激后OC、BSP、COL-I和內(nèi)參在不同培養(yǎng)時(shí)間的成骨細(xì)胞中的表達(dá)對(duì)照情況(圖2-8,表2)
外源性TGF-β1加入后,對(duì)幾種細(xì)胞因子表達(dá)影響的相對(duì)半定量分析結(jié)果如表2。由圖2-圖7可以看出,與對(duì)照組相比,實(shí)驗(yàn)組中OC、BSP和Col-I表達(dá)量均有顯著增加,且統(tǒng)計(jì)學(xué)分析組內(nèi)及組間比較P<0.05,表達(dá)量變化均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。圖8為內(nèi)參在不同時(shí)間點(diǎn)體外培養(yǎng)的成骨細(xì)胞中0.5ng/mlTGF-β刺激前后的表達(dá)對(duì)照情況,1-6泳道中均可見大小約250bp左右的電泳條帶,與設(shè)計(jì)的片段大小基本一致。凝膠成像系統(tǒng)光密度分析后可見各組內(nèi)參表達(dá)量基本一致。
表2 RT-PCR相對(duì)半定量分析TGF-β1刺激后體外培養(yǎng)的成骨細(xì)胞各個(gè)時(shí)間點(diǎn)三種細(xì)胞因子的表達(dá)結(jié)果(±s,n=9)
表2 RT-PCR相對(duì)半定量分析TGF-β1刺激后體外培養(yǎng)的成骨細(xì)胞各個(gè)時(shí)間點(diǎn)三種細(xì)胞因子的表達(dá)結(jié)果(±s,n=9)
注:每種蛋白各時(shí)間點(diǎn)之間比較,P<0.05,均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
?
種植體植入牙槽骨的機(jī)械創(chuàng)傷使周圍骨組織釋放大量生長因子,啟動(dòng)骨的修復(fù),達(dá)到種植體周圍骨性融合。成骨細(xì)胞是骨改建過程中最重要的功能細(xì)胞,同時(shí)也是種植體-骨界面形成過程中最活躍的細(xì)胞之一,在這個(gè)過程中,多種生長因子通過刺激成骨細(xì)胞的增殖和活性,對(duì)種植體周圍骨的生長起著重要的調(diào)控作用。TGF-β1就是其中重要的多肽生長因子,它的應(yīng)用能夠有效的促進(jìn)種植體的骨整合,是目前所知的作用最為復(fù)雜和多樣的生長因子,參與調(diào)控組織修復(fù)和重建,并能誘導(dǎo)成骨細(xì)胞的分化[2-3]。本研究選用鈦片模擬種植體,通過體外構(gòu)建成骨細(xì)胞模型,加入特定濃度TGF-β1刺激細(xì)胞生長,利用RT-PCR的方法,檢測不同時(shí)間TGF-β1刺激后體外培養(yǎng)的成骨細(xì)胞中幾種蛋白因子的表達(dá)情況,探討TGF-β1對(duì)鈦片表面成骨細(xì)胞增殖分化的影響,為臨床種植體的設(shè)計(jì)和應(yīng)用提供相應(yīng)的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
本實(shí)驗(yàn)細(xì)胞來自美國ATCC中心的MC3T3-E1成骨細(xì)胞系,可采用液氮冷凍等方式長期保存,經(jīng)多次傳代后其遺傳性質(zhì)及生物學(xué)特征均不發(fā)生變異,復(fù)蘇后的凍存細(xì)胞仍具有穩(wěn)定的生物學(xué)特征,因此可以為體外培養(yǎng)成骨細(xì)胞進(jìn)行分析提供基礎(chǔ)。成骨細(xì)胞是骨發(fā)生和骨形成的重要細(xì)胞,具有合成、分泌組成骨基質(zhì)的膠原和糖蛋白的作用,并通過鈣化基質(zhì)形成骨組織。在體外培養(yǎng)系統(tǒng)中的成骨細(xì)胞表型發(fā)育與其體內(nèi)發(fā)育分化有著較大的相似之處,通過酶消化法,成骨細(xì)胞在體外培養(yǎng)的情況下,重演了體內(nèi)成骨細(xì)胞從細(xì)胞增殖、細(xì)胞外基質(zhì)成熟到基質(zhì)礦化的整個(gè)過程,因而可作為一個(gè)良好的研究成骨細(xì)胞表型發(fā)育的體外模型系統(tǒng)。
鈦及鈦合金因具有優(yōu)良的生物相容性、機(jī)械性能、耐腐蝕性和較好的可加工性而成為目前臨床上應(yīng)用最廣泛的骨內(nèi)、牙植入材料。經(jīng)過適當(dāng)加工后的鈦片與成骨細(xì)胞有很好的組織相容性,能使成骨細(xì)胞貼附于鈦片表面,并在一定條件下影響成骨細(xì)胞的增殖和分化。以往對(duì)此的研究較少,所以復(fù)合鈦片后觀察對(duì)成骨細(xì)胞礦化相關(guān)蛋白表達(dá)的影響有非常大的臨床意義。
TGF-β1對(duì)骨代謝的調(diào)節(jié)作用非常復(fù)雜,在不同條件下表現(xiàn)為促進(jìn)或抑制細(xì)胞增殖的雙重調(diào)節(jié)[4-6]。成骨細(xì)胞是骨組織中合成分泌TGF-β1的主要細(xì)胞,成骨細(xì)胞通過合成分泌TGF-β1,調(diào)節(jié)其自身增殖分化和代謝,從而調(diào)節(jié)骨代謝[7]。通過預(yù)實(shí)驗(yàn),本實(shí)驗(yàn)室得到了可產(chǎn)生不同影響的TGF-β1的大致濃度。本次實(shí)驗(yàn)中所選0.5ng/ml TGF-β1可以增強(qiáng)細(xì)胞的增殖活性,增加幾種礦化相關(guān)蛋白的表達(dá),誘導(dǎo)成骨細(xì)胞分化,這符合細(xì)胞因子在低濃度下起刺激作用,而在高濃度下起抑制作用的普遍規(guī)律[8]。
骨鈣素是反映成骨細(xì)胞分化成熟的指標(biāo),它能準(zhǔn)確反映成骨細(xì)胞的成骨功能,本實(shí)驗(yàn)中選取TGF-βl為0.5ng/ml時(shí),骨鈣素分泌量增多,細(xì)胞生長旺盛,這提示,0.5ng/ml TGF-β能促進(jìn)成骨細(xì)胞形成、活性增加。BSP是礦化組織特異性的,是礦化組織分化的晚期標(biāo)志。參與細(xì)胞粘附、細(xì)胞轉(zhuǎn)移和信號(hào)識(shí)別,作為骨細(xì)胞外基質(zhì)參與骨代謝。在成骨過程中它的主要作用是作為羥基磷灰石形成的初始核心,啟動(dòng)礦化過程,在礦化開始后刺激羥基磷灰石晶體的生長。BSP的表達(dá)局限于礦化組織,是礦化組織特異性的。膠原蛋白是骨組織的主要成份,以I型膠原蛋白為主。定向分化的成骨細(xì)胞增殖分化過程中,首先表達(dá)I型膠原蛋白,I型膠原蛋白的合成在細(xì)胞增值期占主導(dǎo)地位,是成骨細(xì)胞分化擴(kuò)增晚期、基質(zhì)形成早期的產(chǎn)物,在骨形成與礦化過程中發(fā)揮重要作用[9],一般認(rèn)為 I型膠原與早期成骨分化有關(guān)[10]。另外,I型膠原蛋白是成骨細(xì)胞分泌基質(zhì)中主要的定型成分,是鈣鹽沉著和細(xì)胞附著的支架[11]。
目前雖然對(duì)TGF-β1調(diào)控成骨細(xì)胞的機(jī)制有了一定的研究,但是還應(yīng)加強(qiáng)對(duì)TGF-β1作用成骨細(xì)胞的體內(nèi)研究;同時(shí),不僅要考慮TGF-β1自身對(duì)成骨細(xì)胞的影響,也應(yīng)將TGF-β1與骨形成相關(guān)的其他細(xì)胞因子和生長因子的協(xié)同作用一并加以研究,在分子水平上探討其作用機(jī)理,探討生長因子之間的相互作用以及生物安全性等方面的問題。TGF-β1在口腔種植領(lǐng)域的應(yīng)用日益增多,為骨種植中關(guān)于骨整合的治療提供新的手段。
經(jīng)本實(shí)驗(yàn)結(jié)果對(duì)比得出:濃度為0.5ng/ml的外源性TGF-β1對(duì)鈦片表面的成骨細(xì)胞成骨相關(guān)因子表達(dá)有一定的促進(jìn)作用。
[1]巢永烈,梁 星.種植義齒學(xué)[M].北京醫(yī)科大學(xué)出版社,1999:24:37
[2]張慶詩,劉洪臣.骨生長因子在種植修復(fù)中的應(yīng)[J].中華老年口腔醫(yī)學(xué)雜志,2003,1(2):103-105
[3]寧江海,劉洪臣,龍建銀,等.擬TGF-β樣多肽對(duì)于成骨細(xì)胞作用的研究[J].口腔頜面修復(fù)學(xué)雜志,2000,1(1):36-39
[4]Lind M,Deleuran B,Thestrup-Pedersen K,et al.Chemotaxis of human osteoblasts.Effects of osteotropic growth factors[J].APMIS,1995,103(2):140-146
[5]Strong DD,Wengedal JE, Beachler,et al.Transforming growth factor beta increases type I collagen message in cultured normal human bone cells[J].FASEB J,1998, (2):A842-844
[6]Cheifetz S,Li IW,McCulloch CA,et al.Influence of osteogenic protein-1(OP-I,BMP-7)and transforming growth factor-beta 1 on bone formation in vitro[J].Connect Tissue Res,1996,35(1-4):71-78
[7]盧衛(wèi)忠,唐康來,楊 柳,等.TGF-β對(duì)成骨細(xì)胞的作用[J].第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報(bào),2000,22(1):99-102
[8]楊貴貞.免疫生物工程綱要與技術(shù)[M].長春:吉林科技出版社出版,1991:28-37
[9]Maureen PL,Janet LS,Gary SS,et al.The influence of type 1 collagen on the development and maintenance of the osteoblast phenotype in primary and passaged rat calvarial osteoblast:modification of expression of genes supporting cellgrowth,adhesion and extracellular matrix mine ralization[J].Experimental Cell Research, 1995, 216(1):35-45
[10]Balcerzak M,Hamade E, Zhang L,et al.The roles of annexinsand alkaline phosphatase in mineralization precess[J].Acta Biochim Pol,2003,50(4):1119-1130
[11]Bosshardt DD,Zalzal S,Mckee MD,et al.Develop mental appearance and distribution ofbone sialoprotein and osteopontin in human and rat cenentum[J].AnatRes,1998,250(1):13-33