標本溶血對臨床常規(guī)生化檢驗結果的影響及對策

楊振東 姚文思

標本溶血是日常臨床生化檢驗中血液標本要求拒收的最重要的一個原因。當抽血過快、試管不潔、血液流入試管時產生大量泡沫、水浴溫度高、過度振蕩以及離心血清時過快等原因會使紅細胞破壞，引起溶血［1］。從而標本因為含有紅細胞內容物而影響檢驗結果。但就溶血對臨床生化結果的影響并沒有一個全面明確的評估，所以對本院2011年3月至6月在門診進行健康體檢的60例正常人的血液標本進行溶血前后兩次檢測，進行對比，結果表明溶血對大部分臨床檢驗結果的影響較大。所以要重視標本溶血的預防，減少其對臨床生化檢驗結果的影響，提高臨床檢驗的可靠性和準確性。現報告如下。

1 資料與方法

1.1 標本來源 選用的60例研究對象為2011年3月至2011年6月期間，隨機抽取的在本院門診進行健康體檢的正常人的空腹靜脈血8 ml，分裝入兩支試管，各4 ml，一支馬上進行檢測，另一支凍結30 min后再融化檢測。以離心后無脂濁、黃疸、溶血為納入標準。

1.2 試劑與儀器 檢測所用試劑均由四川邁克生物科技股份有限公司提供。全自動生化分析儀型號是ci16000，由美國鴉培公司提供。

1.3 方法 采用全自動生化分析儀檢測選擇的60例體檢者的120例血清中的總膽紅素(TBIL)、直接膽紅素(DBIL)、總蛋白(TP)、白蛋白(ALB)、總膽固醇(TC)、甘油三酯(TG)、肌酸激酶(CK)、谷氨酰轉肽酶(GT)、谷丙轉氨酶(ALT)、谷草轉氨酶(AST)、堿性磷酸酶(ALP)、酸性磷酸酶(ACP)、α-羥丁酸脫氫酶(α-HBDH)、鈣(Ca)、無機磷(IP)、尿素氮(BUN)、肌酐(Cr)、尿酸(UA)、葡萄糖(GLU)含量，并進行比較。

1.4 統(tǒng)計學方法 全部數據用SPSS 13.0統(tǒng)計軟件進行處理，數據以“±s”表示，采用配對資料秩和檢驗的統(tǒng)計方法進行分析。

2 結果

血液生化檢驗指標在溶血前后的測定值及比較結果：TBIL、DBIL、TP、ALB、CK、GT、ALT、AST、ALP、ACP、α-HBDH、UA、GLU的值溶血前后差異有統(tǒng)計學意義(P＜0.01);TC、TG、IP的值溶血前后差異有統(tǒng)計學意義(P＜0.05);BUN、Cr、Ca的值前后差異無統(tǒng)計學意義(P＞0.05)。見表1、表2、表 3(所有單位均采用國際標準單位)。

表1 溶血前后有非常顯著差異的血液生化檢驗指標(±s)

表1 溶血前后有非常顯著差異的血液生化檢驗指標(±s)

項目 溶血前 溶血后 秩和檢驗T值 P值＜0.01 DBIL 3.12±0.89 11.23±5.12 T小=0 P＜0.01 TP 71.51±8.10 78.24±13.68 T小=2.5 P＜0.01 ALB 41.56±5.35 44.87±8.65 T小=7 P＜0.01 CK 29.75±6.32 43.69±5.13 T小=0 P＜0.01 GT 40.35±3.12 68.78±6.58 T小=0 P＜0.01 ALT 22.57±1.45 40.53±5.36 T小=0 P＜0.01 AST 24.71±8.69 45.68±11.45 T小=0 P＜0.01 ALP 49.25±16.59 77.51±19.13 T小=0 P＜0.01 ACP 3.86±1.68 2.14±1.14 T小=23 P＜0.01 α-HBDH 119.35±26.59 243.47±31.25 T小=0 P＜0.01 UA 285.21±113.45 389.41±121.53 T小=16 P＜0.01 GLU 4.19±1.02 3.01±0.62 T小=0 P TBIL 10.89±4.12 30.52±8.45 T小=0 P＜0.01

表2 溶血前后有顯著差異的血液生化檢驗指標(±s)

表2 溶血前后有顯著差異的血液生化檢驗指標(±s)

項目 溶血前 溶血后 秩和檢驗T值 P值TC 3.54±1.12 3.89±1.04 T小=45.5 0.01＜P ＜0.05 TG 1.022±0.29 1.063±0.12 T小=43.5 0.01＜P＜0.05 IP 1.051±0.199 1.096±0.268 T小=37.5 0.01＜P ＜0.05

表3 溶血前后無顯著差異的血液生化檢驗指標(±s)

表3 溶血前后無顯著差異的血液生化檢驗指標(±s)

項目 溶血前 溶血后 秩和檢驗T值 P值BUN 4.54±1.32 4.65±1.04 T小=66 P ＞0.05 Cr 68.56±20.29 71.63±21.12 T小=83.5 P＞0.05 Ca 2.051±0.179 2.096±0.168 T小=77.5 P＞0.05

3 討論

臨床生化檢驗結果是否能真實反應患者的實際狀況十分重要。溶血是最常見也是最主要的影響臨床生化檢驗的諸多干擾和影響因素之一，溶血［2］一般分為體內溶血和體外溶血：體內溶血的原因有人工心臟瓣膜或大血管手術后、惡性瘧和藥物毒性反應等;而體外溶血的原因有抽血時負壓過大、機械性振蕩、水浴溫度高、突然低溫冷凍、血樣接觸表面活性劑、遺傳病引起紅細胞脆性增加等。由于一些物質在紅細胞內外的含量有差異，故一旦紅細胞破裂，其細胞內的成分勢必進入血清，對生化指標造成影響［3］，但究竟對生化指標分別有什么樣的影響還沒有明確。發(fā)現標本溶血，應立即采取相應的補救措施。如從方法學上對輕度溶血標本結果進行較正，建立較精密的控制程序，通過對統(tǒng)一發(fā)放的質控品進行測定評價測定結果的準確度和可比性。

為減少誤差，提高檢驗結果的準確性，一定要注意溶血的原因分析和對策［4］，在采血、檢驗過程中必須注意：壓脈帶不可扎得過緊過久;注射器針頭不能用酒精消毒，在皮下反復穿刺3次以上，過度損傷組織，抽出的血液帶針頭將血液注入試管，或注入試管時用力過猛、速度過快以免血泡過多引起血細胞破裂;溶血會引起臨床常用生化指標的誤差，為提高檢驗結果的準確性，減少失誤和誤差，應采取相應的措施，一旦發(fā)現溶血標本，應主動與臨床聯系，建議重新采集標本。因此，在標本的采集、運送、分離和檢測過程中應盡量避免人為原因造成的溶血，以避免不必要的醫(yī)療糾紛，提高醫(yī)療質量。綜上所述，可以看出，溶血可以影響生化檢驗的結果，在檢驗過程中應盡量避免溶血，妥善處理和保存標本，嚴格把握質量關［5］。減少誤差，提高檢驗結果的準確性非常重要。

標本溶血應立即采取相應的補救措施。如從方法學上對輕度溶血標本結果進行較正，如規(guī)范化抽血步驟，建立一個較精密和敏感的控制程序，通過對統(tǒng)一發(fā)放的質控品進行測定評價實驗室測定結果的準確度和可比性。可以通過制定操作技術標準化來實現細胞外溶血：抽血器和容器必須干燥潔凈，盡量用一次性抽血器;不用或短時間使用止血帶;不宜過快，以免產生大量的泡沫［6］;抽血后取下針頭再將血液沿試管口壁徐徐注入容器內;若用血漿應輕輕倒轉容器與抗凝劑混勻，切勿用力振搖;采集后的血標本應立刻送檢，不宜超過2 h;血清或血漿與血細胞應在采血后盡快分離，不宜超過2 h，一般血標本室溫放置30～60 min或37℃水浴30 min，標本離心前自行凝集，不用器物剝離血塊;離心機轉數控制在1000～2000 rpm，離心5～10 min;血標本不能直接放入冷凍室，避免融化后溶血［7］。

［1］邢培青，劉玉振.實用輸血檢驗.鄭州大學出版社，2001：7-8．

［2］劉樹文，渠建軍，鞏秀麗.溶血標本對實驗結果的影響.中華醫(yī)學全科雜志，2003，2(4)：46．

［3］Tietz NW，Fineley PR.Clinical guide to laboratoryphia：WB Saunders Co，1993：20，70，20，205，310．

［4］張麗霞.臨床化學檢驗血液標本的采集和處理.中華檢驗醫(yī)學雜志，2000，23(4)：251-252．

［5］Carraro P，Servidio G，Plebani M.Hemolyzed specimens：a reason for ejection or a clinical challenge．Clin Chem，2000，46：306-307．

［6］Rafmeyer D，Bondon M，Manchon M，et al.The influence of bilirubin，haemolysis and turbidity on 20 analytical tests performed onautomatic analysers.Results of an interlaboratory study.Eur J Clin Chem Clin Biochem，1995，33：31-52．

［7］Lippi G，Salvagno GL，Montagnana M，et al.Influence of hemolysison routine clinical chemistry testing.Clin Chem Lab Med，2006，44(3)：311-316．