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    SLE患者骨髓間充質干細胞生物學特性的研究

    2011-08-13 06:20:28葉艷芬譚國珍曾凡欽
    中國實用醫(yī)藥 2011年29期
    關鍵詞:傳代梭形貼壁

    葉艷芬 譚國珍 曾凡欽

    骨髓間充質干細胞(Marrow Mesenchymal Stem Cells,MSC)具有高度自我更新和多向分化的潛能,并具有支持造血和免疫負調節(jié)作用[1]。大量的體外細胞培養(yǎng)實驗[2,3]證明它具有誘導免疫耐受和免疫抑制的特性。MSC移植在SLE治療中具有較廣闊的應用前景。了解SLE患者自身MSC是否異常是判斷選擇自體或異體MSC移植治療SLE的重要依據(jù)。SLE患者MSC的體外擴增及其生物學特性是協(xié)助我們評價SLE患者MSC是否存在缺陷的重要方面。

    1 資料與方法

    1.1 一般資料 9例SLE患者均符合1997年美國風濕病學會修訂的SLE分類診斷標準,SLE疾病活動評分(SLEDAI)判斷疾病的活動程度。9例患者的資料見表1。另選5例性別、年齡匹配的健康者作為對照組。

    表1 SLE患者臨床資料及BM-MSC體外擴增的基本情況

    1.2 骨髓MSC分離培養(yǎng) 采用羥基淀粉沉淀聯(lián)合Ficoll密度梯度離心法和貼壁篩選法分離培養(yǎng)MSC。具體方法無菌操作下抽取骨髓液10 ml,以5×105U/ml肝素鈉抗凝,先用羥基淀粉按1∶4體積加入,靜置20 min,通過自然沉降去除下沉的大量紅細胞,剩余的含大量紅細胞的下層液體,再用淋巴細胞分離Ficoll-Hypaque常規(guī)分離單個核細胞。將上述兩步分離所得的骨髓單個核細胞充分混勻,懸浮于體積分數(shù)為10%的胎牛血清DMEM-LG培養(yǎng)液中,按約1×106/ml密度接種于25 cm2培養(yǎng)瓶,置37℃、體積分數(shù)為5%的 CO2飽和濕度的培養(yǎng)箱中。當顯微鏡下觀察細胞已達90%融合時,則可傳代。用0.5%胰酶/乙二胺四乙酸(EDTA)(Gibco,美國)消化貼壁細胞,收集細胞并懸浮于完全培養(yǎng)液中,按104/cm2的密度接種于新的培養(yǎng)瓶中,置37℃、5%CO2飽和濕度細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每3~4天更換1次培養(yǎng)液,約1周待細胞生長密度達90%左右時,進行再次傳代。

    1.3 MTT法檢測MSC的生長情況 MTT比色法檢測SLE患者第2代MSC的生長情況,作傳代細胞培養(yǎng)的生長曲線分析。

    1.4 流式細胞術檢測MSC表面分子的表達 細胞培養(yǎng)擴增到第三代時,分別取100 ul細胞懸液與鼠抗人CD29、CD44、CD34、CD45抗體室溫反應30 min。流式細胞儀檢測。

    2 結果

    2.1 MSC的傳代情況及形態(tài) 本實驗進行了9例SLE患者和5例健康對照者MSC體外培養(yǎng)。5例健康對照者MSC均能成功體外擴增。9例患者中,5例MSC能傳代擴增,傳代率為55.6%。其中女性4例,男性1例,年齡16~26歲,平均年齡21.8歲;病程3~24月,平均病程9.8月;DAI評分為15~21,平均評分為18.6。5例SLE患者均合并有腎損害,其中1例合并有血液系統(tǒng)損害。MSC體外擴增不成功的4例SLE患者,均為女性,年齡26~45歲,平均年齡38.2歲;病程6~60月,平均病程37.5月;DAI評分為13-22,平均評分為18.5。4例SLE患者均合并有腎損害,其中2例合并有嚴重血液系統(tǒng)損害。每例患者的臨床資料及MSC體外培養(yǎng)基本情況見表1。

    2.1.1 體外擴增成功者 5例MSC體外擴增成功的SLE患者,MSC生長情況與健康對照組相比較:原代培養(yǎng)時,細胞形態(tài)上與健康對照組相似,但紡錘形、梭形細胞的出現(xiàn)稍晚,一般于2~4 d,健康對照組的一般出現(xiàn)于1~2 d內;隨后逐漸見集落形成,原代培養(yǎng)的時間平均為(14.2±1.45)d,與健康對照組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),細胞呈長梭形旋渦樣生長(圖1);傳代后細胞生長較旺盛,平均傳代時間(5.8±0.44)d,與健康對照組比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。消化傳代的細胞于24 h內完全貼壁,形態(tài)與健康對照組相似(圖2)。

    圖1 原代培養(yǎng)14 d后,細胞呈長梭形旋渦樣生長,幾乎鋪滿了瓶底

    圖2 消化傳代的細胞于24 h內完全貼壁,形態(tài)與原代細胞相似

    2.1.2 體外擴增不成功者 MSC生長情況與健康對照組相比較:同等骨髓量分離得到的單個核細胞數(shù)量與健康對照組相比明顯減少,且貼壁的紡錘形、梭形細胞的出現(xiàn)時間明顯較晚,一般于6~7 d,且僅零星分布,不成集落生長,隨著培養(yǎng)時間的延長,其中2例可見細胞少量擴增,培養(yǎng)至第15天,約見20% ~30%融合的短梭形細胞生長(圖3),至第30天,細胞基本自行凋亡;另2例至第18天,見部分長梭形細胞零星分布,融合少于10%(圖4),至第30天細胞基本自行凋亡(圖5)。

    圖3 原代培養(yǎng)15 d后,可見個別短梭形細胞生長集落

    圖4 原代培養(yǎng)18 d后,長梭形細胞零星分布,融合少于10%

    圖5 原代培養(yǎng)30 d后,部分細胞自行凋亡

    2.2 MSC表面分子的表達 流式細胞術檢測BM-MSC細胞表面抗原,結果顯示體外擴增成功的SLE患者BM-MSC均高表達 CD29、CD44,而不表達 CD34、CD45,第 3 代 BM-MSC 純度達95%以上,且各表面標志的表達與健康對照組相比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。

    2.3 MSC的生長情況 SLE患者第2代MSC生長趨勢與健康對照組相似,第3~4天生長活躍,第4天后生長漸緩,第5-6進入生長平臺期。見圖6。

    圖6 SLE患者與健康對照組第二代MSC生長曲線

    3 討論

    MSC是骨髓中具有高度自我更新和多向分化潛能的一群干細胞,體外培養(yǎng)易純化、擴增迅速,具有支持造血、免疫調節(jié)和誘導免疫耐受的作用。本實驗進行了9例SLE患者和5例健康對照者MSC的體外培養(yǎng)。健康對照者MSC均能成功體外擴增。9例SLE患者中,5例可以傳代擴增,傳代率為55.6%。有4例SLE患者MSC不能成功傳代擴增,說明部分SLE患者MSC存在缺陷。另一方面,我們發(fā)現(xiàn)能成功傳代的5例SLE患者MSC無論是從細胞形態(tài)、原代培養(yǎng)所需時間、平均傳代時間及表面特異性分子表達均與健康對照組無明顯差異,所培養(yǎng)、擴增的細胞能達到臨床應用的要求。提示這部分SLE患者MSC生物學特性基本正常。

    對兩組擴增情況不同的SLE患者的臨床資料進行比較,我們發(fā)現(xiàn)未能成功體外擴增的SLE患者具有如下的臨床特征:①年齡較大。②病程較長。③合并有較嚴重的血液系統(tǒng)損害。④長期大劑量應用免疫抑制劑。

    大量實驗發(fā)現(xiàn),MSC的生物學特性與年齡密切相關。骨髓中MSC的含量、質量以及細胞活性隨著年齡的增長而下降[4,5]。骨髓中MSC的克隆數(shù)隨著年齡的增長而逐漸減少,且 BM-MSC 分泌 SCF、FLT-3L、IL-6、TGF-β1 及 SDF-1 等與自我更新密切相關的細胞因子的能力逐漸下降,導致BM-MSC的增殖能力逐漸減弱。另外,也有研究者指出[6],病情較重的SLE患者,從骨髓中可提取的單個核細胞數(shù)原本就較少,所含MSC就更少。然而SLE病情輕重、病程長短及不同藥物治療是否會影響SLE患者MSC的體外擴增、生物學特性及功能,目前尚未能明確。

    我們實驗說明SLE患者MSC存在一定的異質性,因此應用MSC治療SLE前,了解患者自身MSC是否存在缺陷是必需的。如果患者MSC本身存在缺陷,為避免治療失敗或復發(fā),異體MSC輸注為首選;如果 MSC本身基本正常,自體MSC輸注將是有效的。SLE患者MSC的體外擴增及其生長特性是協(xié)助我們評價SLE患者MSC是否存在缺陷的重要方面,為SLE患者MSC移植的治療方法提供了理論依據(jù)。

    [1]Haynesworth SE.Baber MA Caplan.Al Surface antigen on human marrow-derived mesenchymal stem cells are detected by monoclonal antibodies.Bone,1992,13:69-80.

    [2]Tse WT,Pendleton JD,Beyer,et al.Suppression of allogeneic T-cell proliferation by human marrow stromal cells:implications in transplantation.Transplantation,2003,(75):389-397.

    [3]Tse WT,Pendleton JD,Beyer et al.Suppression of allogeneic T-cell proliferation by human marrow stromal cells:implications in transplantation.Transplantation,2003,(75):389-397.

    [4]Kotev Emeth S,Savion N,Pri2 chen S,et al.Effect of maturation on the osteogonic response of cultured stromal bone marrow cells to basic fibroblast grow th factor.B one,2000,27:777-783.

    [5]Service RF.Tissue engineering build new bone.Science,2000,289(5484):1498-1500.

    [6]孫凌云,侯業(yè)義,范樂明,等.骨髓間質干細胞的初步研究.中華風濕病學雜志,2005,9(10):586-589.

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