楊曉谷 李國(guó)祥 紀(jì) 康 楊震俊 (江蘇省金壇市動(dòng)物衛(wèi)生監(jiān)督所 213200)
雞白痢是由雞白痢沙門氏菌引起的一種雞常發(fā)的傳染病,此病給養(yǎng)雞業(yè)帶來了嚴(yán)重的危害,造成了巨大的經(jīng)濟(jì)損失。雞白痢沙門氏菌不但會(huì)通過攜帶病菌的種雞垂直傳播給下一代,而且水質(zhì)、空氣、飼料、育雛間、出雛間等環(huán)境的污染也會(huì)導(dǎo)致該病在雞群內(nèi)部以及不同雞群之間的橫向傳播。本文主要根據(jù)該病的病理、傳播特點(diǎn)從預(yù)防和凈化兩個(gè)方面進(jìn)行闡述。
雞白痢沙門氏菌可以引起各種日齡的雞感染發(fā)病,雛雞以2~3 周齡以內(nèi)發(fā)病率與死亡率最高。經(jīng)蛋垂直傳傳播時(shí),其雛雞可提前在1周齡內(nèi)發(fā)病。雛雞發(fā)生雞白痢常見的臨床癥狀有3型:急性敗血型、關(guān)節(jié)炎型和神經(jīng)型。急性敗血型又可以拉白痢和呼吸困難為主要特征分為兩種病型,其死亡率與飼養(yǎng)管理優(yōu)劣、品種、治療是否得當(dāng)以及有無并發(fā)癥等有關(guān),嚴(yán)重的可高達(dá)100%的死亡率。關(guān)節(jié)炎型以跗關(guān)節(jié)腫脹為特征,死亡率較低,在30%左右,多見于肉雞。神經(jīng)型以仰頭、偏頭、轉(zhuǎn)圈、喙觸地等運(yùn)動(dòng)機(jī)能障礙為特征,死亡率較低,在10%左右。育成雞患雞白痢的發(fā)病多呈急性和亞急性,發(fā)病率較高,以跗關(guān)節(jié)和胸骨滑液囊腫脹為特征,死亡率10%左右。處于產(chǎn)蛋期的種雞白痢通常呈慢性或隱性感染,病愈后1個(gè)月和10~11個(gè)月的康復(fù)雞仍然可能處于隱性感染狀態(tài),以損害生殖系統(tǒng)為主。不僅影響生產(chǎn)性能(見表1),而且可長(zhǎng)期帶菌和經(jīng)蛋傳播感染,成為危險(xiǎn)傳染源,在應(yīng)激因素作用下,偶爾可發(fā)生急性敗血型雞白痢,表現(xiàn)為下白痢,產(chǎn)蛋劇減,肝脾腫大且有壞死結(jié)節(jié),卵泡變性、變形。
圖1 陽性組與陰性組產(chǎn)蛋率曲線圖
表1 白痢陽性與陰性種雞的產(chǎn)蛋率 (%)
表2 白痢陽性與陰性種雞蛋的入孵率 (%)
表3 白痢陽性與陰性種雞產(chǎn)蛋17周死淘率 (%)
目前控制雞白痢橫向傳播主要是采取綜合防治的辦法,即藥物預(yù)防結(jié)合嚴(yán)格的衛(wèi)生消毒和隔離制度。
2.1 藥物預(yù)防 抗生素預(yù)防治療是控制沙門氏菌感染的有效手段。通常在雛雞開食之日起,便在飼料、飲水中添加抗菌藥物,一般情況下可取得較好的效果。種雞場(chǎng)可采用速服寧、衛(wèi)可、強(qiáng)力霉素等敏感藥物進(jìn)行預(yù)防雞白痢的發(fā)生,用藥物預(yù)防時(shí)切忌長(zhǎng)時(shí)間單一使用同一種藥物,更不要大劑量的使用,注意預(yù)防劑量和治療劑量的嚴(yán)格區(qū)分。預(yù)產(chǎn)期和產(chǎn)蛋期可選用速服寧(成分為磺胺嘧啶、三甲芐氨嘧啶增效劑),另外加入賦形劑按1∶5 比例配制成混懸劑,該藥對(duì)產(chǎn)蛋率和孵化率均無影響。用法與劑量為1ml速服寧兌水5kg,1次/d,集中連飲3~5d,可起到治療作用。產(chǎn)蛋前1周用速服寧飲水3~5d,產(chǎn)蛋高峰期再飲用3~5d,可起到預(yù)防作用。另外,對(duì)雛雞使用益生素,在飼料中添加聚合物、有機(jī)酸、飼料酶等新型飼料添加劑等方法也可以作為種雞場(chǎng)控制沙門氏菌的重要補(bǔ)充措施。
2.2 嚴(yán)格的衛(wèi)生消毒和隔離制度 目前,各種雞場(chǎng)的衛(wèi)生消毒意識(shí)都非常強(qiáng),雞群、人員、車輛、物資、場(chǎng)內(nèi)環(huán)境、舍內(nèi)環(huán)境等的衛(wèi)生消毒工作已經(jīng)常規(guī)劃,雛雞感染沙門氏菌的消毒主要是在出雛間和停苗間。
目前控制雞白痢垂直傳播的主要手段是白痢凈化,白痢抗體在性成熟后比較穩(wěn)定,但在性成熟前有較大的波動(dòng),因此為準(zhǔn)確淘汰陽性雞只,檢測(cè)時(shí)間不宜過早,應(yīng)在接近性成熟時(shí)開始第一次檢測(cè)。由于公司內(nèi)的品系較多,性成熟的時(shí)間差異較大,故不同品系確定不同的檢測(cè)時(shí)間。早熟品系的首次檢測(cè)時(shí)間定為13周,晚熟品系的首次檢測(cè)時(shí)間定為14周,一般情況下,檢測(cè)時(shí)間可固定在14周第1次,16周第2次,每次檢測(cè)留下可疑雞,待下次檢測(cè)若仍為可疑,則淘汰,至全部陰性為止。凈化方案一旦固定,需有評(píng)估報(bào)告確定是否更改,否則需嚴(yán)格執(zhí)行凈化方案。
4.1 檢測(cè)工具 (1)自制載玻片,選3mm厚普通玻璃切割成20×30cm大小,四周用防水膠片包裹(防止劃傷);可做20~30塊(以工作人數(shù)定)。(2)自制接種針:取竹筷1根,一頭削圓,套入注射針頭(一般為7~9號(hào)),針頭上部采用直經(jīng)1mm銅絲纏繞,銅絲另一頭彎曲成與筷子平行并制成直經(jīng)2~3mm的圓環(huán)。(3)自制觀察箱:用三夾板做一長(zhǎng)、寬、高為50cm、40cm、20cm的木箱,箱底部安裝2只100~200W白熾燈泡,箱上部安裝普通玻璃,木箱底部安裝4只輪子,高度以80cm為宜,便于操作、移動(dòng)。操作時(shí),將雞籠編號(hào),每籠雞做記號(hào),根據(jù)每次雞籠雞數(shù)在玻璃板相應(yīng)位置上滴上抗原,飼養(yǎng)員或技術(shù)員每次可做12~24只雞,之后,將玻璃板置于觀察箱上,將陽性反應(yīng)的圈出,由操作者將對(duì)應(yīng)雞只取出。
4.2 檢測(cè)方法 (1)將玻璃板用脫脂棉擦凈、擦干(使滴入的抗原不擴(kuò)散),以每組雞數(shù)為準(zhǔn)用移液槍滴上抗原,每滴抗原不超過50m1;(2)將針頭對(duì)準(zhǔn)翅靜脈垂直插下,用自制銅環(huán)沾取流出的血液與玻璃板上的抗原混和均勻;將針頭與銅環(huán)在75%酒精浸泡過的棉球上搽拭消毒后以后再作下一只雞。可在雞腿上用記號(hào)筆做好標(biāo)記,待一組雞籠作完后交于技術(shù)員判定。(3)檢測(cè)前需先抽取抗原和陽性血清、陰性血清各0.05ml分別進(jìn)行混勻,制做陽性對(duì)照和陰性對(duì)照。其目的是檢驗(yàn)抗原的有效性并確立判定標(biāo)準(zhǔn)。操作熟練后可省去該步驟。(4)反應(yīng)時(shí)間的確定:氣溫越高反應(yīng)越快,判定時(shí)間越短。一般在25℃環(huán)境下需2~3min,冬季時(shí)間稍長(zhǎng)3~5min。陽性判定:抗原抗體結(jié)合成藍(lán)黑色的塊狀物,如結(jié)合成霧狀的針尖大小的圓點(diǎn)則為疑似,一般疑似雞只不需淘汰。