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    運用Solexa高通量測序法鑒定日本血吸蟲miRNAs

    2011-05-30 05:13:36郝力力
    浙江農(nóng)業(yè)科學(xué) 2011年4期
    關(guān)鍵詞:血吸蟲血吸蟲病文庫

    郝力力,李 銳

    (1.西南民族大學(xué) 生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,四川 成都 610041;2.浙江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)研究所,浙江 杭州 310021)

    日本血吸蟲病主要流行于中國、菲律賓和印度尼西亞,是所有人體血吸蟲病中對健康危害較嚴(yán)重的血吸蟲病。目前,我國血吸蟲病主要流行于長江流域及以南的湖南、湖北、江西、安徽、江蘇、浙江、云南等省、市、自治區(qū),至2005年,在沿長江的省市仍有超過80萬的感染者[1]。長期以來,靠單一藥物治療很難有效地阻斷和控制血吸蟲病的傳播[2],另外,在一些地區(qū)已出現(xiàn)對吡喹酮藥物敏感性下降的蟲株。目前控制血吸蟲病的主要技術(shù)問題是缺乏診斷感染者和評價療效的快速簡易的方法,以及缺乏有效疫苗[3]。開發(fā)新型診斷方法和疫苗的前提是對血吸蟲的基因表達(dá)調(diào)控、保護性免疫反應(yīng)機制、免疫逃避機制、新陳代謝及與宿主相互作用的基本生物學(xué)規(guī)律有深入的了解。

    MicroRNA(miRNA)是由約22個核苷酸組成的非編碼的單鏈RNAs,是一類在真核物中新發(fā)現(xiàn)的基因表達(dá)調(diào)控因子,通過細(xì)胞和組織特異性的轉(zhuǎn)錄后基因沉默或轉(zhuǎn)錄水平的基因沉默模式,調(diào)節(jié)與個體生長、發(fā)育、疾病發(fā)生過程有關(guān)的基因的表達(dá),參與早期發(fā)育、細(xì)胞分化、細(xì)胞增殖、細(xì)胞凋亡、細(xì)胞死亡和脂肪代謝等一系列生物進(jìn)程。相對于線蟲等模式生物,日本血吸蟲 miRNA的鑒定較為困難,因為小RNA文庫中rRNA比例占到了65.63%,用傳統(tǒng)的克隆方法鑒定日本血吸蟲miRNA時檢出率低下。用Solexa等高通量測序技術(shù)能克服上述缺點[4],因此,我們采用 Solexa高通量測序方法對日本血吸蟲miRNAs進(jìn)行鑒定,對日本吸血蟲基因組中轉(zhuǎn)錄的小RNA分子進(jìn)行系統(tǒng)的研究。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 蟲體收集

    按常規(guī)方法逸出尾蚴,新西蘭大白兔經(jīng)腹部貼片感染約2500條尾蚴,42 d后頸動脈放血處死兔子,解剖,打開胸腔,用門脈沖蟲法分別收集14 d童蟲和42 d的成蟲,去除受損傷的成蟲,將成蟲轉(zhuǎn)移到50mL的離心管,用1640完全培養(yǎng)基洗3遍,最后培養(yǎng)基的體積為10mL,加入100μL的蛋白酶抑制劑Cocktail,混勻后投入液氮速凍,轉(zhuǎn)移到-80℃冰箱保存。

    1.1.2 總RNA的提取

    取適量的日本血吸蟲蟲體于1.5mL EP管中液氮研磨,應(yīng)用 Invitrogen公司的 Trizol Reagent提取,但在異丙醇沉淀時需-20℃過夜,方能徹底將小RNA完全沉淀。提取好的總RNA用DEPC水溶解后-80℃保存。

    1.2 方法

    1.2.1 小RNA文庫的制備

    在15%的尿素變性聚丙烯酰胺凝膠上分離20μg的總 RNA,回收 18~30個堿基的片段,用Superscript II(invitrogen)進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,而后分別將5'以及3'接頭連接于反轉(zhuǎn)錄后cDNA序列兩端,用Hotstart Phusion DNA Polymerase(NewEngland Lab,USA)在預(yù)設(shè)條件下進(jìn)行15個循環(huán)的PCR反應(yīng),將得到的PCR產(chǎn)物在12%的尿素變性聚丙烯酰胺凝膠上分離回收,溶解于適當(dāng)體積的緩沖液中,得到小RNA送交華大基因進(jìn)行Solexa測序。

    1.2.2 Solexa測序數(shù)據(jù)的分析

    測序得到的序列,去除接頭序列信息,將unique read和日本血吸蟲基因組序列進(jìn)行比對,用Patscan程序?qū)⑴c基因組完全匹配的序列和Sanger miRBase數(shù)據(jù)庫中的序列進(jìn)行比對,預(yù)測保守的和日本血吸蟲特有的miRNAs,成蟲和童蟲 2個樣本之間miRNAs表達(dá)差異用IDEG6程序進(jìn)行分析,P<0.01時被認(rèn)為表達(dá)差異顯著。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 測序數(shù)據(jù)質(zhì)量

    Solexa測序結(jié)果 (表1)中,成蟲總共得到6400876條序列,童蟲得到5323610條序列;去除接頭污染,空載體,以及<18 nt等不合格序列,最后成蟲和童蟲分別獲得了5349115和4273194條序列,分別占總序列的83.6%和80.3%。

    表1 日本血吸蟲童蟲和成蟲Solexa測序的條數(shù)比例

    2.2 種間保守miRNAs

    發(fā)現(xiàn)16條保守的 miRNAs(表2),其中 mir-71,mir-7,mir-2b,let-7在成蟲和童蟲中均測到較多的reads數(shù),說明這4個 miRNAs在童蟲和成蟲階段均高效表達(dá);而mir-124,mir-36aMir-10,mir-129在童蟲和成蟲階段測到的reads數(shù)則相對較少,可能預(yù)示其轉(zhuǎn)錄豐度也相對較低。

    表2 日本血吸蟲中發(fā)現(xiàn)的16條保守miRNAs

    2.3 日本血吸蟲特有miRNAs

    結(jié)果 (表3)發(fā)現(xiàn)20條日本血吸蟲特有的miRNAs,其中 Novel-16,Novel-137,Novel-148在成蟲和童蟲階段測到的條數(shù)均較多,同樣說明這3個miRNAs在成蟲和童蟲階段表達(dá)豐度均較高,而Novel-110在成蟲階段表達(dá)測到了6477條,在童蟲階段只測到6條。同樣,Novel-70在成蟲階段測到了843條,童蟲階段只測到1條,說明Novel-110和Novel-70的表達(dá)可能和成蟲階段某些基因的轉(zhuǎn)錄表達(dá)調(diào)控有著密切聯(lián)系。

    表3 18條高表達(dá)日本血吸蟲特有的miRNAs

    3 小結(jié)與討論

    Solexa測序技術(shù)比傳統(tǒng)的cDNA文庫構(gòu)建能檢測到更多的miRNAs[5-8],傳統(tǒng)的克隆方法鑒定日本血吸蟲 miRNA最大的局限性在于檢出率低下[6],Xue等[8]所構(gòu)建的尾蚴期小 RNA文庫所得序列經(jīng)對比均為rRNA或tRNA分子片段;成蟲期小RNA文庫所得序列中65.63%為rRNA片段,3.52%為mRNA片段,僅 24.24%為 ncRNA(非編碼RNA);且最終從55條ncRNA中僅鑒定出5個miRNA分子,存在這一問題的主要原因是由于血吸蟲rRNA大亞基存在著 “nick in vivo”現(xiàn)象[7],28S大亞基的降解導(dǎo)致rRNA片段占有很大的比例,嚴(yán)重干擾miRNA的檢出率。而Solexa測序后每次配對末端運行后可以得到超過3Gb的高品質(zhì)過濾數(shù)據(jù),不僅可屏蔽掉日本血吸蟲rRNA的嚴(yán)重干擾,而且能檢測出于表達(dá)豐度極低的miRNA以及miRNA*。本研究采用Soolexa高通量測序技術(shù)對日本血吸蟲miRNAs進(jìn)行鑒定,將原先發(fā)現(xiàn)的5條miRNAs增至34條,為更好地了解日本血吸蟲不同發(fā)育階段轉(zhuǎn)化與基因表達(dá)調(diào)控的關(guān)系,也為闡明日本血吸蟲的生長、發(fā)育、與宿主的相互作用關(guān)系以及為新型藥物靶點和候選抗原分子的發(fā)現(xiàn)奠定一定基礎(chǔ)。

    [1]周曉鐘.我國血吸蟲病的分布及防治 [J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2007,35(12):3766-3768.

    [2]李懷寶.日本血吸蟲病的綜合防治與公共衛(wèi)生安全 [J].畜牧與飼料科學(xué),2010(1):160-162.

    [3]Zhou Y,Zheng H,Chen Y,et al.Schistosoma japonicum genome sequencing and functionalanalysis consortium. The Schistosoma japonicum genome reveals features of host2parasite interplay [J].Nature,2009,460(7253):345-351.

    [4]Schuster S C. Next-generation sequencing transforms today's biology [J].Nat Methods,2008,5(1):16-18.

    [5]Morin R D,Connor M D,Griffith M,et al.Application of massively parallel sequencing to microRNA profiling and discovery in human embryonic stem cells[J]. Genome Research,2008,18(4):610-621.

    [6]Cummins J M,He Y, Leary R J, et al.The colorectal microRNAome[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2006,103(10):3687-3692.

    [7]He L,Hannon G J.MicroRNAs:small RNAs with a big role in gene regulation [J]. Nature Reviews, 2004, 5 (7):522-531.

    [8]Xue X, Sun J, Zhang Q, et al. Identification and characterization of novel microRNAs from Schistosoma japonicum[J].PLoS ONE,2008,3(12):4034.

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