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    一株柯薩奇病毒B組5型(Cox.B5)病毒的分離及VP1基因分析

    2011-04-03 03:21:14楊卉娟柯華昕陳俊英趙玉嬌孫強(qiáng)明馬紹輝
    醫(yī)學(xué)研究雜志 2011年9期
    關(guān)鍵詞:柯薩奇進(jìn)化樹腸道病毒

    李 華 楊卉娟 柯華昕 陳俊英 潘 玥 趙玉嬌 孫強(qiáng)明 馬紹輝

    柯薩奇病毒B5(coxsackie virus B5,CVB5)感染可引起多種人類疾病,包括無菌性腦膜炎、肌肉麻痹、病毒性心肌炎、手足口病、胰腺炎和糖尿病等,在我國均有報(bào)道[1~4]。

    CVB5屬于腸道病毒屬小核糖核酸病毒,無包膜、單股正鏈RNA,病毒基因組由7402個(gè)堿基構(gòu)成,基因組順序依次為5'端非編碼區(qū),P1、P2、P3區(qū)和一段3'端非編碼區(qū),其中P1區(qū)編碼病毒的主要結(jié)構(gòu)蛋白,即衣殼蛋白(capsule protein),分別為VP1、VP2、VP3和VP4,而病毒主要的免疫原性蛋白和中和抗原位點(diǎn)在VP1上[1,3~5]。

    為了解2009年引起無菌性腦膜炎的病原分離株KMA193-09(基因登陸號(hào)為HQ423145)的遺傳特性,我們對(duì)其VP1基因片段進(jìn)行擴(kuò)增及分析,現(xiàn)將結(jié)果報(bào)道如下。

    材料與方法

    1.材料:(1)細(xì)胞:Hep-2、RD細(xì)胞皆由中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院醫(yī)學(xué)生物學(xué)研究所檢定室保存并提供。(2)標(biāo)本來源:昆明市兒童醫(yī)院腦炎疑似病例(年齡)的糞便標(biāo)本。(3)RNA提取試劑盒:Axygen Body Fluid viral DNA/RNA Miniprep Kit.lot: KC50090501-B-G。(4)RT-PCR Kit:TAKARA One step RT-PCR Kit VER.2203.lot:BK1101。

    2.方法:(1)病毒分離::采用組織培養(yǎng)法,取糞便標(biāo)本1g,加入5ml0.01mol/L PBS(pH7.4)制成懸液,3000r/min,離心30min,用0.45μl濾器除菌過濾,接種已長成致密單層的Hep-2、RD細(xì)胞,細(xì)胞培養(yǎng)嚴(yán)格按WHO分離腸道病毒規(guī)程操作,于37℃培養(yǎng),培養(yǎng)液為含10%小牛血清的MEM[6]。觀察病毒在細(xì)胞上的細(xì)胞病變情況(CPE),如果無CPE,盲傳3代;3代后無CPE出現(xiàn),判為陰性。病毒繼續(xù)在RD細(xì)胞培養(yǎng)增殖2代。(2)病毒核糖核酸(RNA)提取:采用Axygen Body Fluid viral DNA/RNA Miniprep Kit,按試劑盒說明書提取病毒RNA。(3)引物:擴(kuò)增與測序引物參照文獻(xiàn)[7]:腸道病毒公用引物見表1。擴(kuò)增片段長度為831bp,引物由上海生物工程有限公司合成。(4)反轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)(RT-PCR):采用TaKaRa公司生產(chǎn)的One-step RNA PCR kit(AMV)試劑盒。反應(yīng)條件:50℃ 30min,反轉(zhuǎn)錄 95℃ 2min后94℃ 30s,51℃ 30s,72℃ 1.5min,循環(huán)39次,72℃延伸7min,然后轉(zhuǎn)入4℃。取擴(kuò)增產(chǎn)物5μl,用1.0%瓊脂糖電泳,根據(jù)Marker位置對(duì)擴(kuò)增片段進(jìn)行確認(rèn)。(5)序列測定和數(shù)據(jù)分析:擴(kuò)增陽性的PCR產(chǎn)物由北京三博生物技術(shù)有限公司進(jìn)行純化和序列測定。其他有關(guān)CVB5的VP1序列從NCBI的基因數(shù)據(jù)庫(Genbank)上下載,并采用瑪格。Mega 4.0軟件對(duì)測序結(jié)果進(jìn)行分析處理。

    表1 用于RT-PCR的引物

    結(jié)果

    1.病毒分離:將直接從臨床樣品中鑒定為CVB5的3例無菌性腦膜炎患兒的糞便標(biāo)本,分別接種RD和Hep-2細(xì)胞后,僅培養(yǎng)分離到一個(gè)陽性分離物,收集上清,并保存在-70℃。

    2.病毒分離株VP1序列測定:將陽性培養(yǎng)物上清,采用特異性引物作RT-PCR擴(kuò)增,均能擴(kuò)增出柯薩奇B5病毒的831bp特異性核酸片段;對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行基因序列的測定,將結(jié)果輸入 Genbank,用BLAST檢索比對(duì),進(jìn)一步證實(shí)該分離株為柯薩奇B5病毒。

    3.柯薩奇B5病毒分離株VP1基因核苷酸和氨基酸分析:VP1基因核苷酸和氨基酸同源性比較分別顯示:KMA193-9與其他Cox.B5病毒分離株核苷酸同源性在85.4% ~95.7%之間,氨基酸同源性在95.67%~98.19%之間(表2)。KMA193-9在氨基酸上與其他分離株存在5個(gè)位點(diǎn)的差異,它們分別是3號(hào)位點(diǎn)由P變?yōu)門、95位點(diǎn)由S變?yōu)镹、164位點(diǎn)由S變?yōu)門、188位點(diǎn)由G變?yōu)镃、200位點(diǎn)由R變?yōu)镵 (圖1)。

    表2 KMA193-09分離株VP1基因核苷酸和氨基酸同源性比較(%)

    4.柯薩奇B5病毒分離株VP1基因進(jìn)化樹分析:將不同時(shí)期、不同國家和地區(qū)的柯薩奇B5病毒采用DNAStar軟件,構(gòu)建基因系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖2)。結(jié)果顯示,KMA193-09分離株(基因登錄號(hào)HQ423144)與YZ081-SD-CHN-2005-CB5株形成一進(jìn)化分支。與我國的其余柯薩奇B5分離株有一定的距離,與CB5-SD-sewage-090705-2-3H分離株共同形成一個(gè)較大的分支,而與1603Finland82株、CF219051-06株距離遠(yuǎn)。

    圖1 KMA193-09分離株VP1區(qū)氨基酸序列比較

    圖2 KMA193-09病毒分離株VP1基因進(jìn)化樹

    討論

    腸道病毒的VP1基因不僅是病毒的主要表面抗原的決定簇區(qū),而且具有與病毒血清型完全對(duì)應(yīng)的遺傳多樣性,目前作為腸道病毒屬內(nèi)不同血清型分類依據(jù),以及小RNA病毒科內(nèi)不同屬的分類參考。因此選擇CVB5 VP1區(qū)來分析病毒變異和進(jìn)化關(guān)系。

    本次CVB5病毒分離中,首先用RT-PCR方法檢測采集的臨床樣品,由于RT-PCR方法具有快速、靈敏、特異等特點(diǎn),所以檢測出3個(gè)CVB5病毒樣品[8,9]。當(dāng)接種Hep-2、RD細(xì)胞后,僅分離得到一株CVB5病毒,提示PCR法比細(xì)胞分離更靈敏,這與文獻(xiàn)[10]報(bào)道的一致。

    通過對(duì)KMA193-09病毒分離株VP1基因進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)生進(jìn)化樹圖可以看出,KMA193-09病毒分離株與中國及其他亞洲的病毒分離株距離較近,而與芬蘭、法國等分離株距離較遠(yuǎn)。而序列分析也顯示,KMA193-09分離株與其他中國分離株之間也顯示出一定差異。以上這提示CVB5病毒存在明顯的地域分布性。

    曾有報(bào)道CVB5病毒在鼠胰腺連續(xù)傳代15代,發(fā)現(xiàn)表型發(fā)生改變并引起小鼠似糖尿病綜合征,而親代病毒損害腺泡組織有限卻3天后胰腺感染跡象消失[11]。通過測序和分析發(fā)現(xiàn)全基因序列出10個(gè)突變,導(dǎo)致8個(gè)氨基酸突變,其中在VP1出現(xiàn)N95S突變;而后研究人員進(jìn)一步通過反向遺傳學(xué)發(fā)現(xiàn)VP1氨基酸V 94 I突變使CVB5更好適應(yīng)胰島β細(xì)胞株MIN-6細(xì)胞,認(rèn)為該位點(diǎn)更重要[11]。而本研究中KMA193-09 VP1的94和95位氨基酸分別為I及N,這提示該分離株也能較好的在MIN-6細(xì)胞增殖。

    另外,CVB5病毒在VP1的288位氨基酸,除CF219051-06為賴氨酸(K)外,KMA193-09與其他病毒分離株均為谷氨酸(E),該位置位于病毒體的表面,賴氨酸為堿性氨基酸,而谷氨酸為酸性氨基酸,這種突變的改變是否影響病毒吸附于細(xì)胞表面還有待于進(jìn)一步的研究[8]。

    本研究闡明了CVB5病毒KMA193-09分離株結(jié)構(gòu)蛋白VP1的基因序列,并對(duì)其變異性及與其他CVB5的關(guān)系進(jìn)行了分析,為今后CVB5的基因庫和分子流行病的調(diào)查研究提供一定的資料及試驗(yàn)依據(jù)。

    1 金奇.醫(yī)學(xué)分子病毒學(xué)[M].北京:科學(xué)出版社,2001:579-602

    2 趙國華,許汴利,朱謙,等.一起柯薩奇B5病毒感染引起疾病暴發(fā)的流行病學(xué)調(diào)查[J].中國初級(jí)衛(wèi)生保健,2006,20(8):25-26

    3 葛瓊,嚴(yán)菊英,龔黎明,等.浙江省2008年病毒性腦膜腦炎病原柯薩奇B組5型病毒VP1區(qū)基因變異分析[J].中國疫苗和免疫,2010,16(1):38-43

    4 趙月萍,馬明英,王建軍,等.一起爆發(fā)型柯薩奇病毒性腦炎的病原分離與鑒定[J].安徽預(yù)防醫(yī)學(xué)雜志,2001,7(6):401-402

    5 顏謹(jǐn),柯昌文,鄭煥英,等.基于VP4基因擴(kuò)增和序列測定快速檢測鑒別人腸道病毒的研究[J].中國計(jì)劃免疫,2006,12(6):469-471

    6 世界衛(wèi)生組織(WHO)擴(kuò)大免疫規(guī)劃和傳染性疾病部.脊髓灰質(zhì)炎病毒檢測手冊[R].1992

    7 Oberste MS,Maher K,Williams AJ,et al.Species-specific RT-PCR amplification of human enteroviruses:a tool for rapid species identification of uncharacterized enteroviruses[J].Gen Virol,2006,87(1): 119-128

    8 Papa A,Dumaidi K,F(xiàn)ranzidou F,et al.Genetic variation of coxsackie virus B5 strains associated with aseptic meningitis in Greece.[J].Clinical Microbiology and Infection,2006,12(7):688-691

    9 Audrey Mirand,Christine Archimbaud,Ce'cile Henquell,et al.Prospective identification of HEV-B enteroviruses during the 2005 outbreak[J].Journal of Medical Virology,2006,78:1624-1634

    10 Mark H,Sawyer MD.Enterovirus infections:diagnosis and treatment[J].Current Opinion in Pediatrics,2001,13:65-69

    11 Al-Hello H,Davydova B,Smura T,et al.Phenotypic and genetic changes in coxsackievirus B5 following repeated passage inmouse pancreas in vivo[J].Med Virol,2005,75(4):566-574

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