李超然 綜述,石 紅 審校
(大連醫(yī)科大學(xué) 附屬第一醫(yī)院 婦產(chǎn)科,大連 116011)
化療是臨床上治療惡性腫瘤和一些免疫性疾病的重要手段,療效確定,但是化療可能導(dǎo)致卵巢功能損傷,甚至卵巢早衰和不孕。對于需要化療的絕經(jīng)前女性患者,應(yīng)該保護(hù)其卵巢和生育功能。本文就近年來對化療所致卵巢損傷的保護(hù)措施進(jìn)行綜述。
GnRH是下丘腦弓狀核神經(jīng)細(xì)胞分泌的一種十肽激素,通過作用于促性腺細(xì)胞上的同族受體而調(diào)節(jié)垂體促性腺激素的合成和分泌。人工合成的GnRH類似物分為兩種:GnRH激動(dòng)劑(GnRH-a)和GnRH拮抗劑(GnRH-A),二者的作用均為抑制促性腺激素的釋放,但是作用機(jī)理不同。GnRH-a是通過對GnRH受體的降調(diào)節(jié)及腺垂體促性腺激素細(xì)胞的脫敏作用而抑制促性腺激素釋放,而GnRH-A是通過與GnRH競爭性結(jié)合受體達(dá)到快速抑制內(nèi)源性GnRH對垂體的興奮作用[1]。臨床觀察發(fā)現(xiàn),化療藥物對有絲分裂活躍的卵泡損害大,對于靜止的原始卵泡作用較小,有研究人員期望利用藥物阻止原始卵泡成熟,從而達(dá)到最大限度的保存卵泡的目的。
從1985年始,為觀察GnRH-a對卵巢保護(hù)作用,進(jìn)行了大量的動(dòng)物和臨床實(shí)驗(yàn)。袁光文等[2]報(bào)道了亮丙瑞林能夠降低環(huán)磷酰(CTX)胺對大鼠卵巢功能的損傷,實(shí)驗(yàn)將80只Fisher 344大鼠分為對照組,GnRH-a組,CTX組和聯(lián)合治療組,發(fā)現(xiàn)CTX組卵泡總數(shù)是(550±50)個(gè),聯(lián)合治療組是(1250±160)個(gè),兩者比較,P<0.05,說明亮丙瑞林有保護(hù)大鼠卵巢儲備功能的作用。Del Mastro等[3]觀察了29例乳腺癌患者,術(shù)后均采用CEF(環(huán)磷酰胺,表柔比星,5-氟尿嘧啶)方案化療,化療前和化療同時(shí)給予戈舍瑞林3.6 mg,4周1次。化療后72%的患者恢復(fù)月經(jīng),83%的患者FSH≤40 IU/L。Somers EC等[4]對應(yīng)用環(huán)磷酰胺治療的40名SLE患者進(jìn)行實(shí)驗(yàn)觀察,對照組的20名患者給予CTX化療,GnRH-a組的20名患者在給予CTX化療期間每月注射抑那通 3.75 mg,GnRH-a組卵巢早衰(POF)的發(fā)生率是5%,對照組POF發(fā)生率是30%,說明聯(lián)合應(yīng)用GnRH-a可以明顯減少化療后POF的發(fā)生。Blumenfeld等[5]進(jìn)行了大樣本的臨床觀察,120名惡性腫瘤患者作為實(shí)驗(yàn)組,在化療前至化療結(jié)束期間,每月注射GnRH-a,另外82名淋巴瘤患者作為對照組,僅給予化療藥物,至實(shí)驗(yàn)結(jié)束時(shí),實(shí)驗(yàn)組POF的發(fā)生率是6.7%,對照組POF的發(fā)生率高達(dá)53.7%;實(shí)驗(yàn)組93.3%的患者恢復(fù)排卵,而對照組僅為46.3%。Clowse ME等[6]回顧了1966~2007年的9項(xiàng)對照研究發(fā)現(xiàn),在接受化療的366名女性患者中,178名患者化療同時(shí)接受了GnRH-a。化療結(jié)束后,93%的患者未發(fā)生卵巢功能的衰竭,22%在化療后妊娠;而另外188名婦女化療同時(shí)未接受任何保護(hù)卵巢功能的措施,結(jié)果僅48%的婦女未發(fā)生卵巢功能衰竭,化療后僅14%妊娠。Blumenfeld等[7]分析了9項(xiàng)臨床對照研究,發(fā)現(xiàn)化療同時(shí)聯(lián)合應(yīng)用GnRH-a,POF的發(fā)生率是11.1%,而單純用化療藥物,POF的發(fā)生率高達(dá)55.5%。
但是有學(xué)者認(rèn)為,應(yīng)用GnRH-a會產(chǎn)生1~2周的促性腺激素升高,促使原始卵泡發(fā)育為成熟卵泡,即“flare-up作用”,加重了化療藥物對卵巢的損傷。為了避免這一作用,可以選擇GnRH-A。 Meirow等[8]將114只雌性Balb/c小鼠分成三組,分別給予0,50,75 mg/kg的環(huán)磷酰胺,每組的半數(shù)小鼠在給予環(huán)磷酰胺的前9 d至后7 d每天給予cetrorelix,0.5 mg/kg,觀察雙側(cè)卵巢的原始卵泡數(shù)。結(jié)果發(fā)現(xiàn)給予50 mg/kg環(huán)磷酰胺組,應(yīng)用cetrorelix原始卵泡的破壞率是14%,而未應(yīng)用cetrorelix組的原始卵泡的破壞率高達(dá)53%,兩者比較P<0.001;給予75 mg/kg環(huán)磷酰胺組應(yīng)用和未應(yīng)用cetrorelix的原始卵泡破壞率分別是35%和54%,P<0.004。認(rèn)為GnRH-A可以減少化療引起的卵巢損傷,并且這種保護(hù)作用呈劑量依賴性。Lemos[9]等將42只大鼠分為4組,分別為安慰劑組,環(huán)磷酰胺(6 mg/kg)+安慰劑組,cetrorelix(0.1 mg/kg)+安慰劑組,cetrorelix(0.1 mg/kg)+環(huán)磷酰胺(6 mg/kg)組。結(jié)果發(fā)現(xiàn),cetrorelix +環(huán)磷酰胺組子代數(shù)量為(7.00±1.31)只,而環(huán)磷酰胺+安慰劑組子代的數(shù)量僅為(3.00±1.33)只,提示應(yīng)用環(huán)磷酰胺前給與GnRH-A可以保護(hù)大鼠的生育功能。
為了更快的抑制垂體性腺軸,縮短化療前抑制性腺的時(shí)間,有人提出聯(lián)合應(yīng)用GnRH-a和GnRH-A。Mardesic等[10]觀察了6名血液系統(tǒng)惡性腫瘤患者在化療前聯(lián)合應(yīng)用GnRH-a和GnRH-A,在96 h內(nèi)即達(dá)到了抑制性腺軸的作用,與單用GnRH-a或GnRH-A相比,能夠更快、更有效地抑制垂體性腺軸,但是并沒有觀察到遠(yuǎn)期性腺軸的功能。
GnRH類似物降低化療引起的卵巢損傷的機(jī)制可能為:(1)抑制內(nèi)源性促性腺激素的分泌,防止原始卵泡發(fā)育為成熟卵泡,防止過多的成熟卵泡受到化療藥物的破壞[11];(2)可能減少卵巢的血供,從而減少卵巢局部化療藥物的累積量;(3)Grundker和Emons[12]報(bào)道,激活GnRH-Ⅰ和GnRH-Ⅱ受體可以減少凋亡,GnRH類似物直接作用于卵母細(xì)胞卵丘復(fù)合物,顆粒細(xì)胞或其他卵巢結(jié)構(gòu),激活受體,減少凋亡。(4)上調(diào)性腺內(nèi)抗凋亡分子的數(shù)量,如神經(jīng)鞘氨醇-1-磷酸(S-1-P)。S-1-P在細(xì)胞外可結(jié)合G蛋白偶聯(lián)受體,從而激活和調(diào)節(jié)一系列信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑,在細(xì)胞內(nèi)可作為第二信使調(diào)節(jié)鈣離子流動(dòng),調(diào)節(jié)細(xì)胞生長,抑制細(xì)胞凋亡[13]。(5)有研究稱卵巢中存在生殖干細(xì)胞,可以分化為生殖細(xì)胞,GnRH類似物可能有保護(hù)卵巢生殖干細(xì)胞的作用,從而保存卵巢功能[14,15]。
然而,一些學(xué)者也發(fā)現(xiàn)應(yīng)用GnRH類似物的一些問題[16]:(1)價(jià)格昂貴,并不能在大部分患者中普及;(2)應(yīng)用超過4個(gè)周期會出現(xiàn)絕經(jīng)期癥狀,引起骨質(zhì)疏松等;(3)其對腫瘤細(xì)胞的影響還沒經(jīng)過足夠的觀察;(4)化療前或化療同時(shí)應(yīng)用GnRH類似物是否影響化療藥物的療效還有待于觀察。
卵巢皮質(zhì)中含有大量的原始卵泡,它們抵抗冰凍損傷的能力較成熟卵泡強(qiáng)。隨著組織冰凍技術(shù)的提高,人類卵巢冰凍保存取得了進(jìn)展,成為保存患者生育能力的一條途徑。Donnez等[17]將1個(gè)霍奇金淋巴瘤患者的卵巢摘除,冰凍保存6年,解凍后行卵巢組織自體移植,成功分娩了1個(gè)嬰兒。但是,自體移植冰凍卵巢存在著原發(fā)腫瘤移植及轉(zhuǎn)移的危險(xiǎn)[18,19]。因此,在冰凍保存卵巢前,進(jìn)行組織學(xué)評估以除外鏡下病灶是必要的。但是化療結(jié)束后何時(shí)將卵巢組織移回體內(nèi),移植的卵巢大小及部位還有待進(jìn)一步研究[20]。此外,卵巢組織的冰凍保存還存在著組織塊過大、冰凍及復(fù)蘇時(shí)損傷較大的缺點(diǎn)。
近年,冰凍卵母細(xì)胞技術(shù)成為保存化療患者生育功能的另一種途徑。Yang D等[21]報(bào)道了1例霍奇金淋巴瘤的患者,在進(jìn)行化療前冰凍保存了10個(gè)MⅡ期卵母細(xì)胞,化療結(jié)束后進(jìn)行體外受精-胚胎移植,成功分娩了一個(gè)健康男嬰。但是,成熟卵母細(xì)胞處于MⅡ期,對溫度變化敏感,修復(fù)細(xì)胞損傷的能力差,在冰凍保存過程中易發(fā)生細(xì)胞骨架損傷和透明帶硬化,成熟卵母細(xì)胞冰凍保存的存活率較低[22]。方法二是未成熟卵母細(xì)胞的冰凍保存。其具有體積小、耐受凍傷能力較強(qiáng)的優(yōu)點(diǎn)。但是,未成熟卵母細(xì)胞解凍后需要體外培養(yǎng)成熟,Hardy等[23]觀察到人GV期卵母細(xì)胞解凍后存活率<40%,僅有約20%存活的卵母細(xì)胞發(fā)育至MⅡ期,囊胚形成率更低。并且進(jìn)行卵母細(xì)胞冰凍保存前均需要應(yīng)用促排卵的方法收集足夠數(shù)量的卵母細(xì)胞,這一過程需要幾周至幾個(gè)月的時(shí)間,這將延誤患者的治療時(shí)機(jī),同時(shí),這種方法也不適用于青春期前的女性患者。
冰凍保存胚胎現(xiàn)在廣泛應(yīng)用于輔助生育技術(shù)(ART)中,它可以提高每一周期的妊娠成功率。目前,該技術(shù)已成為保留腫瘤患者卵巢功能的一種方法。Azem等[24]報(bào)道了對1例28歲結(jié)腸癌患者化療前進(jìn)行超促排卵,體外受精后,冰凍保存其胚胎,2年后,將胚胎移植回患者子宮后,成功分娩1個(gè)嬰兒。但是,此項(xiàng)技術(shù)并不適用于兒童及無配偶又不接受精子庫供精的患者。冰凍胚胎前需要超促排卵,造成患者體內(nèi)雌激素水平升高,對于雌激素相關(guān)性腫瘤患者應(yīng)慎用。
在人們關(guān)注相關(guān)技術(shù)發(fā)展的同時(shí),一些倫理問題也不容忽視[25]:(1)未成年的患者是否有保存其生育功能的意識?(2)對于預(yù)后很差的患者,其保存的組織或胚胎在其死亡后如何處理?(3)獲取組織或胚胎的過程中應(yīng)用的藥物是否會加速原有疾病的進(jìn)展,甚至導(dǎo)致患者死亡?是遵從病人的意愿還是從治療疾病的角度出發(fā)?對于臨床醫(yī)生和患者來說,常常是一個(gè)兩難的選擇。如何個(gè)性化的選擇保護(hù)卵巢和生育功能的方案,提高患者的生活質(zhì)量,仍然需要多中心大樣本的研究和探討。
參考文獻(xiàn):
[1] AI-lnany H,Aboulghar M.GnRH antagonist in assisted reproduction:a Cochrane review[J].Hum Reprod,2002,17(4):874-885.
[2] 袁光文,沈鏗,楊佳欣.促性腺激素釋放激素激動(dòng)劑對化療損傷卵巢功能保護(hù)作用的實(shí)驗(yàn)研究[J].中華婦產(chǎn)科雜志,2005,40(10):666-669.
[3] Del Mastro L,Catzeddu T,Boni L,et al.Prevention of chemotherapy-induced menopause by temporary ovarian suppression with goserelin in young,early breast cancer patients[J].Ann Oncol,2006,17(1):74-78.
[4] Somers EC,Marder W,Christman GM,et al.Use of a gonadotropin-releasing hormone analog for protection against premature ovarian failure during cyclophosphamide therapy in women with severe lupus[J].Arthritis Rheum,2005,52(9):2761-2767.
[5] Blumenfeld Z,Eckman A.Preservation of fertility and ovarian function and minimization of chemotherapy-induced gonadotoxicity in young women by GnRH-a[J].J Natl Cancer Inst Monogr,2005,34:40-43.
[6] Clowse ME,Behera MA,Anders CK,et al.Ovarian Preservation by GnRH Agonists during Chemotherapy:A Meta-Analysis[J].J Womens Health (Larchmt),2009,18(3):311-319.
[7] Blumenfeld Z,Von Wolff M.GnRH-analogues and oral contraceptives for fertility preservation in women during chemotherapy[J].Hum Reprod Update,2008,14(6):543-552.
[8] Meirow D,Assad G,Dor J,et al.The GnRH antagonist cetrorelix reduces cyclophosphamide-induced ovarian follicular destruction in mice[J].Hum Reprod,2004,19(6):1294-1299.
[9] Lemos CN,Reis FM,Pena GN,et al.Assessment of fertility protection and ovarian reserve with GnRH antagonist in rats undergoing chemotherapy with cyclophosphamid[J].Reprod Biol Endocrinol,2010,18(8):51.
[10] Mardesic T, Snajderova M, Sramkova L, et al. Protocol combining GnRH agonists and GnRH antagonists for rapid suppression and prevention of gonadal damage during cytotoxic therapy[J].Eur J Gynaecol Oncol,2004,25(1):90-92.
[11] Lobo RA.Potential options for preservation of fertility in women[J].N Engl J Med,2005,353(1):64-73.
[12] Grundker C,Emons G.Role of gonadotropin-releasing hormone (GnRH) in ovarian cancer[J].Reprod Biol Endocrinol,2003,1:65-71.
[13] Morita Y,Perez GI,Paris F,et al.Oocyte apoptosis is suppressed by disruption of the acid sphingomyelinase gene or by sphingosine-1-phosphate therapy[J].Nat Med,2000,6(10):1109-1114.
[14] Blumenfeld Z.How to preserve fertility in young women exposed to chemotherapy? The role of GnRH agonist cotreatment in addition to cryopreservation of embrya,oocytes,or ovaries[J].Oncologist,2007,12:1044-1054.
[15] Gargett CE.Review article:stem cells in human reproduction[J].Reprod Sci,2007,14:405-424.
[16] Oktay K,Sonmezer M,Oktem O,et al.Absence of conclusive evidence for the safety and efficacy of gonadotropin-releasing hormone analogue treatment in protecting against chemotherapy-induced gonadal injury[J].Oncologist,2007,12:1055-1066.
[17] Donnez J,Dolmans MM,Demylle D,et al.Livebirth after orthotopic transplantation of cryopreserved ovarian tissue[J].Lancet,2004,364(9443):1405-1410.
[18] Sonmezer M,Shamonki MI,Oktay K.Ovarian tissue cryopreservation:benefits and risks[J].Cell Tissue Res,2005,322(1):125-132.
[19] Mueller A,Maltaris T,Dimmler A,et al.Development of sex cord stromal tumors after heterotopic transplantation of cryopreserved ovarian tissue in rats[J].Anticancer Res,2005,6B:4107-4111.
[20] Maltaris T,Koelbl H,Seufert R,et al.Gonadal damage and options for fertility preservation in female and male cancer survivors[J].Asian J Androl,2006,8:515-533.
[21] Yang D,Brown SE,Nguyen K,et al.Live birth after the transfer of human embryos developed from cryopreserved oocytes harvested before cancer treatment[J]. Fertil Steril,2007,87(1469):e1-e4.
[22] Gosden RG.Prospects for oocyte banking and in vitro maturation[J].J Natl Cancer Inst Monogr,2005,34:60-63.
[23] Hardy K,Wright C,Rice S,et al.Future developments in assisted reproduction in humans[J].Reproduction,2002,123(2):171-183.
[24] Azem F,Amit A,Merimsky O,et al.Successful transfer of frozen-thawed embryos obtained after subtotal colectomy for colorectal cancer and before fluorouracil-based chemotherapy[J].Gynecol Oncol,2004,93(1):263-265.
[25] Gracia CR,Gracia JJ,Chen S.Ethical Dilemmas in Oncofertility:An Exploration of Three Clinical Scenarios[J].Cancer Treat Res,2010,156:195-208.