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    人骨髓間充質(zhì)干細胞體外培養(yǎng)及其生物學(xué)特性分析

    2011-02-02 03:49:10李洪偉郭開今陳向陽葛保健
    山東醫(yī)藥 2011年26期
    關(guān)鍵詞:換液貼壁原代

    李洪偉,郭開今,周 冰,辛 兵,陳向陽,葛保健

    (徐州醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院,江蘇徐州221002)

    人骨髓間充質(zhì)干細胞(MSC)是骨髓中存在的一類非造血組織干細胞,具有高度增殖和自我更新能力,并具有多向分化潛能,它不僅能分化為中胚層的成骨細胞、軟骨細胞和脂肪細胞等[1],還可跨胚層分化為肝細胞[2]、神經(jīng)細胞[3]、心肌細胞[4],已成為組織工程、基因治療和再生醫(yī)學(xué)中的研究熱點。由于骨髓中細胞成分比較混雜,MSC在骨髓中的含量極少,僅占骨髓中有核細胞的0.001%~0.01%,實際應(yīng)用中需對其進行體外分離純化并大量擴增。2009年3月~2010年2月,為尋找適宜MSC體外分離、培養(yǎng)和擴增方法,并分析其生物學(xué)特性,我們進行了相關(guān)實驗。現(xiàn)報告如下。

    1 材料與方法

    1.1 主要試劑及儀器 Percoll分離液(Pharmacia公司),藻紅蛋白(PE)標記鼠抗人CD90、CD105單克隆抗體和異硫氰酸熒光素(FITC)標記鼠抗人CD34、CD11b單克隆抗體,RNase、碘化丙啶(PI),牛血清白蛋。倒置相差顯微鏡,流式細胞儀。

    1.2 MSC分離及培養(yǎng)方法

    1.2.1 MSC的分離 無菌條件下從健康成人志愿者的髂骨處抽取骨髓10 ml,肝素抗凝,輕輕搖勻,用DMEM培養(yǎng)基稀釋1倍容積后,緩慢加入等量的Percoll分離液,2 500 r/min離心30 min,收集白膜層的單個核細胞,以PBS洗滌離心2次,按2×105/cm2密度接種于底面積為25 cm2的培養(yǎng)瓶中,加入完全培養(yǎng)基5 ml,置于5%CO2、37℃培養(yǎng)箱內(nèi)孵育。

    1.2.2 MSC的原代培養(yǎng) 接種后48 h進行首次半換液,棄未貼壁細胞,補充培養(yǎng)基;間隔2 d再次半換液,去除未貼壁細胞。以后細胞隔日洗滌、全量換液,使細胞逐漸純化。

    1.2.3 MSC的傳代培養(yǎng) 原代培養(yǎng)細胞生長至80%~90%融合時,棄原培養(yǎng)液,PBS洗滌2次,用0.25%胰蛋白酶溶液消化3~5 min,倒置顯微鏡下觀察大部分細胞逐漸趨于圓形,但尚未脫落時將溶液棄去,胎牛血清終止消化。用吸管將貼壁的細胞輕柔吹打成懸液,離心收集細胞,獲原代MSC,按1∶3的比例傳代,并標記為P1,在37℃、5%CO2和飽和濕度條件下繼續(xù)培養(yǎng),2~3 d換液1次。待細胞達80%以上融合后,重復(fù)以上操作,進行傳代,標記為P2,余類推。

    1.3 細胞生長曲線繪制及細胞生物學(xué)活性檢測

    1.3.1 細胞生長曲線繪制 取生長狀態(tài)良好的P1、P3、P5細胞,消化成單細胞懸液后,以1×104孔接種于24孔板繼續(xù)培養(yǎng)。每天同一時間取3孔細胞消化計數(shù),每孔計數(shù)3次,計算平均值,連續(xù)測定7 d。繪制細胞生長曲線。

    1.3.2 細胞表面抗原檢測 取第3代生長融合達80%的貼壁細胞,PBS洗滌后,以0.25%胰蛋白酶消化制成單細胞懸液,計數(shù)后取2×106個細胞并分裝6管,以含2%牛血清白蛋白的PBS洗滌。每管分別加入20 μl的CD34-FITC、CD11b-FITC、CD90-PE及CD105-PE單克隆抗體,另設(shè)3管分別用同型對照單克隆抗體確定背景標記,室溫避光放置30 min。以PBS洗去未標記抗體,離心后細胞加入含1%多聚甲醛的PBS固定。用流式細胞術(shù)檢測,用配套的Cell Quest軟件計算細胞表面抗原陽性率。

    1.3.3 細胞周期測定 取第3代生長狀態(tài)良好的MSC,消化離心后收集,計數(shù)達1×106/ml,去除細胞碎片。加入1 ml預(yù)冷的70%乙醇,吹打均勻,封口,4℃固定24 h。檢測前離心去除固定液,加入10 mg/ml的RNase 20 μl,37℃水浴30 min,PBS洗滌l次,離心去上清,加入50 μg/ml的PI 1 ml,4℃避光染色30 min,300目濾網(wǎng)過濾后用流式細胞術(shù)檢測,進行細胞周期分析。

    2 結(jié)果

    2.1 細胞形態(tài)學(xué) 剛接種的MSC大多呈圓形,單核;培養(yǎng)24 h后,部分細胞貼壁伸展,并開始聚集成細胞集落;48 h時貼壁細胞顯著增多,以橢圓形為主,部分細胞呈短梭形;4 d后成纖維細胞樣集落形成(CFU-F),由10~30個細胞組成,細胞形態(tài)為長梭形或多角形;11 d后細胞集落間相互融合成單層,長滿整個培養(yǎng)瓶,細胞排列呈平行狀或漩渦狀。傳代培養(yǎng)的細胞生長速度較原代培養(yǎng)明顯增快,不再形成細胞集落,7~8 d即可鋪滿瓶底。

    2.2 細胞生長曲線 P1、P3、P5細胞生長曲線均呈S形(見圖1),具有以下共同特征:細胞潛伏期為1~2 d,從第3天細胞大量增殖進入對數(shù)生長期,第6天達到高峰期,以后進入平臺期。P5細胞第3天起其生長速度低于P1、P3細胞,但P>0.05。

    圖1 P1、P3、P5 MSC生長曲線

    2.4 細胞周期 P3 MSC中,處于G0/G1期細胞約占77.42%,處于S+G2/M期細胞約占22.58%。大部分細胞處于相對不活躍的靜止期,只有小部分處于活躍的增殖狀態(tài),符合干細胞的特性。

    3 討論

    MSC因其廣闊的應(yīng)用前景而成為目前關(guān)注熱點[5]。高純度MSC的獲取是間充質(zhì)干細胞研究的理想基礎(chǔ)條件。目前從骨髓中分離培養(yǎng)MSC的方法主要有貼壁篩選法[6]、密度梯度離心法[1]和免疫法[7]。傳統(tǒng)的貼壁篩選法操作簡單,價格低廉,但所得細胞純度不高。密度梯度離心法操作較復(fù)雜,且分離時會丟失一定數(shù)量的MSC而不能有效達到較高的分離率,但所得細胞純度比貼壁法高。免疫法主要有流式細胞儀分離和免疫磁珠分選技術(shù),分離獲得的MSC純度最高,但實驗條件要求高,需要骨髓量大。本實驗用Percoll分離液對全骨髓做梯度離心,去除絕大部分紅細胞、粒細胞、脂肪細胞和血小板,獲得純度較高的單個核細胞,再根據(jù)其貼壁性差異,換液棄除懸浮生長的造血細胞,獲得純度較高、增殖能力較強、生長性狀穩(wěn)定的MSC。

    MSC雖然是一群均質(zhì)細胞,但兼具有間質(zhì)細胞、上皮細胞和內(nèi)皮細胞的特點,缺乏特異性的識別標志[8],且同發(fā)育階段的MSC表面標志也可能存在差異。一般認為[1,9]整合素家族成員的CD29、黏附分子CD44、CD166及CD90、CD105等是MSC保持未分化狀態(tài)時重要的表面標志,不表達造血細胞的標志性抗原是CD11、CD14、CD34及CD45。由于MSC無特異性的表面標志物,因此其準確鑒定較為困難。目前主要通過以下幾個方面鑒定MSC[10]:①體外培養(yǎng)貼壁生長呈梭形;②用特異結(jié)合MSC細胞膜抗原的單克隆抗體直接鑒定;③能夠自主增殖至少可以分化為3種以上間充質(zhì)細胞系。本實驗所培養(yǎng)的細胞由人骨髓取材,呈成纖維細胞樣貼壁生長,培養(yǎng)至第3代時即可發(fā)現(xiàn)細胞可高表達CD90、CD105,而不表達CD34、CD11b,表明所分離培養(yǎng)的細胞是來源于骨髓、均一的MSC。

    細胞生長曲線是觀察細胞生長基本規(guī)律的重要方法。本實驗對P1、P3、P5的MSC繪制生長曲線,發(fā)現(xiàn)MSC生長同樣經(jīng)歷潛伏期、對數(shù)生長期和平臺期,5代以內(nèi)MSC增殖旺盛、具有較好的細胞活力,適合進行實驗研究和臨床應(yīng)用。細胞周期分析顯示,絕大部分細胞處于G0/G1期,少部分處于S+ G2/M期,與文獻報道一致[9],說明絕大部分細胞處于靜止態(tài),但保留自我更新和增殖能力,少部分處于功能態(tài),符合干細胞的生長特性。

    總之,密度梯度離心結(jié)合貼壁篩選法分離獲得的人MSC純度高(99%),且該方法較簡單、有效,因此是分離純化人MSC的較好方法。

    [1]Pittenger MF,Mackay AM,Beck SC,et al.Multilineage potential of adult human mesenchymal stem cells[J].Science,1999,284 (5411):143-147.

    [2]Chivu M,Dima SO,Stancu CI,et al.In vitro hepatic differentiation of human bone marrow mesenchymal stem cells under differential exposure to liver-specific factors[J].Transl Res,2009,154(3):122-132.

    [3]Prabhakaran MP,Venugopal JR,Ramakrishna S.Mesenchymal stem cell differentiation to neuronal cells on electrospun nanofibrous substrates for nerve tissue engineering[J].Biomaterials,2009,30(28): 4996-5003.

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    [9]Conget PA,Minguell JJ.Phenotypical and functional properties of human bone marrow mesenchymal progenitor cells[J].J Cell Physiol,1999,181(1):67-73.

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