雷寧?kù)o,胡 煒,王成春,朱根明,楊琳琳,關(guān)方霞#
1)鄭州大學(xué)生物工程系鄭州450001 2)鄭州大學(xué)第一附屬醫(yī)院神經(jīng)外科鄭州450052
生物活性材料可用于修補(bǔ)受損組織和大面積缺損,是組織工程的研究熱點(diǎn)。羊膜具有免疫原性極低,排異反應(yīng)小,可分泌多種生長(zhǎng)因子并含有多種炎性因子及新生血管抑制因子等生物學(xué)特性,是一種良好的生物活性載體[1]。羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)是一種特殊的細(xì)胞外基質(zhì),作為細(xì)胞培養(yǎng)的生物載體,特別是作為生物活性載體,已用于干細(xì)胞體外培養(yǎng)。又因其免疫原性低而廣泛用于眼科、臨床燒傷外科及骨科等皮膚、黏膜及神經(jīng)重建移植研究[2]。作者采用2種改進(jìn)方法進(jìn)行羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)的制備,比較其脫細(xì)胞效果,并用于臍帶間質(zhì)干細(xì)胞的體外培養(yǎng),觀察臍帶間質(zhì)干細(xì)胞與羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)的生物相容性,為進(jìn)一步進(jìn)行組織工程研究提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
1.1 主要試劑及儀器 基礎(chǔ)培養(yǎng)基[體積比1∶1的DMEM/F12培養(yǎng)液,體積分?jǐn)?shù)10%胎牛血清,20 μg/L堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(bFGF)],青、鏈霉素,胰蛋白酶,EDTA,TritonX-100,倒置顯微鏡 IX71(日本Olympus公司),細(xì)胞培養(yǎng)箱,超凈工作臺(tái),掃描電鏡。
1.2 羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)的制備 無(wú)菌條件下取正常足月剖宮產(chǎn)胎兒胎盤(鄭州大學(xué)第一附屬醫(yī)院),采取前征得產(chǎn)婦知情同意,實(shí)驗(yàn)經(jīng)醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)。鈍性分離羊膜約10 cm×10 cm,去除絨毛膜組織,保留羊膜層。
①Triton法:新鮮羊膜經(jīng)生理鹽水反復(fù)沖洗干凈后置于體積分?jǐn)?shù)0.1%TritonX-100溶液中,振蕩,置于恒溫培養(yǎng)箱中保存36 h,取出后用生理鹽水漂洗干凈。加入25 g/L胰蛋白酶+0.2 g/L EDTA,充分振蕩,37℃保存4 h。取出后用生理鹽水漂洗干凈,裁剪成1 cm×1 cm大小后分裝密封。
②甘油法:新鮮羊膜沖洗干凈后置于培養(yǎng)皿中甘油浸泡,4℃保存,24 h×3次;生理鹽水反復(fù)沖洗干凈,25 g/L胰蛋白酶+0.2 g/L EDTA 4℃作用10 h。取出后用生理鹽水漂洗干凈,裁剪成1 cm×1 cm大小后分裝密封。
1.3 臍帶間質(zhì)干細(xì)胞的制備及傳代 將上述胎盤所附帶的臍帶剪成約2 cm的段狀,用生理鹽水沖洗干凈。剝?nèi)ツ殠?nèi)兩條動(dòng)脈和一條靜脈,再用生理鹽水充分洗滌,剪碎成泡沫狀,移液管吸取適量的臍帶組織至培養(yǎng)瓶中,加入已配置好的培養(yǎng)基(DMEM/F12培養(yǎng)液,體積分?jǐn)?shù)10%的胎牛血清,體積分?jǐn)?shù)0.67%bFGF,體積分?jǐn)?shù)1%的青、鏈霉素),吹打均勻后置于37℃、飽和濕度、體積分?jǐn)?shù)5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。3~4 d更換培養(yǎng)液一次。待細(xì)胞生長(zhǎng)達(dá)到80% ~90%融合鋪滿瓶底時(shí),進(jìn)行細(xì)胞傳代。
1.4 羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)性狀觀察
1.4.1 殘余細(xì)胞數(shù) 2種羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)各取6張樣本置于載玻片上,HE染色,100倍鏡下每張選取10個(gè)不同視野,采用網(wǎng)格計(jì)數(shù)法計(jì)數(shù)相同面積內(nèi)的殘余細(xì)胞數(shù),重復(fù)實(shí)驗(yàn)3次。鏡下觀察到深藍(lán)染色者計(jì)數(shù)為1個(gè)殘余細(xì)胞。
1.4.2 電鏡觀察 用生理鹽水將羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)清洗干凈,然后用體積分?jǐn)?shù)0.25%戊二醛固定,送檢,掃描電鏡下觀察2種脫細(xì)胞基質(zhì)的形態(tài)。
1.4.3 臍帶間質(zhì)干細(xì)胞在羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)上的生長(zhǎng)狀況 2種羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)用培養(yǎng)液預(yù)濕,展開置于6孔板內(nèi),將傳至第3代的人臍帶間質(zhì)干細(xì)胞懸液(2×105mL-1)0.2 mL接種于脫細(xì)胞基質(zhì),加入 4.8 mL DMEM/F12 培養(yǎng)液,0.03 μL bFGF,置于37℃、飽和濕度、體積分?jǐn)?shù)5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),隔日換液,HE染色,倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞黏附情況。將第3代人臍帶間質(zhì)干細(xì)胞以4×104mL-1分別接種在底部包被2種基質(zhì)的24孔板中,用基礎(chǔ)培養(yǎng)基培養(yǎng),每隔24 h取6孔,胰酶消化混合后重懸細(xì)胞,臺(tái)盼藍(lán)染色,計(jì)數(shù)活細(xì)胞總數(shù),重復(fù)3次,取平均值為當(dāng)天的活細(xì)胞計(jì)數(shù),共計(jì)數(shù)4 d。
1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 應(yīng)用SPSS 12.0處理數(shù)據(jù),2種殘余細(xì)胞數(shù)及臍帶間質(zhì)干細(xì)胞活細(xì)胞計(jì)數(shù)的比較用成組資料的t檢驗(yàn),檢驗(yàn)水準(zhǔn)α=0.05。
2.1 2種羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)形態(tài)的比較 2組脫細(xì)胞后的羊膜均為白色透明的膜狀物,柔韌性好。HE染色可見,2種脫細(xì)胞基質(zhì)表面無(wú)藍(lán)色核染物質(zhì)(圖1A、B)。掃描電鏡下觀察,2種脫細(xì)胞基質(zhì)亦未見細(xì)胞殘留;Triton組羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)可見縱橫交錯(cuò)的編織狀纖維;甘油組樣本表面凹凸不平,看不到細(xì)胞形態(tài)(圖1C、D)。Triton組殘余細(xì)胞數(shù)為(1.13±0.35),甘油組為(1.11 ±0.22),2 組間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=1.920,P=0.888)。
圖1 2種羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)形態(tài)觀察
2.2 臍帶間質(zhì)干細(xì)胞在2種羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)上的生長(zhǎng)狀況 臍帶間質(zhì)干細(xì)胞約6 h即可在2種羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)表面黏附。2組細(xì)胞增殖情況見表1。
表1 2組臍帶間質(zhì)干細(xì)胞活細(xì)胞計(jì)數(shù)結(jié)果 104mL-1
生物載體材料是組織工程研究的基礎(chǔ),目前,生物載體材料主要有兩大類,一類是人工合成材料,另一類是天然生物材料。與人工合成材料相比,天然生物材料具有無(wú)法比擬的優(yōu)點(diǎn):一方面,天然生物材料直接取自生物體內(nèi),有良好的生物相容性和生物可降解性,且降解產(chǎn)物無(wú)毒副作用;另一方面,天然生物材料本身就具有相同或類似于細(xì)胞外基質(zhì)的結(jié)構(gòu),可促進(jìn)細(xì)胞黏附、增殖和分化[3]。因此,天然生物材料已成為人們研究的熱點(diǎn)。
目前臨床上使用的羊膜主要為新鮮羊膜、深冷保存羊膜和脫細(xì)胞羊膜(也稱羊膜脫細(xì)胞基質(zhì))。國(guó)外多采用深低溫(-80℃)保存的含有上皮細(xì)胞的羊膜,因技術(shù)工藝要求復(fù)雜,保存成本過高,不為國(guó)內(nèi)所采用。羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)不含羊膜上皮細(xì)胞,保留了羊膜基底膜與致密層,它的主要成分是Ⅲ、Ⅳ及Ⅴ型膠原蛋白,蛋白多糖和糖蛋白,是一種天然的細(xì)胞外基質(zhì),可能是良好的組織工程生物載體材料。然而,目前常用的羊膜脫細(xì)胞處理方法是胰酶酶解及物理方法[4],膜制備過程中可能會(huì)產(chǎn)生二次污染,并且過度酶解會(huì)破壞羊膜基質(zhì)的蛋白結(jié)構(gòu)及韌性,器械處理也可能會(huì)對(duì)羊膜造成損傷。這些不足均降低了羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)作為天然細(xì)胞外基質(zhì)的優(yōu)越性。
作者采用2種方法處理新鮮羊膜,一組使用TritonX-100和酶消化法進(jìn)行處理,該方法操作簡(jiǎn)單,用時(shí)較短(約需2 d);另一組使用甘油浸泡和酶消化法進(jìn)行處理,操作也簡(jiǎn)單,耗時(shí)較長(zhǎng)(約需4 d)。TritonX-100是常用的非離子性表面活性劑,能溶解脂質(zhì)。甘油的重要特點(diǎn)之一是無(wú)毒無(wú)刺激,不會(huì)對(duì)生物組織造成傷害。2種方法得到的羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)均無(wú)細(xì)胞殘留,均對(duì)臍帶間質(zhì)干細(xì)胞有良好的細(xì)胞相容性,但是臍帶間質(zhì)干細(xì)胞在Triton組羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)上的細(xì)胞增殖情況明顯優(yōu)于甘油組。從電鏡掃描結(jié)果可看出,TritonX-100處理的羊膜可見縱橫交錯(cuò)的編織狀纖維,不含壞死組織,基質(zhì)成分完整,三維結(jié)構(gòu)清晰;而甘油處理的樣本盡管無(wú)細(xì)胞殘留,但無(wú)法觀察到縱橫交錯(cuò)的編織狀纖維,其三維結(jié)構(gòu)塌陷,原因可能為甘油強(qiáng)力脫水后影響三維結(jié)構(gòu)及胰酶處理時(shí)間過長(zhǎng),影響基質(zhì)的蛋白結(jié)構(gòu)從而影響三維結(jié)構(gòu)。據(jù)文獻(xiàn)[5]可知,細(xì)胞的生長(zhǎng)增殖不僅與培養(yǎng)基及生長(zhǎng)因子相關(guān),而且與所貼敷材料的空間物理結(jié)構(gòu)有關(guān),種植材料表面的理化性質(zhì)能影響生物大分子層的結(jié)構(gòu)、組成和空間構(gòu)象,進(jìn)而導(dǎo)致不同的細(xì)胞學(xué)表現(xiàn)。
綜上所述,作者認(rèn)為,TritonX-100預(yù)處理并酶消化法是制備羊膜脫細(xì)胞基質(zhì)較好的方法。
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