柴欣樓 王 偉 王綠婭 張永生
(1北京中醫(yī)藥大學(xué),北京市朝陽(yáng)區(qū)北三環(huán)東路 11號(hào),100029;2北京市安貞醫(yī)院)
冠脈形成術(shù)造成了血管內(nèi)皮細(xì)胞損傷,加速了血栓的形成。附壁血栓的形成,不僅造成血管的急性閉塞,而且為平滑肌細(xì)胞 (vessel smooth musle cell,VSMC)的內(nèi)遷提供了框架,增殖的 VSMC由血管中層向內(nèi)膜的遷移是內(nèi)膜增厚的一個(gè)重要機(jī)制。在此過(guò)程中,細(xì)胞邊緣存在大量基質(zhì)金屬蛋白酶(maxtrix metalloproteinases,MMPs)和纖維蛋白溶解酶,這 2種物質(zhì)可降解細(xì)胞外基質(zhì),加速 VSMC的遷移[1]。VSMC遷移的結(jié)果可導(dǎo)致內(nèi)膜中 VSMC的大量積聚和結(jié)締組織的形成,進(jìn)而促進(jìn)新生內(nèi)膜形成。
葛根素(Pur)為異黃酮類(lèi)化合物,屬于植物雌激素?,F(xiàn)代藥理研究證明 Pur在心血管中具有多種功能,可擴(kuò)張心、腦血管,降低血黏度,抑制血小板活性,降低血小板黏附率;可對(duì)抗 H2O2引起的無(wú)血清培養(yǎng)的 VSMC凋亡及壞死[2]。
本研究以葛根素為研究對(duì)象,構(gòu)建 VSMC遷移模型,Boyden小室法檢測(cè) VSMC的遷移,ELISA法檢測(cè)MMP-2、MMP-9的含量,在此基礎(chǔ)上采用明膠—聚丙烯酰胺電泳酶譜分析 VSMC分泌 MMP-2的活性。
1.1 材料與分組 1)主要試劑:DMEM培養(yǎng)液(美國(guó)GIBCO公司產(chǎn)品),胎牛血清 (FBS,Hyclone公司產(chǎn)品),凝血酶(凍干粉,美國(guó) Sigma公司產(chǎn)品),葛根素原粉(純度 99.7%,由衛(wèi)生部藥品生物制品鑒定所提供),MTT、二甲基亞砜(DMSO)、胰蛋白酶和 EDTA、SP免疫組化試劑盒、DAB顯色試劑盒(北京中杉生物制品有限公司),BCA蛋白定量試劑盒(美國(guó) Bio-Rad公司),MMP-2、MMP-9 ELISA試劑盒(鼎國(guó)試劑公司)。2)VSMC體外培養(yǎng)及鑒定:常規(guī)組織貼塊法培養(yǎng)VSMC。實(shí)驗(yàn)用 4~8代細(xì)胞。用光鏡和免疫組化方法進(jìn)行鑒定。3)藥物配制及梯度稀釋。4)葛根素原粉,選擇二甲基亞砜為溶劑,配制濃度分別為 10mM和1mM。將 1mM藥物溶液用溶劑以 1:10的比例進(jìn)行梯度稀釋?zhuān)棺罱K藥物濃度從 1mM變化到 1nM。5)分組。正常對(duì)照組:用含 1%小牛血清 DMEM培養(yǎng)液培養(yǎng)細(xì)胞。模型組:加終濃度為 5u/L凝血酶的 1%小牛血清 DMEM培養(yǎng)液培養(yǎng)細(xì)胞。葛根素組:加終濃度為5u/L凝血酶和濃度為 10-2mol?L-1的葛根素溶液的1%小牛血清 DMEM培養(yǎng)液培養(yǎng)細(xì)胞。雷帕霉素組:加終濃度為 5u/L凝血酶和濃度為 10-4mol?L-1的雷帕霉素溶液的 1%小牛血清 DMEM培養(yǎng)液培養(yǎng)細(xì)胞。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法 血管平滑肌細(xì)胞培養(yǎng):1)空氣栓塞法處死新西蘭大耳白兔,無(wú)菌條件下分離全段胸主動(dòng)脈,立即置于含青霉素 100u/mL,鏈霉素 100mg/mL的無(wú)菌生理鹽水中。2)超凈工作臺(tái)上,用含青霉素、鏈霉素的生理鹽水反復(fù)沖洗,去除脂滴、血凝塊等雜質(zhì)及可能殘留的內(nèi)皮細(xì)胞和外膜成纖維細(xì)胞,然后將一次取材的 2~3條血管中膜組織混合在一起,置于無(wú)菌培養(yǎng)皿中。3)滴加少許培養(yǎng)液使組織保持濕潤(rùn),用眼科彎剪反復(fù)剪切成 1mm×1mm大小的組織塊。剪切好的組織小塊均勻置于瓶底,組織塊間距 0.5cm。蓋好瓶蓋,輕輕翻轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶,讓瓶底朝上并向瓶?jī)?nèi)注入含20%胎牛血清的 DMEM培養(yǎng)液,于 37℃孵箱內(nèi)放置。4)經(jīng) 2~4h孵育后,將培養(yǎng)瓶慢慢翻轉(zhuǎn)平放,使組織塊完全浸入培養(yǎng)液中,繼續(xù)靜置培養(yǎng) 3~5d。待有細(xì)胞從組織塊周?chē)纬龊髶Q液。5)當(dāng)細(xì)胞長(zhǎng)成“峰”“谷”交錯(cuò)的致密細(xì)胞層,即可進(jìn)行傳代。
1.3 Boyden小室法檢測(cè) VSMC的遷移
1.3.1 VSMC細(xì)胞,0.125%胰酶消化后離心 1000r/min×5min,PBS液洗滌 2次,離心,棄上清。
1.3.2 用含 10%CFBS的 DMEM培養(yǎng)液配成細(xì)胞密度 1×106個(gè)/L左右細(xì)胞懸液,使細(xì)胞在培養(yǎng)液中懸浮 1h恢復(fù)形態(tài)?;靹蚣?xì)胞懸液,吸取 0.35mL加入Boyden小室的上室內(nèi)。
1.3.3 下室加入 2%CFBS的 DMEM培養(yǎng)液作為正常對(duì)照組,其余加入待測(cè)藥品等,封閉下室小孔,置37℃,5%CO2孵箱內(nèi)培養(yǎng) 6h。
1.3.4 取出 Boyden小室內(nèi)的微孔濾膜,PBS洗 2次,冷丙酮固定 10s,PBS洗 2次。
1.3.5 以蘇木素染色 5min,蒸餾水沖洗,1%鹽酸乙醇脫色 3min,流水沖洗,1%NaHCO3顯藍(lán)染色 3min。
1.3.6 水洗后,37℃過(guò)夜,系列梯度乙醇脫水:70%-75%-80%-90%-100%各 0.5min。
1.3.7 二甲苯透明。
1.3.8 以中性樹(shù)膠封片。設(shè) 5個(gè)重復(fù)孔。
1.3.9 在顯微鏡下,隨機(jī)計(jì)數(shù) 10高倍視野下移出濾膜的 VSMC數(shù),每張膜觀察 2遍,計(jì)算其平均數(shù)。5份濾膜內(nèi)的移動(dòng)細(xì)胞平均數(shù)表示 VSMC的遷移數(shù)量。
1.4 ELISA法檢測(cè) MMP-2、MMP-9的含量
1.4.1 VSMC細(xì)胞,0.125%胰酶消化后離心 1000r/min×5min,PBS液洗滌 2次,離心,棄上清。
1.4.2 用含 10%CFBS的 DMEM培養(yǎng)液配成細(xì)胞密度 1×106個(gè)/L左右細(xì)胞懸液,6孔培養(yǎng)板,加入細(xì)胞懸液 1000μL繼續(xù)培養(yǎng) 48h后,去培養(yǎng)液。
1.4.3 加入無(wú)血清培養(yǎng)基培養(yǎng) 24h后,棄上清。加入待測(cè)藥品等,繼續(xù)培養(yǎng) 24h。
1.4.4 將上述細(xì)胞收集,低速離心,保留上清。加入96孔培養(yǎng)板,100μL/孔,設(shè) 5個(gè)重復(fù)孔。
1.4.5 建立標(biāo)準(zhǔn)曲線。酶標(biāo)儀檢測(cè)吸光度值(490nm)。
1.5 明膠—聚丙烯酰胺電泳酶譜分析 VSMC分泌MMP-2的活性
VSMC細(xì)胞,0.125%胰酶消化后離心 1000r/min×5min,PBS液洗滌 2次,離心,棄上清。
1.5.1 用含 10%CFBS的 DMEM培養(yǎng)液配成細(xì)胞密度 1×106個(gè)/L左右細(xì)胞懸液,6孔培養(yǎng)板,加入細(xì)胞懸液 1000μL繼續(xù)培養(yǎng) 48h后,去培養(yǎng)液。
1.5.2 加入無(wú)血清培養(yǎng)基培養(yǎng) 24h后,棄上清。加入待測(cè)藥品等,繼續(xù)培養(yǎng) 24h。
1.5.3 將上述細(xì)胞收集,低速離心,保留上清。
1.5.4 Bradford法測(cè)培養(yǎng)液蛋白濃度,牛血清白蛋白作標(biāo)準(zhǔn)。
1.5.5 按常規(guī)方法灌制 10%分離膠和 5%濃縮膠,但分離膠中含 0.1%明膠作為底物。取 10μL上清液樣本與等體積的上樣緩沖液混合,室溫放置 30min,上樣,電流 15mA電泳約 90min,溴酚藍(lán)到達(dá)兩層膠的分界處,將電流調(diào)至 20A,電泳 90min后溴酚藍(lán)到達(dá)底線,停止電泳。
1.5.6 小心將膠剝離,經(jīng) 2.5%TritonX-100漂洗1h,加入反應(yīng)緩沖液(50mmol/L Tris-HCL,10mmol/L CaCl2,20mmol/LNaCl)37℃過(guò)夜。
1.5.7 次日,0.5%考馬斯亮蘭染色 4h,脫色至藍(lán)色背景下白色條帶清晰可見(jiàn)。將凝膠掃描成像。
實(shí)驗(yàn)重復(fù) 3次,以空白對(duì)照的條帶的灰度值為 1,實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)與空白對(duì)照相比取值。
1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 所有數(shù)據(jù)由 SPSS統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行單因素方差分析,以 ˉx±s表示,P<0.05認(rèn)為有統(tǒng)計(jì)意義。
2.1 VSMC細(xì)胞的鑒定結(jié)果 倒置相差顯微鏡觀察細(xì)胞生長(zhǎng)形態(tài)及生長(zhǎng)規(guī)律。VSMC呈長(zhǎng)梭形、三角形或星形等。細(xì)胞突起較長(zhǎng),相互接觸,對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞呈典型“峰與谷”樣生長(zhǎng)。核較大,原形或卵原形,胞漿豐富。密度大時(shí)可重疊生長(zhǎng)。
2.2 葛根素對(duì) VSMC的遷移的影響(ˉx±s,n=6)葛根素組與模型組相比,P<0.01。
2.3 葛根素對(duì) VSMC分泌的 MMP-2、MMP-9含量的影響 (ˉx±s,n=6) VSMC分泌的 MMP-2、MMP-9含量。葛根素高濃度組與模型組相比,P<0.01;葛根素低濃度組與模型組相比,P<0.05。
2.4 葛根素對(duì) VSMC分泌的 MMP-2活性的影響實(shí)驗(yàn)原理:實(shí)驗(yàn)以明膠為底物,明膠被考馬斯亮藍(lán)染為藍(lán)色背景,若樣本中含有可以分解明膠的 MMP-2則在相應(yīng)分子量處可出現(xiàn)底物被水解的透明條帶,且根據(jù)條帶的灰度值可以反映酶活性的大小。若以不同的膠原或酪蛋白為底物,可以測(cè)出不同種類(lèi) MMPs的活性。
表1 VSMC分泌的 MMP-2灰度值
早期血管彈性回縮,晚期血管重塑和新內(nèi)膜增生是直接導(dǎo)致 PTCA術(shù)后再狹窄的三個(gè)主要原因[3]。植入支架雖可擴(kuò)大管徑,防止彈性回縮發(fā)生,但支架本身對(duì)新生內(nèi)膜的形成無(wú)任何抑制作用,而且它作為異物停留在體內(nèi)可能導(dǎo)致血栓形成并刺激 VSMC增生和新生內(nèi)膜肥厚,最終導(dǎo)致支架內(nèi)再狹窄的發(fā)生[4]。
VSMC是血管壁的主要細(xì)胞成分之一,是決定血管順應(yīng)性和血管重構(gòu)的重要因素,血管壁增厚和順應(yīng)性下降主要源于 VSMC的肥大、增生,產(chǎn)生和分泌細(xì)胞外基質(zhì)增加等[5]。內(nèi)膜損傷后內(nèi)皮細(xì)胞釋放的血管活性物質(zhì)和生長(zhǎng)因子與 VSMC膜受體結(jié)合后使癌基因激活、轉(zhuǎn)錄、表達(dá)異常,VSMC由收縮表型轉(zhuǎn)化為合成表型,從細(xì)胞周期 G0期脫逸出并進(jìn)入細(xì)胞增殖周期,發(fā)生分裂增殖并分泌大量的細(xì)胞外基質(zhì)[6]。因此,在新生內(nèi)膜形成過(guò)程中,VSMC移行、增殖和分泌是血管內(nèi)膜增生的三個(gè)重要步驟[7]。
細(xì)胞外基質(zhì)(extracellular matrix,ECM)主要包括膠原、糖蛋白、葡萄糖氨基糖苷和蛋白聚糖四類(lèi)。在正常組織,這些大分子存在于內(nèi)膜、中膜、外膜,起保持血管彈性和完整性的作用。研究表明成熟的 VSMC沒(méi)有遷移的特性,而且當(dāng)其處于 S或 G2/M期時(shí)不能遷移,而只有在 G1向 G1/S轉(zhuǎn)化過(guò)程中才可能遷移[8-9]。中膜 VSMC的遷移除與細(xì)胞本身有關(guān)外,還須突破細(xì)胞周?chē)倪w移屏障即成分復(fù)雜的 ECM,因此在損傷早期 ECM降解,對(duì)促進(jìn) VSMC遷移有重要作用,晚期ECM沉積對(duì)血管重塑起重要作用。MMPs主要降解ECM[10],在正常的血管中內(nèi)皮細(xì)胞和 VSMC經(jīng)常產(chǎn)生MMP-2,TIMP-1和 TIMP-2,成為血管組織細(xì)胞更新必不可少的條件。根據(jù)降解的對(duì)象不同,將 MMPs分為 4類(lèi):MMP-1(膠原酶)、MMP-2(明膠酶 A)、MMP-3(基質(zhì)裂解素 1)、MMP-9(明膠酶 B)、MMP-12(金屬蛋白彈性酶),膜型金屬蛋白酶。當(dāng)白介素1、腫瘤壞死因子、γ干擾素、巨噬細(xì)胞集落刺激因子、巨噬細(xì)胞化學(xué)趨化蛋白Ⅰ等炎癥細(xì)胞因子濃度升高時(shí),促進(jìn) VSMC、內(nèi)皮細(xì)胞和泡沫細(xì)胞表達(dá) MMPs。這可降解 ECM,促進(jìn)淋巴細(xì)胞和巨噬細(xì)胞遷移到內(nèi)皮下;促進(jìn) VSMC由中膜遷移到內(nèi)膜。故研究細(xì)胞外基質(zhì)的降解,對(duì)于 VSMC的遷移有重要意義[11]。本實(shí)驗(yàn)建立了細(xì)胞遷移模型,并在此基礎(chǔ)上觀察了 MMP-2和 MMP-9,結(jié)果發(fā)現(xiàn)葛根素可抑制 VSMC的遷移,同時(shí),抑制 MMP-2、MMP-9,在此基礎(chǔ)上繼續(xù)觀察了葛根素對(duì) VSMC分泌的 MMP-2活性的影響,發(fā)現(xiàn)葛根素組與模型組相比可顯著抑制 MMP-2的表達(dá)(P<0.05)。關(guān)于葛根素抑制 VSMC遷移,通過(guò)本實(shí)驗(yàn)的研究可以發(fā)現(xiàn),葛根素抑制了 VSMC的增殖,使處于G1期的細(xì)胞較多,增加了其遷移到內(nèi)膜下組織的機(jī)會(huì),因而抑制其遷移過(guò)程變得尤為重要。但細(xì)胞遷移受多種因素影響,不僅僅與 MMP-2、MMP-9有關(guān)。這也成為今后研究關(guān)注的焦點(diǎn)問(wèn)題。
[1]Southgate KM,Davies M,Booth RF,Newby AC.Involvement of extracellular-matrix-degrading metalloproteinases in rabbit aortic smoothmuscle cell proliferation.Biochem J.1992,288:93– 99.
[2]方放治,戴德哉,王自正,等.葛根素對(duì)抗 H2O2引起血管平滑肌細(xì)胞凋亡及壞死.中國(guó)藥科大學(xué)學(xué)報(bào).2002,33(3):241-244.
[3]Faxon DP,Sanborn TA,Weber VJ,Haudenschild C,Gottsman SB,Mc Govern WA,Ryan TJ.Restenosis following transluminal angioplasty in experimental atherosclerosis.Arteriosclerosis.1984,4:189– 195.
[4]Morice MC,Serruys PW,Sousa JE,F(xiàn)ajadet J,Ban Hayashi E,Perin M,Rogers C,Karnovsky MJ,Edelman ER.Inhibition of experimental neointimal hyperplasia and thrombosisdepends on the type of vascular injury and the site of drug administration.Circulation.1993,88:1215–1221.
[5]Thyberg J,Blomgren K,Hedin U,Dryjski M.Phenotypic modulation of smooth muscle cells during the formation of neointimal thickeningsin the rat carotid artery after balloon injury:an electron-microscopic and stereological study.Cell Tissue Res.1995,281:421– 433.
[6]Nguyen M,He B,Karaplis A.Nuclear formsof parathyroid hormonerelated Liu MW,Roubin GS,King SB III.Restenosis after coronary angioplasty:potential biologic determinants and role of intimal hyperplasia.Circulation.1989,79:1374– 1387.
[7]Hall KL,Harding JW,Hosick HL.Isolation and characterization of clonal vascular smooth muscle cell lines from spontaneously hypertensive and normotensive rat aortas.In Vitro Cell Dev Biol.1991,27:791–798.
[8]Toyoshima H,Hunter T.p 27,a novel inhibitor of G1 cyclin-Cdk protein kinase activity,is related to p21.Cell.1994,78:67– 74.
[9]Belknap JK,Grieshaber NA,Schwartz PE,Orton EC,Reidy MA,Majack RA.Tropoelastin gene expression in individual vascular smooth muscle cells:relationship to DNA synthesis during vascular development and after arterial injury.Circ Res 1996,78:388-94.
[10]Galis ZS.Metalloproteases in remodeling of vascular extracellular matrix.Fibrinolysis Proteolysis.1999,13:54– 63.
[11]Kenagy RD,Vergel S,Mattsson E,Bendeck M,Reidy MA,Clowes AW.The role of plasminogen,plasminogen activators,and matrix metalloproteinases in primate arterial smooth muscle cell migration.Arterioscler Thromb Vasc Biol.1996,16:1373– 1382.